Репродуктивная функция коров (Bos taurus) под влиянием различных кисспептинов (обзор)

Автор: Ширяев Г.В., Притужалова А.О., Никитин Г.С., Никиткина Е.В., Мусидрай А.А., Алексеева А.Ю.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Обзоры, проблемы

Статья в выпуске: 6 т.58, 2023 года.

Бесплатный доступ

Кисспептины (КП), представляющие собой семейство пептидов различной длины, и их рецептор (KISS1R) совместно с гонадотропин-рилизинг-гормоном (Гн-РГ), гонадотропинами (лютеинизирующий и фолликулостимулирующий гормоны) и половыми стероидами, - важные регуляторы репродукции у животных (S. Ohkura с соавт., 2009; K.-L. Hu с соавт., 2018). Активное изучение КП началось в 2003 году, однако в настоящее время собрано недостаточно сведений о возможностях целенаправленно и эффективно управлять половым циклом коров Bos taurus (особенно молочного направления) с помощью КП (B.R. Alves и соавт., 2015; T. Songphasuk и соавт., 2021). КП продуцируются главным образом в нейронах различных ядер гипоталамуса (V. Prashar с соавт., 2023). Расположение таких нейронов видоспецифично, поэтому подходы к управлению с их помощью репродуктивной функцией могут различаться (A. Gunn и соавт., 2020). КП - это продукты гидролиза гидрофобного прогормона, кодируемого геном kiss1 . Сначала КП гидролизуется до КП-53, который в дальнейшем распадается до более коротких пептидов (КП-14, КП-13 и КП-10), обладающих различной биологической активностью (A.E. Oakley и соавт., 2009; J. Tomikawa и соавт., 2010). Нейроны, продуцирующие КП, также коэкспрессируют пептидные нейротрансмиттеры - нейрокинин B (NKB) и динорфин, что определило название этой популяции нервных клеток (KNDy-нейроны, кисспептин/нейрокинин B/динорфин) (R.L. Goodman и соавт., 2013; Q. Xie и соавт., 2022). У крупного рогатого скота (КРС) KNDy-нейроны в основном присутствуют в аркуатном ядре гипоталамуса, которое считается важным как для положительной, так и для отрицательной обратной регуляции синтеза Гн-РГ половыми стероидами (A. Hassaneen и соавт., 2016; Y. Uenoyama и соавт., 2021). С использованием гистохимического метода продемонстрировано, что активация KNDy-нейронов у КРС зависит от фазы полового цикла (A. Hassaneen с соавт., 2016). Кисспептин-, нейрокинин В-, и динорфин-иммунореактивные клеточные тела и волокна обнаружены по всему аркуатному ядру гипоталамуса во всех фазах. В отличие от аркуатного ядра, многочисленные кисспептин-иммунореактивные клеточные тела обнаружены в преоптической области гипоталамуса в фолликулярную фазу цикла, тогда как в лютеиновую фазу зафиксировано лишь несколько иммунореактивных клеточных тел. Что касается нейрокинина В, то в преоптической области обнаружено небольшое количество нейрокинин В-иммунореактивных клеточных тел и волокон как в фолликулярную, так и в лютеиновую фазы. При этом динорфин-иммунореактивных клеточных тел и волокон в фолликулярную фазу было больше, чем в лютеиновую. В этом отношении КРС ближе к овцам и приматам, включая человека (V.M. Tanco с соавт., 2016). С первоначальной идентификации KND-нейронов, продуцирующих КП, остается большое число нерешенных вопросов, касающихся функции различных популяций этих нервных клеток в зависимости от локализации, а также о возможностях новых технологий для их изучения, в том числе применительно к Bos taurus . Существует необходимость изучения различных концентраций кисспептинов и их влияния на возможность овуляции у коров. В настоящем обзоре рассмотрены основные сведения о локализации и структурно-функциональной характеристике КП Bos taurus , о распределении и функции нейронов КП в головном мозге, о содержании КП в крови и их влиянии на органы репродуктивной системы. Отдельно освещены вопросы экзогенной регуляции КП функционирования репродуктивной системы у Bos taurus . Основное внимание уделено исследованиям, где главным объектом были животные вида Bos taurus.

