Развитие технологии прижизненного получения ооцитов у коров: современное состояние и направления исследований (обзор)
Автор: Чинаров Р.Ю.
Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology
Рубрика: Обзоры, проблемы
Статья в выпуске: 2 т.59, 2024 года.
Бесплатный доступ
Трансплантация эмбрионов - это эффективный метод генетического совершенствования крупного рогатого скота, получивший широкое распространение во всем мире (C. Smith, 1988; Н.А. Зиновьева с соавт., 2020). В 2015 году производство эмбрионов, получаемых in vitro (IVP-эмбрионы), впервые превысило число эмбрионов, получаемых по традиционной технологии MOET (IVD-эмбрионы), после чего продолжило расти, достигнув в 2021 году 79,7 % от общего объема произведенных эмбрионов (J.H.M. Viana, 2022). При этом 98,6 % IVP-эмбрионов получают из ооцитов, извлеченных посредством трансвагфинальной УЗИ-ассистированной пункции фолликулов (Ovum Pick-Up, OPU) (Р.Ю. Чинаров с соавт., 2023). В этой связи особую актуальность приобретает повышение результативности OPU/IVP в отношении количественных и качественных характеристик извлекаемых ооцит-кумулюсных комплексов (ОКК) (L.B. Ferré с соавт., 2023). Для повышения результативности OPU находят применение различные подходы: оптимизация технических параметров проведения OPU; проведение OPU на определенной стадии роста и развития фолликулов; увеличение числа одновременно растущих и созревающих фолликулов с помощью гонадотропинов; применение биомаркеров для отбора коров-доноров. Целью настоящего обзора стало рассмотрение факторов и приемов, которые влияют на количественные и качественные характеристики ооцит-кумулюсных комплексов, получаемых посредством трансвагинальной УЗИ-ассистированной пункции фолликулов, для определения направлений и методических подходов совершенствования технологии OPU/IVP. Показано влияние на результативность OPU таких параметров, как диаметр аспирационной иглы и давление вакуума (В.К. Пестис с соавт., 2016; F.A. Ward с соавт. 2000; Р.Ю. Чинаров с соавт., 2022), при этом оптимальные значения параметров зависят от типа оборудования и особенностей проведения процедуры оператором. Установлено, что результативность OPU может быть повышена при извлечении ОКК непосредственно после проявления фолликулярной волны до селекции доминантного фолликула (O.J. Ginther с соавт., 1996), при этом отмечена тенденция повышения компетенции яйцеклеток к развитию с увеличением размера фолликулов (L.J. Hagemann с соавт., 1999). По мнению других авторов, качество ооцитов не зависит от размера фолликулов, а в большей степени определяется фолликулярной фазой донора (M.M. Seneda с соавт., 2001). К технологическим приемам, используемым для приведения коров-доноров в нужную стадию полового цикла, относятся проведение OPU с определенным интервалом между сессиями, удаление доминантного фолликула и гормональная синхронизации полового цикла (M. Qi с соавт., 2013). В качестве способа повышения эффективности OPU заслуживает внимания стимуляция одновременного роста и развития большего числа фолликулов с помощью экзогенных гонадотропинов - фолликулостимулирующего гормона (ФСГ) и хорионического гонадотропина лошадей (лХГ) (G.A. Bó с соавт., 2014; L.B. Ferré с соавт., 2023), при этом ФСГ в большинстве случаев более эффективен (F. Rivera с соавт., 2011; Ongaratto F.L. с соавт., 2015; Г.Н. Сингина с соавт., 2019). Перспективным подходом повышения результативности OPU считается использование биомаркеров (G. Mazzoni с соавт., 2017; S. Umer с соавт., 2019; R. Kowsar с соавт., 2021). Таким образом, в настоящее время трансвагинальная пункция фолликулов под контролем УЗИ (OPU) - это основной источник яйцеклеток для коммерческого производства эмбрионов коров во всем мире, что обусловливает проведение исследований по повышению результативности OPU. Успехи в развитии технологии OPU/IVP значительны, но необходимо продолжить эксперименты с учетом генетических особенностей пород крупного рогатого скота для определения оптимальных значений технических и технологических параметров процедуры.
Коровы-доноры, ovum pick-up, фолликулы, трансвагинальная узи-ассистированная пункция, получение эмбрионов in vitro, ivp
Короткий адрес: https://sciup.org/142242464
IDR: 142242464 | DOI: 10.15389/agrobiology.2024.2.194rus
Список литературы Развитие технологии прижизненного получения ооцитов у коров: современное состояние и направления исследований (обзор)
- Зиновьева Н.А., Позябин С.В., Чинаров Р.Ю. Вспомогательные репродуктивные технологии: история становления и роль в развитии генетических технологий в скотоводстве (обзор). Сельскохозяйственная биология, 2020, 55(2): 225-242 (doi: 10.15389/agrobiology.2020.2.225rus).
- Boni R. Ovum pick-up in cattle: a 25 years retrospective analysis. Animal Reproduction, 2012, 9(3): 362-369.
