Разработка радиомодифицированных мутантов микроорганизмов для профилактики и лечения радиационных поражений животных
Автор: Ишмухаметов К.Т., Низамов Р.Н., Сайтов В.Р., Василевский Н.М., Шакуров М.М., Гасанов А.С.
Статья в выпуске: 1 т.241, 2020 года.
Бесплатный доступ
Воздействием последовательно увеличивающихся доз у-излучения получены стабильные радиорезистентные бактерии, выживающие при дозах 4,0 (E.coli «R10») и 2,4 кГр (B.bifidum «R6»). В отличие от исходных микроорганизмов радиорезистентные бактерии имели большее содержание ДНК, ферментов: супероксиддисмутазы, каталазы, глютатионпе-роксидазы, аминокислот глицина, серина, цистеина. Изготовленные из радиорезистентных штаммов препараты, отвечали серологическим требованиям, обладали противорадиационными свойствами, защищали 60-80 % летально облученных животных, до 11,5-17,5 суток увеличивали среднюю продолжительность жизни павших против 6,9 суток в группе контроля облучения.
Радиомодификация, радиозащитные препараты
Короткий адрес: https://sciup.org/142224206
IDR: 142224206 | DOI: 10.31588/2413-4201-1883-241-1-95-99
Текст научной статьи Разработка радиомодифицированных мутантов микроорганизмов для профилактики и лечения радиационных поражений животных
Микроорганизмы, относящиеся к нормофлоре человека и животных, играют важную роль в жизнедеятельности организма-носителя, а именно в полезном воздействии продуктов метаболизма, защите против чужеродных агентов, нормализации его микробаланса [7]. Использование микробных агентов может благоприятно повлиять на исход заболевания при патологическом состоянии организма [2], снизить смертность животных при облучении, способствовать формированию радиорезистентности [3]. В процессе жизнедеятельности бактерии продуцируют ферменты, антигены, энтеро-, экзотоксины, цитокины, которые в отдельности и в сочетании друг с другом обладают радиозащитными свойствами [7]. Облучение микроорганизмов может вызвать изменение выработки метаболитов, таких как антибиотики, ферменты, аминокислоты и др. [1, 4, 5, 6, 7].
Цель исследований – получение ра-диомодифицированных мутантов E.coli и B.bifidum для профилактики и лечения радиационных поражений животных.
Материал и методы исследований. В качестве исходного материала использовали лиофилизированную монокультуру «Бифидумбактерин» и лабораторный штамм Escherichia coli «ПЛ-6». Микроорганизмы культивировали при 37±1оС в питательных средах МПБ, МПА (E.coli) и Блаурокка (B.bifidum). Моделирование радиационного воздействия осу- ществляли на гамма-установке «Исследователь» с источниками излучения 60Со и мощностью воздействия 0,022 А/кг.
Диапазон доз для E.coli составлял 0,5; 1,0; 2,0; 4,0; 6,0 кГр; для B.bifidum -0,01; 0,02; 0,04; 0,08; 0,16; 0,32; 0,6; 1,2; 2,4; 4,8 кГр.
После радиационного воздействия микроорганизмы высевали в питательные среды и через 96 часов учитывали рост колониеобразующих единиц (КОЕ). При наличии единичных колоний наращивание биомассы проводили повторным пересевом микробов до появления сплошного роста культуры, что свидетельствовало о развитии радиорезистентности культур.
Изучение морфологических свойств микроорганизмов проводили общепринятыми методами.
Взвеси микробов радиорезистент-ных вариантов E.coli (R 10) и B.bifidum (R 6 ) в культуральной жидкости в концентрации 1,0х10-10 м.к./мл и культуральные жидкости без бактерий были использованы для приготовления формол-препаратов, которые были инактивированы добавлением 0,3-0,5 %-ного нейтрального формалина и стабилизированы термостатированием при 37 оС в течение 30 минут.
Полученные препараты исследовали на стерильность посредством посева на питательные среды; безвредность – внутрибрюшинным введением 0,5 см3/гол 30 белым мышам; раздражающее и сенсиби- лизирующее действие формол-препаратов оценивали на 6 белых кроликах, которым препараты наносили на слизистую ротовой полости и глаз, проводили внутрикожную инъекцию и внутривенное двукратное введение с интервалом 22 суток.