Еще

Bos taurus, коровы, гормон, половой цикл, кисспептин, гонадотропин-рилизинг-гормон, нейроны

Короткий адрес: https://sciup.org/142240686

IDR: 142240686   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2023.6.974rus

Список литературы Репродуктивная функция коров (Bos taurus) под влиянием различных кисспептинов (обзор)

  • Abreu A.P., Kaiser U.B. Pubertal development and regulation. The Lancet Diabetes & Endocri-nology, 2016, 4(3): 254-264 (doi: 10.1016/S2213-8587(15)00418-0).
  • Pielecka-Fortuna J., Chu Z., Moenter S. Kisspeptin acts directly and indirectly to increase Gon-adotropin-Releasing hormone neuron activity and its effects are modulated by estradiol. Endocri-nology, 2008, 149(4): 1979-86 (doi: 10.1210/en.2007-1365).
  • Uenoyama Y., Inoue N., Nakamura S., Tsukamura H. Kisspeptin neurons and estrogen-estrogen receptor α signaling: unraveling the mystery of steroid feedback system regulating mammalian reproduction. International Journal of Molecular Sciences, 2021, 22(17): 9229 (doi: 10.3390/ijms22179229).
  • Hu K.-L., Zhao H., Chang H.-M., Yu Y., Qiao, J. Kisspeptin/Kisspeptin receptor system in the ovary. Frontiers in Endocrinology, 2018, 8: 365 (doi: 10.3389/fendo.2017.00365).
  • Prashar V., Arora T., Singh R., Sharma A., Parkash J. Hypothalamic kisspeptin neurons: integral elements of the GnRH system. Reproductive Sciences, 2023, 30(3): 802-822 (doi: 10.1007/s43032-022-01027-5).
  • Oakley A.E., Clifton D.K., Steiner R.A. Kisspeptin signaling in the brain. Endocrine Reviews, 2009, 30(6): 713-743 (doi: 10.1210/er.2009-0005).
  • Ohkura S., Uenoyama Y., Yamada S., Homma T., Takase K., Inoue N., Maeda K-I., Tsukamura H. Physiological role of metastin/kisspeptin in regulating gonadotropinreleasing hormone (GnRH) se-cretion in female rats. Peptides, 2009, 30(1): 49-56 (doi: 10.1016/j.peptides.2008.08.004).
  • Clarke I.J. Control of GnRH secretion: one step back. Frontiers in Neuroendocrinology, 2011, 32(3): 367-375 (doi: 10.1016/j.yfrne.2011.01.001).
  • Goodman R.L., Maltby M.J., Millar R.P., Hileman S.M., Nestor C.C., Whited B., Tseng A.S., Coolen L.M., Lehman M.N. Evidence that dopamine acts via kisspeptin to hold GnRH pulse frequency in check in anestrous ewes. Endocrinology, 2012, 153(12): 5918-27 (doi: 10.1210/en.2012-1611).
  • Caraty A., Decourt C., Briant C., Beltramo M. Kisspeptins and the reproductive axis: potential applications to manage reproduction in farm animals. Domestic Animal Endocrinology, 2012, 43(2): 95-102 (doi: 10.1016/j.domaniend.2012.03.002).
  • Tomikawa J., Homma T., Tajima S., Shibata T., Inamoto Y., Takase K., Inoue N., Ohkura S., Uenoyama Y., Maeda K.-I., Tsukamura H. Molecular characterization and estrogen regulation of hypothalamic KISS1 gene in the pig. Biology of Reproduction, 2010, 82(2): 313-319 (doi: 10.1095/biolreprod.109.079863).
  • Uenoyama Y., Nagae M., Tsuchida H., Inoue N., Tsukamura H. Role of KNDy neurons ex-pressing kisspeptin, neurokinin B, and dynorphin A as a GnRH pulse generator controlling mam-malian reproduction. Front. Endocrinol., 2021, 12: 724632 (doi: 10.3389/fendo.2021.724632).