- Smith C. Applications of embryo transfer in animal breeding. Theriogenology, 1988, 29(1): 203-212 (doi: 10.1016/0093-691X(88)90040-4).
- Kruip T.A., Pieterse M.C., Van Beneden T.H., Vos P.L.A.M., Yurth Y.A., Taverne M.A.M. A new method for bovine embryo production: a potential alternative to superovulation. Vet. Rec., 1991, 128(9): 208-210.
- Ferré L., Kjelland M., Strøbech L., Hyttel P., Mermillod P., Ross P. Review: Recent advances in bovine in vitro embryo production: reproductive biotechnology history and methods. Animal, 2019, 14(5): 991-1004 (doi: 10.1017/S1751731119002775).
- Чинаров Р.Ю., Луканина В.А. Производство эмбрионов крупного рогатого скота с использованием прижизненно получаемых ооцитов: мировые тренды и перспективы (обзор). Достижения науки и техники АПК, 2023, 37(9): 31-38.
- Viana J.H.M. 2021 Statistics of embryo production and transfer in domestic farm animals. Embryo Technology Newsletter, 2022, 40(4): 22-40.
- Sirard M.-A., Richard F., Blondin P., Robert C. Contribution of the oocyte to embryo quality. Theriogenology, 2006, 65(1): 126-136 (doi: 10.1016/j.theriogenology.2005.09.020).
- Bols P.E., Van Soom A., Ysebaert M.T., Vandenheede J.M., de Kruif A. Effects of aspiration vacuum and needle diameter on cumulus oocyte complex morphology and developmental capacity of bovine oocytes. Theriogenology, 1996, 45(5): 1001-1014 (doi: 10.1016/0093-691X(96)00028-3).
- Bols P.E., Ysebaert M.T., Van Soom A., de Kruif A. Effects of needle tip bevel and aspiration procedure on the morphology and developmental capacity of bovine compact cumulus oocyte complexes. Theriogenology, 1997, 47(6): 1221-1236 (doi: 10.1016/S0093-691X(97)00102-7).
- Ward F.A., Lonergan P., Enright B.P., Boland M.P. Factors affecting recovery and quality of oocytes for bovine embryo production in vitro using ovum pick-up technology. Theriogenology, 2000, 54(3): 433-446 (doi: 10.1016/S0093-691X(00)00360-5).
- Пестис В.К., Голубец Л.В., Дешко А.С., Кысса И.С., Попов М.В. Получение ооцитов коров путем трансвагинальной пункции фолликулов. Доклады национальной академии наук Беларуси, 2016, 60(1): 123-128.
- Goodhand K.L., Staines M.E., Hutchinson J.S.M., Broadbent P.J. In vivo oocyte recovery and in vitro embryo production from bovine oocyte donors treated with progestagen, oestradiol and FSH. Animal Reproduction Science, 2000, 63(3-4): 145-158 (doi: 10.1016/S0378-4320(00)00186-X).
- Pontes J.H.F., Nonato-Junior I., Sanches B.V., Ereno-Junior J.C., Uvo S., Barreiros T.R.R., Oliveira J.A., Hasler J.F., Seneda M.M. Comparison of embryo yield and pregnancy rate between in vivo and in vitro methods in the same Nelore (Bos indicus) donor cows. Theriogenology, 2009, 71(4): 690-697 (doi: 10.1016/j.theriogenology.2008.09.031).
- Aller J.F., Mucci N.C., Kaiser G.G., Ríos G., Callejas S.S., Alberio R.H. Transvaginal follicular aspiration and embryo development in superstimulated early postpartum beef cows and subsequent fertility after artificial insemination. Animal Reproduction Science, 2010, 119(1-2): 1-8 (doi: 10.1016/j.anireprosci.2009.11.009).
- Aller J.F., Mucci N.C., Kaiser G.G., Callejas S.S., Alberio R.H. Effect of repeated eCG treat-ments and ovum pick-up on ovarian response and oocyte recovery during early pregnancy in suckling beef cows. Animal Reproduction Science, 2012, 133: 10-15 (doi: 10.1016/j.anirepro-sci.2012.06.001).
- Oliveira L.H., Sanches C.P., Seddon A.S., Veras M.B., Lima F.A., Monteiro P.L.J. Jr., Wilt-bank M.C., Sartori R. Short communication: Follicle superstimulation before ovum pick-up for in vitro embryo production in Holstein cows. Journal of Dairy Science, 2016, 99(11): 9307-9312 (doi: 10.3168/jds.2016-11306).
- Vieira L.M., Rodrigues C.A., Castro Netto A., Guerreiro B.M., Silveira C.R.A., Moreira R.J.C., Sá Filho M.F., Bó G.A., Mapletoft R.J., Baruselli P.S. Superstimulation prior to the ovum pick-up to improve in vitro embryo production in lactating and non-lactating Holstein cows. Theri-ogenology, 2014, 82(2): 318-324 (doi: 10.1016/j.theriogenology.2014.04.013).