Моделирование лучевой болезни тяжелой степени (ЛД 100/30 ) осуществляли однократным облучением животных на гамма-установке «Пума» в дозе 7,7 Гр с мощностью 0,82 А/кг. Радиозащитную активность препаратов оценивали на 100 белых мышах массой 18-20 г, разделенных на 10 групп. Животным 1-4 групп препараты вводили за 1 сутки до облучения однократно подкожно в дозе 0,1 см3/гол, 5-8 групп – аналогично через 1 сутки после радиационного воздействия. Мыши 9-й и 10-й групп служили контролем облучения и биологическим контролем.
Результаты исследований . После облучения кишечной палочки в дозах 0,5 и 1,0 кГр наблюдали сплошной рост колоний (табл. 1); 2,0 кГр – на чашках Петри регистрировали разряженные пространства; при 4,0 кГр наблюдали единичные колонии, которые переходили в сплошной рост после пятикратного пассирования. Доза 6,0 кГр являлась стерилизующей.
Облучение B.bifidum 1 в дозах 0,010,32 кГр не повлияло на рост культуры; при дозе 0,6 кГр на столбиках 0,75 %-ного агара Блаурокка регистрировали разряженные пространства, которые выглядели менее плотным после воздействия в дозе 1,2 кГр; при дозе 2,4 кГр вырастали единичные колонии, которые после 7 пассирования образовывали сплошной рост; доза 4,8 кГр являлась стерилизующей (Табл.1).
Таблица 1 – Радиомодифицирующее действие γ-лучей на бактерии (кГр)
Вид бактерий |
Показатели роста колоний |
|||
СР |
РК |
ЕК |
РО |
|
E.coli («ПЛ-6») |
0,5-1,0 |
2,0 |
4,0 |
6,0 |
B.bifidum (1) |
0,01-0,32 |
0,6-1,2 |
2,4 |
4,8 |
Примечание: СР – сплошной рост колоний; РК – разреженные колонии; ЕК – единичные колонии; РО – рост отсутствует
Сравнение радиоустойчивых бактерий E.coli (R10) и B.bifidum (R6) с необлу-ченными аналогами показало следующее: E.coli (R10) на твердых средах образовывали колонии с шероховатыми краями различной величины, на препаратах микробы отличались увеличением размеров, неровностью структуры, полиморфностью и плотностью; B.bifidum (R6) были полиморфны, неоднородны, дискообразны, имели толщину 0,5-0,8 и диаметр – 1,0-1,5 мм. В суспензионной и культуральной жидкостях E.coli (R10) содержалось в 1,80 и 2,51 раза больше дезоксирибонуклеиновой кислоты; пероксидазная активность была выше в 2,18 и 1,67 раза; исходные бактерии не продуцируют ферменты супе-роксиддисмутазу и каталазу, но эти свойства приобрели бактерии E.coli (R10), в суспензионной и культуральной жидкостях которых содержалось супероксид-дисмутазы и каталазы соответственно 1,95±0,15 и 0,97±0,09 м.к.М/г и 21,51±0,75 и 27,38±0,59 м.кат/г/мл (Табл. 2).
Таблица 2 – Содержание дезоксирибонуклеиновой кислоты, ферментов супероксиддисмута-зы, каталазы и пероксидазы у бактерий E.coli «ПЛ-6» и (R 10 )
Вид бактерий |
ДНК, мкг/1,0Е9 м.к. |
СОД, м.к.М/г |
КАТ (Е-2), м.кат/г/мл |
АП (Е-4), с-1 мг-1 |
E.coli «ПЛ-6» |
8,5/3,3 |
0,0/0,0 |
0,0/0,0 |
1,1/0,3 |
E.coli (R10) |
15,3/8,7 |
1,95/0,97 |
0,22/0,27 |
2,4/0,5 |
Примечание: ДНК – дезоксирибонуклеиновая кислота; СОД – супероксиддисмутаза; КАТ – каталаза; АП – пероксидаза
В культуральной жидкости радио-резистентных бактерий содержалось больше аминокислот: в 2,0 раза глицина, 1,8 раза – серина и в 2,3 раза – цистеина (Табл. 3). У радиоустойчивых бифидобактерий, по сравнению с нативными, было зарегистрировано увеличение содержания антиокислительного фермента перосидазы: в клеточной суспензии в 2,05 раза, в экстракте – в 2,14 раза, в культуральной жидкости – в 1,45 раза. Активность антиокис-лительного фермента пероксидазы в клеточной суспензии была максимальной – 0,000343 с-1мг-1 (Табл. 4).