  • Ohkura S., Takase K., Matsuyama S., Mogi K., Ichimaru T., Wakabayashi Y., Uenoyama Y., Mori Y., Steiner R.A., Tsukamura H., Maeda K.-I., Okamura H. Gonadotrophinreleasing hor-mone pulse generator activity in the hypothalamus of the goat. Journal of Neuroendocrinology, 2009, 21(10): 813-821 (doi: 10.1111/j.1365-2826.2009.01909.x).
  • Kotani M., Detheux M., Vandenbogaerde A., Communi D., Vanderwinden J.M., Le Poul E., Brézillon S., Tyldesley R., Suarez-Huerta N., Vandeput F., Blanpain C., Schiffmann S.N., Vas-sart G., Parmentier M. The metastasis suppressor gene KiSS-1 encodes kisspeptins, the natural ligands of the orphan G protein-coupled receptor GPR54. The Journal of Biological Chemistry, 2001, 276(37): 34631-34636 (doi: 10.1074/jbc.M104847200).
  • Ohtaki T., Shintani Y., Honda S., Matsumoto H., Hori A., Kanehashi K., Terao Y., Kumano S., Takatsu Y., Masuda Y., Ishibashi Y., Watanabe T., Asada M., Yamada T., Suenaga M., Kitada C., Usuki S., Kurokawa T., Onda H., Nishimura O., Fujino M. Metastasis suppressor gene KiSS-1 encodes peptide ligand of a G-protein-coupled receptor. Nature, 2001, 411(6837): 613-617 (doi: 10.1038/35079135).
  • Foradori C.D., Amstalden M., Goodman R.L., Lehman M.N. Colocalisation of dynorphin A and neurokinin B immunoreactivity in the arcuate nucleus and median eminence of the sheep. Journal of Neuroendocrinology, 2006, 18(7): 534-541 (doi: 10.1111/j.1365-2826.2006.01445.x).
  • Goodman R.L., Lehman M.N., Smith J.T., Coolen L.M., de Oliveira C.V., Jafarza-dehshirazi M.R., Pereira A., Iqbal J., Caraty A., Ciofi P., Clarke I.J. Kisspeptin neurons in the arcuate nucleus of the ewe express both dynorphin A and neurokinin B. Endocrinology, 2007, 148(12): 5752-5760 (doi: 10.1210/en.2007-0961).
  • Goodman R.L., Hileman S.M., Nestor C.C., Porter K.L., Connors J.M., Hardy S.L., Mil-lar R.P., Cernea M., Coolen L.M., Lehman M.N. Kisspeptin, neurokinin B, and dynorphin act in the arcuate nucleus to control activity of the GnRH pulse generator in ewes. Endocrinology, 2013, 154(11): 4259-4269 (doi: 10.1210/en.2013-1331).
  • Xie Q., Kang Y., Zhang C., Xie Y., Wang C., Liu J., Yu C., Zhao H., Huang D. The role of kisspeptin in the control of the hypothalamic-pituitary-gonadal axis and reproduction. Front. En-docrinol., 2022, 13: 925206 (doi: 10.3389/fendo.2022.925206).
  • Burke M.C., Letts P.A., Krajewski S.J., Rance N.E. Coexpression of dynorphin and neurokinin B immunoreactivity in the rat hypothalamus: Morphologic evidence of interrelated function within the arcuate nucleus. J. Comp. Neurol., 2006, 498(5): 712-726 (doi: 10.1002/cne.21086).
  • Cheng G., Coolen L.M., Padmanabhan V., Goodman R.L., Lehman M.N. The kisspeptin/neu-rokinin B/dynorphin (KNDy) cell population of the arcuate nucleus: sex differences and effects of prenatal testosterone in sheep. Endocrinology, 2010, 151(1): 301-311 (doi: 10.1210/en.2009-0541).