- Vieira L.M., Rodrigues C.A., Castro Netto A., Guerreiro B.M., Silveira C.R.A., Freitas B.G., Bragança L.G.M., Marques K.N.G., Sá Filho M.F., Bó G.A., Mapletoft R.J., Baruselli P.S. Ef-ficacy of a single intramuscular injection of porcine FSH in hyaluronan prior to ovum pick-up in Holstein cattle. Theriogenology, 2016, 85(5): 877-886 (doi: 10.1016/j.theriogenology.2015.10.036).
- Чинаров Р.Ю., Луканина В.А. Влияние технических параметров на результативность прижизненного получения ооцитов у телок симментальской породы. Достижения науки и техники АПК, 2022, 36(1): 46-50.
- Голубец Л.В., Дешко А.С., Кысса И.С., Драгун Т.Ю., Сехина М.А., Харитоник Д.Н. Морфологические особенности ооцит-кумулюсных комплексов, полученных путем трансваги-нальной пункции фолликулов. Зоотехническая науки Беларуси: сборник научных трудов, 2023, т. 58, ч. 1: 49-55.
- Грачев В.С. О некоторых теоретических вопросах в области воспроизводства сельскохозяйственных животных. Сб. науч. тр. по мат. межд. науч.-практ. конф. «Научное обеспечение развития АПК в условиях импортозамещения». СПб, 2020, т. 1: 172-176.
- Сарсадских А.А., Абрамов С.В. Регуляция воспроизводства крупного рогатого скота с помощью гормональных препаратов на основе бусерелина и D-клопростенола. Молочное и мясное скотоводство, 2015, 3: 29-32.
- Kanitz W., Brüssow K.P., Becker F., Torner H., Schneider F., Kubelka M., Tomek W. Compar-ative aspects of follicular development, follicular and oocyte maturation and ovulation in cattle and pigs. Achieves of Animal Breeding, 2001, 44 (Special issue): 9-23.
- Kanitz W. Follicular dynamic and ovulation in cattle: a review. Archive Tierzucht, 2003, 46(2): 187-198 (doi: 10.5194/aab-46-187-2003).
- Mossa F., Jimenez-Krassel F., Walsh S., Berry D.P., Butler S.T., Folger J., Smith G.W., Ire-land J.L., Lonergan P., Ireland J.J., Evans A.C. Inherent capacity of the pituitary gland to pro-duce gonadotropins is not influenced by the number of ovarian follicles 3 mm in diameter in cattle. Reproduction, Fertility and Development, 2010, 22: 550-557 (doi: 10.1071/RD09100).
- Mossa F., Walsh S.W., Butler S.T., Berry D.P., Carter F., Lonergan P., Smith G.W., Ireland J.J., Evans A.C. Low numbers of ovarian follicles 3 mm in diameter are associated with low fertility in dairy cows. Journal of Dairy Science, 2012, 95(5): 2355-2361 (doi: 10.3168/jds.2011-4325).
- Rüsse I. Oogenesis in cattle and sheep. Bibl. Anat., 1983, 24: 77-92.
- Erickson B.H. Development and senescence of the postnatal bovine ovary. Journal of Animal Science, 1966, 25(3): 800-805 (doi: 10.2527/jas1966.253800x).
- Evans A.C., Mossa F., Walsh S.W., Scheetz D., Jimenez-Krassel F., Ireland J.L., Smith G.W., Ireland J.J. Effects of maternal environment during gestation on ovarian folliculogenesis and con-sequences for fertility in bovine offspring. Reproduction in Domestic Animals, 2012, 47(Suppl. 4): 31-37 (doi: 10.1111/j.1439-0531.2012.02052.x).
- Баймишев Х.Б. Морфология яичников и репродуктивные качества телок в зависимости от возраста и двигательной активности. Ветеринария, 1999, 11: 33-34.
- Lucy M.C., Staples C.R., Michel F.M., Thatcher W.W. Energy balance and size and number of ovarian follicles detected by ultrasonography in early postpartum dairy cows. Journal of Dairy Science, 1991, 74: 473-482.
- Варенников М.В., Чомаев А.М., Оборин А.Е. Управление воспроизводством в молочном животноводстве. Изд. 2-е дополненное. М., 2014.
- Гавриченко Н.И., Турчанова Л.Н. Особенности течения фолликулогенеза в период полового цикла в яичниках коров с различным уровнем плодовитости. Актуальные проблемы интенсивного развития животноводства, 2014, 17(2): 193-198.
- Murphy M.G., Enright W.J., Crowe M.A., McConnell K., Spicer L.J., Boland M.P., Roche J.F. Effect of dietary intake on pattern of growth of dominant follicles during the oestrous cycle in beef heifers. J. Reprod. Fert., 1991, 92(2): 333-338 (doi: 10.1530/jrf.0.0920333).
