Результативность синхронизации полового цикла у ярок (Ovis aries L.) романовской породы в зависимости от схемы гормональной стимуляции и сезона года

Автор: Луканина В.А., Чинаров Р.Ю., Сингина Г.Н.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Проблемы репродукции

Статья в выпуске: 2 т.58, 2023 года.

Бесплатный доступ

Синхронизация полового цикла у овец - важный элемент программ воспроизводства, в том числе основанных на использовании вспомогательных репродуктивных технологий. Многообразие пород овец, различия природно-климатических условий зон разведения, особенности гормонального статуса животных не позволяют подобрать универсальный протокол управления половыми циклами. В настоящей работе впервые проведен сравнительный анализ двух схем гормональной стимуляции охоты, предполагающих либо две последовательные инъекции простагландина F2a (схема 1), либо первоначально инъекцию гонадотропного рилизинг-гормона с последующей обработкой простагландином F2a (схема 2). Цель работы заключалась в определении эффективности разных схем синхронизации полового цикла (ПЦ) у овец романовской породы по сезонам года. Исследования проводили на половозрелых ярках ( n = 160). Животные 1-й группы ( n = 121) подвергались гормональной обработке по схеме 1, предусматривающей 2-кратную инъекцию клопростенола (125 мкг на инъекцию) за 13 и 2 сут до предполагаемой даты прихода в охоту. На животных 2-й группы ( n = 39) применяли схему 2, включающую инъекции 15 мкг ацетата люлиберина и 125 мкг клопростенола соответственно за 9 и 2 сут до прихода в охоту. Кроме того, у овец 1-й группы оценивали результативность синхронизации ПЦ по сезонам: осень-зима ( n = 73) и весна-лето ( n = 48), а также по пяти временным периодам: сентябрь-октябрь ( n = 24), ноябрь-декабрь ( n = 26), январь-февраль ( n = 23), март-апрель ( n = 32) и май-июнь ( n = 16). Эффективность гормональной обработки оценивали у всех животных на основании их прихода в охоту через 24 и 48 ч после последней инъекции. У части животных, проявивших признаки охоты ( n = 80), через 96 ч после выявления охоты визуально оценивали состояние яичников на наличие желтых тел (ЖТ), используя лапаротомию или лапароскопию. Дисперсионный анализ показал достоверное влияние схемы гормональной обработки ( F = 5,21, p = 0,024), а также сезона ( F = 13,82, p = 0,0003) на процент ярок, пришедших в охоту. Среднее число ЖТ было подвержено большей изменчивости в связи с календарным годом проводимых исследований (p ≤ 0,05) и сезоном года (p ≤ 0,01), но схема обработки не имела значимого влияния на этот показатель. При использовании схемы 1 отмечали тенденцию повышения доли животных, пришедших в охоту, по сравнению со схемой 2 (80,17 % против 66,67 %). Вместе с тем при использовании схемы 2 ЖТ выявлялись у всех ярок, проявляющих признаки охоты, в то время как применение схемы 1 приводило к образованию ЖТ у 90,77 % ярок (р ≤ 0,05). Установлена более высокая результативность синхронизации ПЦ у овец в осенне-зимний период по сравнению с весенне-летним: доля ярок, пришедших в охоту, составила 92,50 % против 64,58 % (р ≤ 0,01), среднее число ЖТ у ярок, пришедших в охоту, равнялось 2,02 против 1,28 (р ≤ 0,01), среднее число ЖТ у ярок, имеющих желтые тела, - 2,18 против 1,62 (р ≤ 0,05). Анализ по 2-месячным периодам выявил относительную стабильность этих показателей в течение всего осенне-зимнего периода, после чего они снижались в марте-апреле и достигали минимальных значений в мае-июне. Таким образом, для стимуляции охоты у овец романовской породы целесообразно использовать две последовательные инъекции клопростенола (за 13 и 2 сут до предполагаемой даты наступления охоты), при этом эффективность метода выше в осенне-зимний сезон, после чего реакция животных на гормональную обработку снижается.