  • Hassaneen A., Naniwa Y., Suetomi Y., Matsuyama S., Kimura K., Ieda N., Inoue N., Uenoyama Y., Tsukamura H., Maeda K.-I., Matsuda F., Ohkura S. Immunohistochemical char-acterization of the arcuate kisspeptin/neurokinin B/dynorphin (KNDy) and preoptic kisspeptin neuronal populations in the hypothalamus during the estrous cycle in heifers. Journal of Repro-duction and Development, 2016, 62(5): 471-477 (doi: 10.1262/jrd.2016-075).
  • Alves B.R., Cardoso R.C., Prezotto L.D., Thorson J.F., Bedenbaugh M., Sharpton S.M., Caraty A., Keisler D.H., Tedeschi L.O., Williams G.L., Amstalden M. Elevated body weight gain during the juvenile period alters neuropeptide Y-gonadotropin-releasing hormone circuitry in pre-pubertal heifers. Biology of Reproduction, 2015, 92(2): 46 (doi: 10.1095/biolreprod.114.124636).
  • Songphasuk T., Wannapong N., Thanantong N., Sajapitak S. Preliminary study of kisspeptin mRNA-expressing neurons at POA and ARC in hypothalamus of beef cattle. Journal of Mahanakorn Veterinary Medicine, 2021, 16(1): 99-107.
  • Gunn A., Rose J., Scott C., Scott R. Kisspeptin and RFamide-related peptide 3 neurons in bovine hypothalamus: estrogen receptor expression and inputs to gonadotrophin releasing hormone neu-rons. In: SFT — Theriogenology Annual Conference Online, 2020 by Society for Theriogenology. Режим доступа: https://www.ivis.org/library/sft/sft-theriogenology-annual-conference-online-2020#table-of-content. Без даты.
  • Franceschini I., Lomet D., Cateau M., Delsol G., Tillet Y., Caraty A. Kisspeptin immunoreactive cells of the ovine preoptic area and arcuate nucleus co-express estrogen receptor alpha. Neurosci-ence Letters, 2006, 401(3): 225-230 (doi: 10.1016/j.neulet.2006.03.039).
  • Foradori C.D., Goodman R.L., Adams V.L., Valent M., Lehman M.N. Progesterone increases dynorphin a concentrations in cerebrospinal fluid and preprodynorphin messenger ribonucleic acid levels in a subset of dynorphin neurons in the sheep. Endocrinology, 2005, 146(4): 1835-1842 (doi: 10.1210/en.2004-1326).
  • Ruiz-Pino F., Navarro V.M., Bentsen A.H., Garcia-Galiano D., Sanchez-Garrido M.A., Ciofi P., Steiner R.A., Mikkelsen J.D., Pinilla L., Tena-Sempere M. Neurokinin B and the con-trol of the gonadotropic axis in the rat: developmental changes, sexual dimorphism, and regulation by gonadal steroids. Endocrinology, 2012, 153(10): 4818-4829 (doi: 10.1210/en.2012-1287).
  • Tanco V.M., Whitlock B.K., Jones M.A., Wilborn R.R., Brandebourg T.D., Foradori C.D. Dis-tribution and regulation of gonadotropin-releasing hormone, kisspeptin, RF-amide related pep-tide-3, and dynorphin in the bovine hypothalamus. PeerJ, 2016, 4: e1833 (doi: 10.7717/peerj.1833).
  • Clarkson J., Herbison A.E. Postnatal development of kisspeptin neurons in mouse hypothalamus; sexual dimorphism and projections to gonadotropin-releasing hormone neurons. Endocrinology, 2006, 147(12): 5817-5825 (doi: 10.1210/en.2006-0787).
  • Smith J.T., Clay C.M., Caraty A., Clarke I.J. KiSS-1 messenger ribonucleic acid expression in the hypothalamus of the ewe is regulated by sex steroids and season. Endocrinology, 2007, 148(3): 1150-1157 (doi: 10.1210/en.2006-1435).