- Hamilton S.A., Garverick H.A., Kesler D.H., Xu Z.Z., Loos K., Youngquist R.S., Salfen B.E. Characterization of ovarian follicular cysts and associated endocrine profiles in dairy cows. Biology of Reproduction, 1995, 53(4): 890-898 (doi: 10.1095/biolreprod53.4.890).
- Нежданов А.Г. Современное представление о половом цикле самок животных. Ветерина-рия, 2003, 11: 32-36.
- Кузьмич Р.Г., Ходыкин Д.С., Гарганчук А.А., Бычкова Т.К. Особенности функциональных нарушений яичников у молочных коров после родов и эффективность использования про-стагландиновой программы для индукции половой охоты. Ученые записки УО ВГАВМ, 2022, 58(2): 17-23.
- Перерядкина С.П., Авдеенко В.С., Кочарян В.Д., Кемешев Ж.О. Особенности фоллику-логенеза у коров мясных пород (казахская белоголовая, шевроле и герефорд) в контексте восстановления плодовитости. Известия Нижневолжского агроуниверситетского ком-плекса: наука и высшее профессиональное образование, 2018, 2(50): 227-235.
- Гавриченко Н.И., Левченко А.А. Особенности фолликулярного роста в течение полового цикла у коров с синдромом повторения половой охоты. Ученые записки УО ВГАВМ, 2021, 57(1): 13-16.
- Bungartz L., Lucas-Hahn A., Rath D., Nieman H. Collection of oocytes from cattle via follicular aspiration aided by ultrasound with or without gonadotropin pretreatment and in different repro-ductive stages. Theriogenology, 1995, 43(3): 667-675 (doi: 10.1016/0093-691X(94)00072-3).
- Lonergan P., Monaghan P., Rizos D., Boland M.P., Gordon I. Effect of follicle size on bovine oocyte quality and developmental competence following maturation, fertilization, and culture in vitro. Mol. Reprod. Dev., 1994, 37(1): 48-53 (doi: 10.1002/mrd.1080370107).
- Caixeta E.S., Ripamonte P., Franco M.M., Junior J.B., Dode M.A.N. Effect of follicle size on mRNA expression in cumulus cells and oocytes of Bos indicus: an approach to identify marker genes for developmental competence. Reproduction, Fertility and Development, 2009, 21: 655-664 (doi: 10.1071/RD08201).
- Brevini Gandolfi T.A., Gandolfi F. The maternal legacy to the embryo: cytoplasmic components and their effects on early development. Theriogenology, 2001, 55(6): 1255-1276 (doi: 10.1016/s0093-691x(01)00481-2).
- Dieleman S.J., Hendriksen P.J.M., Viuff D., Thomsen P.D., Hyttel P., Knijn H.M. Wren-zycki C., Kruip T.A.M., Niemann H., Gadella B.M., Bevers M.M., Vos P.L.A.M. Effects of in vivo prematuration and in vivo final maturation on developmental capacity and quality of pre-implantation embryos. Theriogenology, 2002, 57(1): 5-20 (doi: 10.1016/S0093-691X(01)00655-0).
- Seneda M.M., Esper C.R., Garcia J.M., de Oliveira J.A., Vantini R. Relationship between follicle size and ultrasound-guided transvaginal oocyte recovery. Animal Reproduction Science, 2001, 67: 37-43 (doi: 10.1016/s0378-4320(01)00113-0).
- Ginther O.J., Knopf L., Kastelic J.P. Temporal associations among ovarian events in cattle during oestrous cycles with two and three follicular waves. J. Reprod. Fert., 1989, 87: 223-230 (doi: 10.1530/jrf.0.0870223).
- Ginther O.J., Wiltbank M.C., Fricke P.M., Gibbons J.R., Kot K. Selection of the dominant follicle in cattle. Biology of Reproduction, 1996, 55(6): 1187-1194 (doi: 10.1095/biolreprod55.6.1187).
- Чинаров Р.Ю., Луканина В.А., Джагаев А.Ю., Сингина Г.Н. Определение оптимальной стадии полового цикла для проведения трансвагинальной УЗИ-ассистированной пункции фолликулов у лактирующих коров генофондной тагильской породы. Молочное и мясное скотоводство, 2023, 5: 24-27 (doi: 10.33943/MMS.2023.50.14.004).
- Pieterse M.C., Vos P.L.A.M., Kruip T.A.M., Wurth Y.A., van Beneden T.H., Willemse A.H., Taverne M.A.M. Transvaginal ultrasound guided follicular aspiration of bovine oocytes. Theri-ogenology, 1991, 35(4): 19-24 (doi: 10.1016/0093-691X(91)90426-E).
- Hagemann L.J., Beaumont S.E., Berg M., Donnison M.J., Ledgard A., Peterson A.J., Schur-mann A., Tervit H.R. Development during single IVP of bovine oocytes from dissected follicles: interactive effects of estrous cycle stage, follicle size and atresia. Mol. Reprod. Dev., 1999, 53: 451-458 (doi: 10.1002/(SICI)1098-2795(199908)53:4<451::AID-MRD11-3.0.CO;2-3).