Таблица 3 – Содержание аминокислот в культуральной жидкости бактерий E.coli «ПЛ-6» и (R 10 ) (с-1мг-1)
Вид бактерий |
Глицин |
Серин |
Цистеин |
E.coli «ПЛ-6» |
1,07±0,21 |
0,009±0,001 |
1,10±0,13 |
E.coli (R10) |
2,13±0,13 |
0,016±0,001 |
2,57±0,34 |
Таблица 4 – Пероксидазная активность бактерий B.bifidum 1 и (R 6 ) (с-1мг-1)
Вид бактерий |
Содержание пероксидазы в субстратах (1,0х10-4) |
||
КС |
КЭ |
КЖ |
|
B.bifidum 1 |
1,69±0,1 |
0,35±0,04 |
0,31±0,03 |
B.bifidum 1 (R6) |
3,47±0,2 |
0,75±0,08 |
0,45±0,05 |
Примечание: КС – клеточная суспензия; КЭ – клеточный экстракт; культуральная жидкость
Активность фермента глютати-онпероксидазы у радиоустойчивого штамма кишечной палочки была в 3,55 раза и у бифидобактерий в 5,34 раза выше. На основе полученных радиомодифицирован-ных вариантов E.coli и B.bifidum были изготовлены 4 варианта радиопротектирую-щих препаратов, которые были исследованы на стерильность, безвредность и адгезивность.
Образцы препаратов, помещенные в бактерийные среды, в течение 10 суток оставались стерильными – роста микробной и грибковой флоры не было зарегистрировано.
Внутрибрюшное введение формол-препаратов белым мышам не повлияло на аппетит и поведенческие реакции у животных; содержание эритроцитов, лейкоцитов и тромбоцитов в периферической крови мышей оставалось в пределах физиологической нормы.
Нанесение препаратов кроликам на слизистые оболочки ротовой полости и глаз, внутрикожное и внутривенное применение показало отсутствие раздражающего и сенсибилизирующего действий.
Изучение противорадиационных свойств препаратов при профилактическом (за 1 сутки до) и лечебном (через 1 сутки после облучения) применении показало, что таковые при любом их использовании повышали, как среднюю продолжительность жизни, так и процент выживших животных. Выживание 80 % животных достигалось при использовании препаратов, изготовленных из радиомодифицирован-ных бактерий E.coli (R10). Количество выживших животных при применении B.bifidum (R6) составляло 60 %. Все мыши группы контроля облучения пали. Средняя продолжительность жизни животных:
-
- при профилактическом применении бактериальной массы E.coli (R 10 ) составляла 17,5 суток;
-
- при профилактическом применении бактериальной массы B.bifidum (R 6 ) – 16 суток;
-
- при профилактическом применении культуральной жидкости E.coli (R 10 ) – 15 суток;
-
- при лечебном применении бактериальной массы E.coli (R 10 ) – 14,5 суток;
-
- при лечебном применении культуральной жидкости E.coli (R 10 ) – 12,5 суток;
-
- при лечебном применении бактериальной массы B.bifidum (R 6 ) в культуральной жидкости – 14,5 суток;
-
- при профилактическом применении культуральной жидкости B.bifidum (R 6 ) – 12,5 суток;
-
- при лечебном применении культу-
- ральной жидкости B.bifidum (R6) – 12,5 суток;
-
- средняя продолжительность жизни только облученных животных составляла 6,9 суток.
Заключение. Получены стабильные радиорезистентные бактерии E.coli (R 10 ), выживающие при дозе 4 кГр (превышение исходного уровня в 2,14 раза) и бактерии B.bifidum (R 6 ), выживающие при дозе 2,4 кГр (превышение исходного уровня в 2,5 раза).