  • Wakabayashi Y., Nakada T., Murata K., Ohkura S., Mogi K., Navarro V.M., Clifton D.K., Mori Y., Tsukamura H., Maeda K., Steiner R.A., Okamura H. Neurokinin B and dynorphin A in kisspeptin neurons of the arcuate nucleus participate in generation of periodic oscillation of neural activity driving pulsatile gonadotropin-releasing hormone secretion in the goat. Journal of Neuroscience, 2010, 30(8): 3124-3132 (doi: 10.1523/JNEUROSCI.5848-09.2010).
  • Tsukamura H. Kobayashi Award 2019: The neuroendocrine regulation of the mammalian reproduc-tion. General and Comparative Endocrinology, 2022, 315: 113755 (doi: 10.1016/j.ygcen.2021.113755).
  • Ikegami K., Minabe S., Ieda N., Goto T., Sugimoto A., Nakamura S., Inoue N., Oishi S., Maturana A. D., Sanbo M., Hirabayashi M., Maeda K.-I., Tsukamura H., Uenoyama Y. Evi-dence of involvement of neurone-glia/neurone-neurone communications via gap junctions in synchronised activity of KNDy neurones. Journal of Neuroendocrinology, 2017, 29(6): 1-14 (doi: 10.1111/jne.12480).
  • Scott C.J., Rose J.L., Gunn A.J., McGrath B.M. Kisspeptin and the regulation of the reproductive axis in domestic animals. Journal of Endocrinology, 2019, 240(1): R1-R16 (doi: 10.1530/JOE-18-0485).
  • Чернуха Г.Е., Табеева Г.И., Гусев Д.В., Шмаков Р.Г. Кисспептин и репродуктивная си-стема. Доктор.Ру, 2017, 3(132): 73-78.
  • Clarke I.J., Reed C.B., Burke C.R., Li Q., Meier S. Kiss1 expression in the hypothalamic arcuate nucleus is lower in dairy cows of reduced fertility. Biology of Reproduction, 2022, 106(4): 802-813 (doi: 10.1093/biolre/ioab240).
  • Ghaderpour S., Ghiasi R., Heydari H., Keyhanmanesh R. The relation between obesity, kisspep-tin, leptin, and male fertility. Hormone Molecular Biology and Clinical Investigation, 2022, 43(2): 235-247 (doi: 10.1515/hmbci-2021-0058).
  • Leonardi C.E., Carrasco R.A., Dias F.C., Adams G.P., Singh J. Distribution of gonadotropin-releasing hormone and kisspeptin neurons in the preoptic area and hypothalamus during the estrous cycle in cows. Reproduction, Fertility and Development, 2018, 30(1): 191-192 (doi: 10.1071/RDv30n1Ab104).
  • Moore A.M., Coolen L.M., Porter D.T., Goodman R.L., Lehman M.N. KNDy cells revisited. Endocrinology, 2018, 159(9): 3219-3234 (doi: 10.1210/en.2018-00389).
  • Cardoso C., Alves B.R.C., Williams G.L. Neuroendocrine signaling pathways and the nutritional control of puberty in heifers Rodolfo. Anim. Reprod., 2018, 15(1): 868-878 (doi: 10.21451/1984-3143-AR2018-0013).
  • Cardoso R.C., Alves B.R., Sharpton S.M., Williams G.L., Amstalden M. Nutritional program-ming of accelerated puberty in heifers: involvement of pro-opiomelanocortin neurones in the arcuate nucleus. J. Neuroendocrinol., 2015, 27(8): 647-657 (doi: 10.1111/jne.12291).
  • Rønnekleiv O.K., Qiu, J., Kelly M.J. Arcuate kisspeptin neurons coordinate reproductive activities with metabolism. Seminars in Reproductive Medicine, 2019, 37(3): 131-140 (doi: 10.1055/s-0039-3400251).
  • Rizzo A., Ceci E., Guaricci A.C., Sciorsci R.L. Kisspeptin in the early postpartum of the dairy cow. Reproduction in Domestic Animals, 2018, 54(2): 195-198 (doi: 10.1111/rda.13325).