- Hendriksen P.J., Steenweg W.N., Harkema J.C., Merton J.S., Bevers M.M, Vos P.L.A.M., Die-leman S.J. Effect of different stages of the follicular wave on in vitro developmental competence of bovine oocytes. Theriogenology, 2004, 61(5): 909-920 (doi: 10.1016/s0093-691x(03)00278-4).
- Demissie T., Yilma T., Degefa T., Wirtu G., Lemma A. Effect of follicular ablation and gonad-otropin priming on the recovery and quality of oocytes in Boran cows. International Journal of Veterinary Science and Research, 2021, 7(2): 138-143 (doi: 10.17352/ijvsr.000093).
- Gonçalves G.D., da Silva N.C., Costa C.B., Stolf R.L., de Almeida Rossignolo E.A., Cava-lieri F.L.B., Morotti F., Seneda M.M. Relationship between the time of OPU and in vitro embryo production. Anim. Reprod., 2022, 19(2 spe): e22077.
- Pavlok A., Lucas-Hahn A., Niemann H. Fertilization and developmental competence of bovine oocytes derived from different categories of antral follicles. Mol. Reprod. Dev., 1992, 31(1): 63-67 (doi: 10.1002/mrd.1080310111).
- Blondin P., Sirard M.A. Oocyte and follicular morphology as determining characteristics for de-velopmental competence in bovine oocytes. Mol. Reprod. Dev., 1995, 41(1): 54-62 (doi: 10.1002/mrd.1080410109).
- Qi M., Yao Y., Ma H., Wang J., Zhao X., Liu L., Tang X., Zhang L., Zhang S., Sun F. Trans-vaginal ultrasound guided Ovum Pick-up (OPU) in cattle. Journal of Biomimetics Biomaterials and Tissue Engineering, 2013, 18(2): 1000118.
- Чинаров Р.Ю., Луканина В.А., Сингина Г.Н., Тарадайник Н.П. Результативность получе-ния ооцитов коров при использовании различных временных режимов трансвагинальной пункции фолликулов. Достижения науки и техники АПК, 2020, 34(2): 57-60 (doi: 10.24411/0235-2451-2020-10212).
- Голубец Л.В. Эффективность различных режимов использования доноров при получении эмбрионов крупного рогатого скота in vitro в системе трансвагинальной аспирации ооци-тов (ТАО). Ученые записки УО ВГАВМ, 2021, 57(2): 87-91 (doi: 10.52368/2078-0109-2021-57-2-87-91).
- Chaubal S.A., Molina J.A., Ohlrichs C.L., Ferre L.B., Faber D.C., Bols P.E.J., Riesen J.W., Tian X., Yang X. Comparison of different transvaginal ovum pick-up protocols to optimise oocyte retrieval and embryo production over a 10-week period. Theriogenology, 2006, 65(8): 1631-1648 (doi: 10.1016/j.theriogenology.2005.07.020).
- Lopes A.S., Martinussen T., Greve T., Callesen H. Effect of days post-partum, breed and ovum pick- up scheme on bovine oocyte recovery and embryo development. Reproduction of Domestic Animals, 2006, 41(3): 196-203 (doi: 10.1111/j.1439-0531.2006.00683.x).
- Li F., Chen X., Pi W., Liu C., Shi Z. Collection of oocytes through transvaginal ovum pick-up for in vitro embryo production in Nanyang Yellow cattle. Reproduction of Domestic Animals, 2007, 42(6): 666-670 (doi: 10.1111/j.1439-0531.2006.00842.x).
- Boni R., Roelofsen M.W.M., Pieterse M.C., Kogut I., Kruip T.A.M. Follicular dynamics, re-peatability and predictability of follicular recruitment in cows submitted to repeated follicular puncture. Theriogenology, 1997, 48(2): 277-289 (doi: 10.1016/s0093-691x(97)84075-7).
- Boni R., Zicarelli L., Kruip T.A.M. Impact of Ovum Pick-Up (OPU) technique for research and animal breeding. In: Reproduction and Animal Breeding: Advances and Strategy /G. Enne, G.F. Greppi, A. Lauria (eds.). Elsevier, Amsterdam, 1995: 211-221.
- Simon L., Burgartz L., Rath D., Niemann H. Repeated bovine oocyte collection by means of a permanently rinsed ultrasound guided aspiration unit. Theriogenology, 1993, 39(1): 312 (doi: 10.1016/0093-691x(93)90167-4).
- Ding L.-J., Tian H.-B., Wang J.-J., Chen J., Sha H.-Y., Chen J.-Q., Cheng G.-X. Different intervals of ovum pick- up affect the competence of oocytes to support the preimplantation de-velopment of cloned bovine embryos. Molecular Reproduction and Development, 2008, 75(12): 1710-1715 (doi: 10.1002/mrd.20922).
- Ongaratto F.L., Rodriguez-Villamil P., Tribulo A., Bó G.A. Effect of follicle wave synchronization and gonadotropin treatments on the number and quality of cumulus-oocyte complex obtained by ultrasound-guided ovum pick-up in beef cattle. Anim. Reprod., 2015, 12(4): 876-883.