Еще

Овцы, романовская порода, гормональные препараты, простагландин f2a, стимуляция охоты, овариальная функция

Короткий адрес: https://sciup.org/142238884

IDR: 142238884   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2023.2.333rus

Список литературы Результативность синхронизации полового цикла у ярок (Ovis aries L.) романовской породы в зависимости от схемы гормональной стимуляции и сезона года

  • Айбазов А.-М.М., Мамонтова Т., Коваленко Д., Губаханов М. Итоги и перспективы использования биотехнологических методов и приемов в воспроизводстве мелких жвачных. Сельскохозяйственный журнал, 2021, 14(1): 2687-1246 (doi: 10.25930/2687-1254/009.1.14.2021).
  • Wei S., Chen S., Wei B., Liu Z., Bai T., Lin J. Estrus synchronization schemes and application efficacies in anestrus lanzhou fat-tailed ewes, Journal of Applied Animal Research, 2016, 44: 466-73 (doi: 10.1080/09712119.2015.1091350).
  • Garoussi M.T., Mavadati O., Bahonar M., Ragh M.J. The effect of medroxyprogesterone acetate with or without eCG on conception rate of fat-tail ewes in out of breeding season. Tropical Animal Health and Production, 2020, 52(4): 1617-1622 (doi: 10.1007/s11250-019-02159-8).
  • Hasani N., Ebrahimi M., Ghasemi-Panahi B., HosseinKhani A. Evaluating reproductive perfor-mance of three estrus synchronization protocols in Ghezel ewes. Theriogenology, 2018, 122: 9-13 (doi: 10.1016/j.theriogenology.2018.07.005).
  • Rosasco S.L., Beard J.K., Hallford D.M., Summers A.F. Evaluation of estrous synchronization protocols on ewe reproductive efficiency and profitability. Animal Reproduction Science, 2019, 210: 106191 (doi: 10.1016/j.anireprosci.2019.106191).
  • Зиновьева Н.А., Позябин С.В., Чинаров Р.Ю. Вспомогательные репродуктивные технологии: история становления и роль в развитии генетических технологий в скотоводстве. Сельскохозяйственная биология, 2020, 55(2): 225-242 (doi: 10.15389/agrobiology.2020.2.225rus).
  • Menchaca A., Dos Santos-Neto P.C., Cuadro F., Souza-Neves M., Crispo M. From reproductive technologies to genome editing in small ruminants: an embryo's journey. Animal Reproduction, 2018, 15(Suppl. 1): 984-995 (doi: 10.21451/1984-3143-AR2018-0022).
  • Li H., Wang G., Hao Z., Zhang G., Qing Y., Liu S., Qing L., Pan W., Chen L, Liu G., Zhao R., Jia B., Zeng L., Guo J., Zhao L., Zhao H., Lv C., Xu K., Cheng W., Li H., Zhao H.Y., Wang W., Wei H.J. Generation of biallelic knock-out sheep via gene-editing and somatic cell nuclear trans-fer. Scientific Reports, 2016, 6: 33675 (doi: 10.1038/srep33675).
  • Paramio M.T., Izquierdo D. Recent advances in in vitro embryo production in small ruminants. Theriogenology, 2016, 86(1): 152-159 (doi: 10.1016/j.theriogenology.2016.04.027).
  • Ungerfeld R., Ramos M.A., González-Pensado S.P. Ram effect: adult rams induce a greater reproductive response in anestrous ewes than yearling rams. Animal Reproduction Science, 2008, 103(3-4): 271-277 (doi: 10.1016/j.anireprosci.2006.12.013).
  • Pellicer-Rubio M.T., Leboeuf B., Bernelas D., Forgerit Y., Pougnard J.L., Bonné J.L., Senty E., Breton S., Brun F., Chemineau P. High fertility using artificial insemination during deep anoes-trus after induction and synchronisation of ovulatory activity by the “male effect” in lactating goats subjected to treatment with artificial long days and progestogens. Animal Reproduction Sci-ence, 2008, 109(1-4): 172-188 (doi: 10.1016/j.anireprosci.2007.11.026).
  • Lassoued N., Khaldi G., Cognié Y., Chemineau P., Thimonier J. Effet de la progestérone sur le taux d'ovulation et la durée du cycle ovarien induits par effet mâle chez la brebis Barbarine et la chèvre locale tunisienne [Effect of progesterone on ovulation length and duration of the ovarian cycle induced by the male effect in the Barbarine ewe and the local Tunisian goat]. Reproduction Nutrition Development, 1995, 35(4): 415-426 (doi: 10.1051/rnd:19950406).
  • Abecia J.A., Forcada F., González-Bulnes A. Hormonal control of reproduction in small ruminants. Animal Reproduction Science, 2012, 130(3-4): 173-179 (doi: 10.1016/j.anireprosci.2012.01.011).
  • Habeeb H.M.H., Anne Kutzler M. Estrus synchronization in the sheep and goat. The Veterinary Clinics of North America. Food Animal Practice, 2021, 37(1): 125-137 (doi: 10.1016/j.cvfa.2020.10.007).