  • Rizzo A., Piccinno M., Ceci E., Pantaleo M., Mutinati M., Roncetti M., Sciorsci R.L. Kis-speptin and bovine follicular cysts. Veterinaria Italiana, 2018, 54(1): 29-31 (doi: 10.12834/VetIt.1014.5413.3).
  • D’Occhio M.J., Campanile G., Baruselli P.S. Peripheral action of kisspeptin at reproductive tissues — role in ovarian function and embryo implantation and relevance to assisted repro-ductive technology in livestock: a review. Biology of Reproduction, 2020, 103(6): 1157-1170 (doi: 10.1093/biolre/ioaa135).
  • Liu H., Mesalam A., Joo M.-D., Zhang S., Xu L., Wang J., Lee K.-L., Song S.-H., Yuan Y.-G., Lu W., Kong I.-K. Fibronectin protected bovine preantral follicles from the deleterious effects of Kisspeptin. Theriogenology, 2020, 161: 301-312 (doi: 10.1016/j.theriogenology.2020.12.017).
  • Liu H., Xu G., Yuan Z., Dong Y., Wang J., Lu W. Effect of kisspeptin on the proliferation and apoptosis of bovine granulosa cells. Animal Reproduction Science, 2017, 185: 1e7 (doi: 10.1016/j.anireprosci.2017.07.008).
  • Guo L., Xu H., Li Y., Liu H., Zhao J., Lu W., Wang J. Kisspeptin-10 promotes progesterone synthesis in bovine ovarian granulosa cells via downregulation of microRNA-1246. Genes, 2022, 13(2): 298 (doi: 10.3390/genes13020298).
  • Soares M.M., Antonino D.D.C., Oliveira M., Melo Júnior J., Peixoto L.R., Maia T.S., Alves K.A., Jacomini J.O., Dos Santos R.M., Macedo G.G. The role of Kisspeptin in bovine in vitro embryo production. Semina: Ciências Agrárias, 2018, 39(2): 621-630 (doi: 10.5433/1679-0359.2018v39n2p621).
  • Martino N.A., Rizzo A., Pizzi F., Dell'Aquila M.E., Sciorsci R.L. Effects of kisspeptin-10 on in vitro proliferation and kisspeptin receptor expression in primary epithelial cell cultures isolated from bovine placental cotyledons of fetuses at the first trimester of pregnancy. Theriogenology, 2015, 83(6): 978-987.e1 (doi: 10.1016/j.theriogenology.2014.11.033).
  • Племяшов К.В., Андреев Г.М., Захаров П.Г., Кузьмин В.А., Щепеткина С.В. Практиче-ские рекомендации по воспроизводству крупного рогатого скота. СПб, 2008.
  • Leonardi C.E.P. Kisspeptin function in female bovine reproduction. PhD Thesis. University of Sas-katchewan, Saskatoon, Canada, 2018. Режим доступа: https://harvest.usask.ca/han-dle/10388/9597. Без даты.
  • Kadokawa H., Suzuki S., Hashizume T. Kisspeptin-10 stimulates the secretion of growth hormone and prolactin directly from cultured bovine anterior pituitary cells. Animal Reproduction Science, 2008, 105(3-4): 404-408 (doi: 10.1016/j.anireprosci.2007.11.005).
  • Gottsch M.L., Clifton D.K., Steiner R.A. From KISS1 to kisspeptins: An historical perspective and suggested nomenclature. Peptides, 2009, 30(1): 4-9 (doi: 10.1016/j.peptides.2008.06.016).
  • Ezzat A. A., Saito H., Sawada T., Yaegashi T., Goto Y., Nakajima Y., Jin J., Yamashita T., Sawai K., Hashizume T. The role of sexual steroid hormones in the direct stimulation by Kis-speptin-10 of the secretion of luteinizing hormone, follicle-stimulating hormone and prolactin from bovine anterior pituitary cells. Animal Reproduction Science, 2010, 121(3-4): 267-272 (doi: 10.1016/j.anireprosci.2010.06.002).