- Imai K., Tagawa M., Matoba S., Narita M., Kanayama K. Follicular growth, subsequent Ovum Pick-Up, and dominant follicle removal in cows. Reproduction, Fertility and Development, 2006, 18(2): 246-246 (doi: 10.1071/RDv18n2Ab277).
- de Carvalho Fernandes C.A., Miyauchi T.M., Silva de Figueiredo A.C., Palhão M.P., Varago F.C., Nogueira E.S.C., Neves J.P., Miyauchi T.A. Hormonal protocols for in vitro pro-duction of Zebu and taurine embryos. Pesq. Agropec. Bras., 2014, 49(10): 813-817 (doi: 10.1590/S0100-204X2014001000008).
- Cavalieri F.L.B., Morotti F., Seneda M.M., Colombo A.H.B., Andreazzi M.A., Emanuelli I.P., Rigolon L.P. Improvement of bovine in vitro embryo production by ovarian follicular wave syn-chronization prior to ovum pick-up. Theriogenology, 2018, 117: 57-60 (doi: 10.1016/j.theriogenol-ogy.2017.11.026).
- Caccia M., Bó G.A. Follicle wave emergence following treatment of CIDR-B implanted beef heifers with estradiol benzoate and progesterone. Theriogenology, 1998, 49(1): 341 (doi: 10.1016/S0093-691X(98)90694-X).
- Dayan A., Watanabe M.R., Watanabe Y.F. Fatores que interferem na produção comercial de embriões FIV. Arquivos da Faculdade de Veterinária UFRGS, 2000, 28: 181-185.
- Bó G.A., Baruselli P.S., Martinez M.F. Pattern and manipulation of follicular development in Bos indicus cattle. Animal Reproduction Science, 2003, 78(3-4): 307-326 (doi: 10.1016/s0378-4320(03)00097-6).
- Silva-Santos K.C., Siloto L.S., Santos G.M.G., Morotti F., Marcantonio T.N., Seneda M.M. Comparison of antral and preantral ovarian follicle populations between Bos indicus and Bos indicus taurus cows with high or low antral follicles counts. Reproduction in Domestic Animals, 2014, 49(1): 48-51 (doi: 10.1111/rda.12222).
- Baruselli P.S., de Sa Filho M.F., Martins C.M., Nasser L.F., Nogueira M.F.G., Barros C.M., Bó G.A. Superovulation and embryo transfer in Bos indicus cattle. Theriogenology, 2006, 65(1): 77-88 (doi: 10.1016/j.theriogenology.2005.10.006).
- Bacelar D., Max M.C., Padilha L.C., Barreiros T.R.R., Seneda M.M. Incremento na obtenção de oócitos em novilhas Nelore (Bos taurus indicus) tratadas com progesterona injetável e benzoato de estradiol. Semina: Ciências Agrárias, 2010, 31(1): 163-172 (doi: 10.5433/1679-0359.2010v31n1p163).
- Denicol A.C., Lopes G., Mendonça L.G.D., Rivera F.A., Guagnini F., Perez R.V., Lima J.R., Bruno R.G.S., Santos J.E.P., Chebel R.C. Low progesterone concentration during the develop-ment of the first follicular wave reduces pregnancy per insemination of lactating dairy cows. Journal of Dairy Science, 2012, 95(4): 1794-1806 (doi: 10.3168/jds.2011-4650).
- Goodhand K.L., Watt R.G., Stainer M.E., Hutchinson J.S.M., Broadbent J.P. In vivo oocyte recovery and in vitro embryo production from bovine donors aspirated at different frequencies or following FSH treatment. Theriogenology, 1999, 51(5): 951-961 (doi: 10.1016/S0093-691X(99)00041-2).
- van de Leemput E.E., Vos P.L.A.M., Zeinstra E.C., Severs M.M., van der Weijden G.C., Diele-man S.J. Improved in vitro embryo development using in vivo matured oocytes from heifers superovulated with a controlled preovulatory LH surge. Theriogenology, 1999, 52(2): 335-349 (doi: 10.1016/s0093-691x(99)00133-8).
- Blondin P., Vigneault C., Nivet A.L., Sirard M.A. Improving oocyte quality in cows and heifers — what have we learned so far? Anim Reprod., 2012, 9: 281-289.
- Mapletoft R., Pawlyshyn V., Garcia A., Bó G., Willmott N., Saunders J., Schmutz S. Comparison of four different gonadotropin treatments for inducing superovulation in cows with 1:29 translo-cation. Theriogenology, 1990, 33: 282.
- Monniaux D., Chupin D., Saumande J. Superovulatory responses of cattle. Theriogenology, 1983, 19(1): 55-81 (doi: 10.1016/0093-691X(83)90124-3).