Штаммы образовывали колонии с шероховатыми краями различной величины, отдельные микробы на препаратах отличались увеличением размеров, неровностью структуры, полиморфностью и плотностью.
У радиомодифицированных штаммов кишечной палочки, по сравнению в нативной культурой в суспензионной и культуральной жидкостях содержалось в 2,18 и 1,67 раза больше пероксидазы и в 1,80 и 2,51 раза – дезоксирибонуклеиновой кислоты; в культуральной жидкости: в 2 раза – глицина; 1,8 – серина и 2,3 раза – цистеина.
Биохимические исследования культуральных жидкостей исходных препаратов показали, что содержание фермента глютатионпероксидазы у бактерий E.coli (R 10) и B.Bifidum (R 6 ) было в 3,55 и 5,34 раза выше, чем у исходных микроорганизмов. Формол-препараты, изготовленные из бактерийных масс и продуктов их метаболизма, обладали противорадиационными свойствами, защищая 60-80 % летально облученных животных, увеличивая среднюю продолжительность жизни павших до 11,5-17,5 дней.
Резюме
Воздействием последовательно увеличивающихся доз γ-излучения получены стабильные радиорезистентные бактерии, выживающие при дозах 4,0 (E.coli «R 10 ») и 2,4 кГр (B.bifidum «R 6 »). В отличие от исходных микроорганизмов радиорезистентные бактерии имели большее содержание ДНК, ферментов: супероксиддисмутазы, каталазы, глютатионпе-роксидазы, аминокислот глицина, серина, цистеина. Изготовленные из радиорезистентных штаммов препараты, отвечали серологическим требованиям, обладали противорадиационными свойствами, защищали 60-80 % летально облученных животных, до 11,5-17,5 суток увеличивали среднюю продолжительность жизни павших против 6,9 суток в группе контроля облучения.
DEVELOPMENT RADIOMODIFICATING OF MUTANTS OF MICROORGANISMS FOR
Список литературы Разработка радиомодифицированных мутантов микроорганизмов для профилактики и лечения радиационных поражений животных
- Бойко, С.С. Изучение влияния ультразвукового воздействия на споро- и неспорообразующие бактерии / С.С. Бойко, Е.С. Яценко // Вестник биотехнологии и физико-химической биологии им. Ю.А. Овчинникова. - 2018. - Т. 14. - № 1. - С. 102-105.
- Бухарин, О.В. Взаимодействие Bifidobacterium bifidum с представителями нормальной микрофлоры в микросимбиоценозе кишечника человека / О.В. Бухарин, Н.Б. Перунова, Е.В. Иванова // Бюллетень Оренбургского научного центра УрО РАН. - 2012. - № 3. - С. 4.
- Гребенюк, А.Н. Основы радиобиологии и радиационной медицины / А.Н. Гребенюк [и др.] // Уч. пособие. С.-П., 2012. - 225 с.
- Данилова, А.Н. Влияние лазерного излучения на молочнокислые бактерии / A.Н. Данилова [и др.] // Хранение и переработка сельскохозяйственного сырья. - 2017. - № 12. - С. 12-14.
- Морозов, И.И. О природе явления реактивации выживаемости бактерий Echerichia coli на поздних этапах инкубации в солевом буфере после воздействия ионизирующего излучения / И.И. Морозов, B.Г. Петин // Радиационная биология. Радиоэкология. - 2008. - Т. 48. - № 5. - С. 600-605.
- Морозов, И.И. Влияние высокоинтенсивного ионизирующего излучения на жизнеспособность бактерий Escherichia coli, культивируемых в солевом буфере без питательных добавок / И.И. Морозов, Г.В. Морозова, В.Г. Петин // Радиационная биология. Радиоэкология. - 2005. - Т. 45. -№ 3. - С. 305-309.
- Старовойтова, С.А. Иммунобиотики и их влияние на иммунную систему человека в норме и при патологии / С.А. Старовойтова, А.В. Карпов // Биотехнология. Теория и практика. - 2015. - № 4. - С. 10-20.