  • Ezzat A.A., Pereira A., Clarke I.J. Kisspeptin is a component of the pulse generator for GnRH secretion in female sheep but not THE pulse generator. Endocrinology, 2015, 156(5): 1828-1837 (doi: 10.1210/en.2014-1756).
  • Lehman M.N., Hileman S.M., Goodman R.L. Neuroanatomy of the kisspeptin signaling system in mammals: comparative and developmental aspects In: Kisspeptin signaling in reproductive biol-ogy. Advances in experimental medicine and biology, vol. 784 /A. Kauffman, J. Smith (eds.). Springer, New York, NY, 2013: 27-62 (doi: 10.1007/978-1-4614-6199-9_3).
  • Kadokawa H. Seasonal differences in the parameters of luteinizing hormone release to exogenous gonadotropin releasing hormone in prepubertal Holstein heifers in Sapporo. Journal of Reproduction and Development, 2007, 53(1): 121-125 (doi: 10.1262/jrd.18058).
  • Whitlock B.K., Daniel J.A., Wilborn R.R., Rodning S.P., Maxwell H.S., Steele B.P., Sartin J.L. Interaction of estrogen and progesterone on kisspeptin-10-stimulated luteinizing hormone and growth hormone in ovariectomized cows. Neuroendocrinology, 2008, 88(3): 212-215 (doi: 10.1159/000146242).
  • Whitlock B.K., Daniel J.A., Wilborn R.R., Maxwell H.S., Steele B.P., Sartin J.L. Interaction of kisspeptin and the somatotropic axis. Neuroendocrinology, 2010, 92(3): 178-188 (doi: 10.1159/000318049).
  • Ahmed A.E., Goto Y., Saito H., Sawada T., Jin J., Hirata T., Hashizume T. Gonadotropin-releasing response to kisspeptin-10 and its modulation by progesterone in postpartum cyclic cows. Iranian Journal of Applied Animal Science, 2013, 3: 471-476.
  • Naniwa Y., Nakatsukasa K., Setsuda S., Oishi S., Fujii N., Matsuda F., Uenoyama Y., Tsu-kamura H., Maeda K.-i., Ohkura S. Effects of full-length kisspeptin administration on follicular development in Japanese black beef cows. Journal of Reproduction and Development, 2013, 59(6): 588-594 (doi: 10.1262/jrd.2013-064).
  • Pottapenjera V., Rajanala S.R., Reddy C., Gangineni A., Avula K., Bejjanki S.K., Sathagopam S., Kesharwani S., Velmurugan S. Kisspeptin modulates luteinizing hormone release and ovarian follicular dynamics in prepubertal and adult murrah buffaloes. Frontiers in Veterinary Science, 2018, 5: 149 (doi: 10.3389/fvets.2018.00149).
  • Flay H.E., Reed C.B., Kuhn-Sherlock B., Phyn C.V.C., Burke C.R., Meier S., Clarke I.J. Re-sponse to kisspeptin and gonadotropin-releasing hormone agonist administration in Holstein-Friesian dairy heifers with positive or negative genetic merit for fertility traits. Journal of Dairy Science, 2022, 105(4): 3601-3614 (doi: 10.3168/jds.2021-21394).
  • Rodríguez M.A., Calderón Robles R.C., Rosete Fernándezb J.V., Hernándezc K. R., Vera Ávi-lad H.R., Arreguín Arévaloe J.A., Nette T.M., Gutiérrez Aguilarf C.G., Padillaf E.G., Gómez-Chavaríng M., Godoya A.V. Kisspeptin in prepubertal heifers: I. Effects of age on the response of LH, FSH and GH to kisspeptin-10 and its association with IGF-I, leptin and estradiol. Revista Mexicana de Ciencias Pecuarias, 2017, 8(4): 375-385 (doi: 10.22319/rmcp.v8i4.4644).