- De Roover R., Bols P.E.J., Genicot G., Hanzen C.H. Characterisation of low, medium and high responders following FSH stimulation prior to ultrasound-guided transvaginal oocyte retrieval in cows. Theriogenology, 2005, 63(7): 1902-1913 (doi: 10.1016/j.theriogenology.2004.08.011).
- Сингина Г.Н., Гавличек В., Тарадайник Н.П., Чинаров Р.Ю., Тарадайник Т.Е., Шедова Е.Н. Трансвагинальная аспирация фолликулов и способность OPU-ооцитов коров к эмбрио-нальному развитию в условиях in vitro. Молочное и мясное скотоводство, 2019, 6: 17-19 (doi: 10.33943/MMS.2019.6.39670).
- Goulding D., Williams D., Roche J., Boland M. Factors affecting superovulation in heifers treated with PMSG. Theriogenology, 1996, 45(4): 765-773 (doi: 10.1016/0093-691x(96)00006-4).
- Bó G.A., Mapletoft R.J. Historical perspectives and recent research on superovulation in cattle. Theriogenology, 2014, 81(1): 38-48 (doi: 10.1016/j.theriogenology.2013.09.020).
- Murphy B.D., Martinuk S.D. Equine chorionic gonadotropin. Endocrine Reviews, 1991, 12(1): 27-44 (doi: 10.1210/edrv-12-1-27).
- Schams D., Menzer D., Schalenberger E., Hoffman B., Hahn J., Hahn R. Some studies of the pregnant mare serum gonadotrophin (PMSG) and on endocrine responses after application for superovulation in cattle. In: Control of reproduction in the cow /J.M. Sreenan (ed.). Martinus Nijhoff, The Hague, 1978: 122-142.
- Mikel-Jenson A., Greve T., Madej A., Edqvist L.-E. Endocrine profiles and embryo quality in the PMSG-PGF2a-treated cow. Theriogenology, 1982, 18(1): 33-34 (doi: 10.1016/0093-691X(82)90046-2).
- Moor R., Kruip T., Green D. Intraovarian control of folliculogenesis: limits to superovulation? Theriogenology, 1984, 21(1): 103-116 (doi: 10.1016/0093-691X(84)90310-8).
- Greve T., Callesen H., Hyttel P., Hoier R., Assey R. The effects of exogenous gonadotropins on oocyte and embryo quality in cattle. Theriogenology, 1995, 43(1): 41-50 (doi: 10.1016/0093-691X(94)00013-K).
- Callesen H., Greve T., Hyttel P. Preovulatory endocrinology and oocyte maturation in superov-ulated cattle. Theriogenology, 1986, 25(1): 71-86 (doi: 10.1016/0093-691X(86)90184-6).
- Demoustier M.M., Beckers J.-Fr., Van Der Zwalmen P., Closset J., Gillard J.-L., Ectors F. Determination of porcine plasma follitropin levels during superovulation treatment in cows. The-riogenology, 1988, 30(2): 379-386 (doi: 10.1016/0093-691x(88)90185-9).
- Blondin P., Bousquet D., Twagiramungu H., Barnes F., Sirard M.-A. Manipulation of follicular development to produce developmentally competent bovine oocytes. Biology of Reproduction, 2002, 66(1): 38-43 (doi: 10.1095/biolreprod66.1.38).
- Nivet A.-L., Bunel A., Labrecque R., Belanger J., Vigneault C., Blondin P., Sirard M.-A. FSH withdrawal improves developmental competence of oocytes in the bovine model. Reproduction, 2012, 143(2): 165-171 (doi: 10.1530/REP-11-0391).
- Arreseigor C.J., Gutiérrez-Reinoso M.A., Driedger B., Pereira A., Arza-Spinzi F., Garcia-Her-reros M. Differential oocyte recovery rates after ovum pickup and in vitro embryo production in Charolais and Hereford cattle breeds. Anim Reprod., 2023, 20(2): 4.
- Sendag S., Cetin Y., Muhammet A., Hadeler K.G., Niemann H. Effects of eCG and FSH on ovarian response, recovery rate and number and quality of oocytes obtained by ovum pick-up in Holstein cows. Animal Reproduction Science, 2008, 106(1-2): 208-214 (doi: 10.1016/j.anirepro-sci.2008.01.007).
- Hiraizumi S., Nishinomiya H., Oikawa T., Sakagami N., Sano F., Nishino O., Kurahara T., Nishimoto N., Ishiyama O., Hasegawa Y., Hashiyada Y. Superovulatory response in Japanese Black cows receiving a single subcutaneous porcine follicle-stimulating hormone treatment or six intramuscular treatments over three days. Theriogenology, 2015, 83(4): 466-473 (doi: 10.1016/j.theriogenology.2014.09.012).
- Chasombat J., Sakhong D., Nagai T., Parnpai R., Vongpralub T. Superstimulation of follicular growth in Thai native heifers by a single administration of follicle stimulating hormone dissolved in polyvinylpyrrolidone. Journal of Reproduction and Development, 2013, 59(3): 214-218 (doi: 10.1262/jrd.2012-119).
- Hashimoto S., Kimura K., Kuramochi T., Aoyagi K., Hirako M., Kawaguchi M., Iwata H., Hirao M., Kitada K., Hirasawa K., Ueda M. Responsiveness of rabbits to superovulation treat-ment by a single injection of follicle-stimulating hormone with aluminum hydroxide gel. Mol. Reprod. Dev., 2007, 74(9): 1208-1212 (doi: 10.1002/mrd.20672).
- Tríbulo A., Rogan D., Tríbulo H., Tríbulo R., Mapletoft R.J., Bó G.A. Superovulation of beef cattle with a split-single intramuscular administration of Folltropin-V in two concentrations of hyaluronan. Theriogenology, 2012, 77(8): 1679-1685 (doi: 10.1016/j.theriogenology.2011.12.013).
- Ongaratto F.L., Tribulo A., Ramos M., Rodriguez P., Bó G.A. Oocyte recovery rates and in vitro blastocyst production in cattle treated with a single injection of folltropin-v diluted in a slow-release formulation. Reproduction, Fertility and Development, 2011, 23(1): 202-203 (doi: 10.1071/RDv23n1Ab207).
- Bó G.A. Simplified superstimulation programs for in vivo and in vitro embryo production in cattle. Proc. 31st World Buiatrics Congress. Madrid, 2022, K80: 56-57.
- Nasser L., Sá Filho M., Reis E., Rezende C., Mapletoft R., Bó G., Baruselli P.S. Exogenous progesterone enhances ova and embryo quality following superstimulation of the first follicular wave in Nelore (Bos indicus) donors. Theriogenology, 2011, 76(2): 320-327 (doi: 10.1016/j.theri-ogenology.2011.02.009).
- Rivera F., Mendonca L., Lopes G., Santos J., Perez R., Amstalden M., Correa-Calderón A., Chebel R.C. Reduced progesterone concentration during growth of the first follicular wave affects embryo quality but has no effect on embryo survival post-transfer in lactating dairy cows. Repro-duction, 2011, 141(3): 333-342 (doi: 10.1530/REP-10-0375).
- Ribas B.N., Missio D., Junior Roman I., Neto N.A., Claro I. Junior, dos Santos Brum D., Leivas F.G. Superstimulation with eCG prior to ovum pick-up improves follicular development and fertilization rate of cattle oocytes. Animal Reproduction Science, 2018, 195: 284-290 (doi: 10.1016/j.anireprosci.2018.06.006).
- Son D.-S., Choe C.-Y., Cho S.-R., Choi S.-H., Kim H.-J., Hur T.-Y., Jung Y.-G., Kang H.-G., Kim I.-M. A CIDR-based timed embryo transfer protocol increases the pregnancy rate of lactat-ing repeat breeder dairy cows. Journal of Reproduction and Development, 2007, 53(6): 1313-1318 (doi: 10.1262/jrd.19066).
- Ferré L.B., Alvarez-Gallardo H., Romo S., Fresno C., Stroud T., Stroud B., Lindsey B., Kjel-land M.E. Transvaginal ultrasound-guided oocyte retrieval in cattle: State-of-the-art and its im-pact on the in vitro fertilization embryo production outcome. Reproduction in Domestic Animals, 2023, 58(3): 363-378 (doi: 10.1111/rda.14303).
- Monniaux D., Barbey S., Rico C., Fabre S., Gallard Y., Larroque H. Anti-Müllerian hormone: a predictive marker of embryo production in cattle? Reproduction, Fertility and Development, 2010, 22(7): 1083-1091 (doi: 10.1071/RD09279).
- Mazzoni G., Salleh S.M., Freude K., Pedersen H.S., Stroebech L., Callesen H., Hyttel P., Ka-darmideen H.N. Identification of potential biomarkers in donor cows for in vitro embryo produc-tion by granulosa cell transcriptomics. PLoS ONE, 2017, 12(4): e0175464 (doi: 10.1371/jour-nal.pone.0175464).
- Kowsar R., Komeili M., Sadeghi N., Sadeghi K. Multistep analysis reveals the relationship be-tween blood indices at the time of ovum pick-up and in vitro embryo production in heifers. Theriogenology, 2021, 159: 153-164 (doi: 10.1016/j.theriogenology.2020.10.026).
- Umer S., Zhao S.J., Sammad A., Sahlu B.W., Pang Y., Zhu H. AMH: Could it be used as a biomarker for fertility and superovulation in domestic animals? Genes, 2019, 10(12): 1009 (doi: 10.3390/genes10121009).
- Stojsin-Carter A., Mahboubi K., Costa N.N., Gillis D.J., Carter T.F., Neal M.S., Miranda M.S., Ohashi O.M., Favetta L.A., King W.A. Systemic and local anti-Mullerian hormone reflects dif-ferences in the reproduction potential of Zebu and European type cattle. Animal Reproduction Science, 2016, 167: 51-58 (doi: 10.1016/j.anireprosci.2016.02.003).