  • Ezzat Ahmed A., Saito H., Sawada T., Yaegashi T., Yamashita T., Hirata T.-I., Sawai K., Hashizume T. Characteristics of the Stimulatory Effect of Kis-speptin-10 on the secretion of luteinizing hormone, follicle-stimulating hormone and growth hormone in prepubertal male and female cattle. Journal of Reproduction and Development, 2009, 55(6): 650-654 (doi: 10.1262/jrd.20255).
  • Ezzat A.A., Haridy M., Kassab A.Y., Ahmed H., Senosy W., Toh-Ichi H., Tsutomu H. The effi-ciency of Kisspeptin and GnRH as stimulators of gonadotrophins and testosterone in prepubertal male cattle. Zagazig Veterinary Journal, 2018, 46(2): 136-145 (doi: 10.21608/ZVJZ.2018.14386).
  • Northup S.L., Coffman E.A., Strickland L.G., Pohler K.G., Daniel J.A., Whitlock B.K. Intrave-nous infusion of kisspeptin increased serum luteinizing hormone acutely and decreased serum follicle stimulating hormone chronically in prepubertal bull calves. Theriogenology, 2020, 144: 1-7 (doi: 10.1016/j.theriogenology.2019.12.013).
  • Role Cortés M.E., Carrera B., Rioseco H., Pablo del Río J., Vigil P. The role of kisspeptin in the onset of puberty and in the ovulatory mechanism: a minireview. Journal of Pediatric and Adolescent Gynecology, 2015, 28(5): 286-291 (doi: 10.1016/j.jpag.2014.09.017).
  • Macedo G.G., Mingoti R.D., Batista E.O.S., Monteiro B.M., Vieira L.M., Barletta R.V., Wilt-bank M.C., Nogueira G.P., Rennó F.P., Maio J.R., Baruselli P.S. Profile of LH re-lease in response to intramuscular treatment with kisspeptin in Bos indicus and Bos taurus prepubertal heifers. Theriogenology, 2019, 125: 64-70 (doi: 10.1016/j.theriogenology.2018.10.011).
  • Mondal M., Baruah K.K., Karunakaran M., Ghosh M.K., Dutta T.K. Development of a new kisspeptin based method of ovulation synchronization for crossbred dairy heifers. Journal of Dairy Science and Technology, 2018, 4(3): 12-16.
  • Curtis A.E., Cooke J.H., Baxter J.E., Parkinson J.R.C., Bataveljic A., Ghatei M.A., Bloom S.R., Murphy K.G. A kisspeptin-10 analog with greater in vivo biactivity than kisspeptin-10. Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab., 2010, 298(2): E296-E303 (doi: 10.1152/ajpendo.00426.2009).
  • Parker P.A., Coffman E.A., Pohler K.G., Daniel J.A., Aucagne V., Beltramo M., Whitlock B. K. Acute and subacute effects of a synthetic kisspeptin analog, C6, on serum concentrations of lute-inizing hormone, follicle stimulating hormone, and testosterone in prepubertal bull calves. Theri-ogenology, 2019, 130, 111-119 (doi: 10.1016/j.theriogenology.2019.03.002).
  • Burke C.R, Roche J.R., Millar R.P., Clarke I.J. Onset of normal cycles in postpartum anovulatory dairy cattle treated with kisspeptin. Reproduction and Fertility, 2022, 2(1): 1-8 (doi: 10.1530/RAF-21-0046).
  • Popa S.M., Moriyama R.M., Caligioni C.S., Yang J.J., Cho C.M., Concepcion T.L., Oak-ley A.E., Lee I.H., Sanz E., Amieux P.S., Caraty A., Palmiter R.D., Navarro V.M., Chan Y.M., Seminara S.B., Clifton D.K., Steiner R.A. Redundancy in Kiss1 expression safeguards reproduc-tion in the mouse. Endocrinology, 2013, 154(8): 2784-2794 (doi: 10.1210/en.2013-1222).
  • Hussain M.A., Song W.-J., Wolfe A. There is kisspeptin — and then there is kisspeptin. Trends in Endocrinology & Metabolism, 2015, 26(10): 564-572 (doi: 10.1016/j.tem.2015.07.008).
Еще
Статья обзорная