  • Yu X., Bai Y., Yang J., Zhao X., Zhang L., Wang J. Comparison of five protocols of estrous synchronization on reproductive performance of Hu sheep. Frontiers in Veterinary Science, 2022, 9: 843514 (doi: 10.3389/fvets.2022.843514).
  • dos Santos-Neto P.C., García-Pintos C., Pinczak A., Menchaca A. Fertility obtained with dif-ferent progestogen intravaginal devices using short-term protocol for fixed-time artificial insemi-nation (FTAI) in sheep. Livestock Science, 2015, 182: 125-128 (doi: 10.1016/j.livsci.2015.11.005).
  • Jordan K.M., Inskeep E.K., Knights M. Use of gonadotropin releasing hormone to improve reproductive responses of ewes introduced to rams during seasonal anestrus. Animal Reproduction Science, 2009, 116(3-4): 254-264 (doi: 10.1016/j.anireprosci.2009.02.006).
  • Powell M.R., Kaps M., Lamberson W.R., Keisler D.H. Use of melengestrol acetate-based treat-ments to induce and synchronize estrus in seasonally anestrous ewes. Journal of Animal Science, 1996, 74(10): 2292-2302 (doi: 10.2527/1996.74102292x).
  • Harl A.W. Comparison of short-term vs. long-term estrous synchronization protocols using CIDR devices in sheep and goats during and outside the natural breeding season. Kansas State University, 2014. Режим доступа: http://hdl.handle.net/2097/18288. Дата обращения 31.01.2023.
  • Gonzalez E.C.G., Cruz U.M., Reyes L.A., Morales J.V.V., Perez R.V., Zuniga S, Ponce J.L. Parity of the Dorper sheep does not influence the reproductive and productive response when they are synchronized with an “ultra-short” protocol. Open Access Journal of Science, 2018, 2(3): 193-196 (doi: 10.15406/oajs.2018.02.00069).
  • Martinez-Ros P., Gonzalez-Bulnes A., Garcia-Rosello E., Rios-Abellan A., Astiz S. Effects of short-term intravaginal progestagen treatment on fertility and prolificacy after natural breeding in sheep at different reproductive seasons. Journal of Applied Animal Research, 2019, 47(1): 201-205 (doi: 10.1080/09712119.2019.1599899).
  • Laliotis V., Vosniakou A., Zafrakas A., Lymberopoulos A., Alifakiotis T. The effect of melatonin on lambing and litter size in milking ewes after advancing the breeding season with progestagen and PMSG followed by artificial insemination. Small Ruminant Research, 1998, 31(1): 79-81 (doi: 10.1016/S0921-4488(98)00108-4).
  • Kridli R.T., Husein M.Q., Muhdi H.A., Al-Khazaleh J.M. Reproductive performance of hormo-nally-treated anestrous Awassi ewes. Animal Reproduction, 2006, 3(3): 347-352.
  • Stellflug J.N., Rodriguez F., LaVoie V.A., Glimp H.A. Influence of simulated photoperiod alter-ation and induced estrus on reproductive performance of spring-born Columbia and Targhee ewe lambs. Journal of Animal Science, 1994, 72(1): 29-33 (doi: 10.2527/1994.72129x).
  • Rutigliano H.M., Adams B.M., Jablonka-Shariff A., Boime I., Adams T.E. Effect of time and dose of recombinant follicle stimulating hormone agonist on the superovulatory response of sheep. Theriogenology, 2014, 82(3): 455-460 (doi: 10.1016/j.theriogenology.2014.05.010).
  • Pampori A.Z., Ahmad Sheikh A., Aarif O., Hasin D., Ahmad Bhat I. Physiology of reproductive seasonality in sheep — an update. Biological Rhythm Research, 2020, 51(4): 586-598 (doi: 10.1080/09291016.2018.1548112).
  • Mekuriaw Z., Assefa H., Tegegne A., Muluneh D. Estrus response and fertility of Menz and crossbred ewes to single prostaglandin injection protocol. Tropical Animal Health and Production, 2016, 48(1): 53-57 (doi: 10.1007/s11250-015-0919-z).
  • Ramírez A.A., Villalvazo V.M.M., Arredondo E.S., Ramírez H.A.R., Sevilla H.M. D-Cloprostenol enhances estrus synchronization in tropical hair sheep. Tropical Animal Health and Pro-duction, 2018, 50(5): 991-996 (doi: 10.1007/s11250-018-1522-x).
  • Луканина В.А., Чинаров Р.Ю., Тарадайник Н.П. Сравнительное исследование результа-тивности двух схем синхронизации половой охоты у овец. Зоотехния, 2021, 12: 31-33 (doi: 10.25708/ZT.2021.51.73.009).
  • Ерохин А.С. Современные методы синхронизации эструса у овец. Овцы, козы, шерстяное дело, 2011, 4: 4-8.
  • Choudhary K.K., Kavya K.M., Jerome A., Sharma R.K. Advances in reproductive biotechnolo-gies. Veterinary World, 2016, 9(4): 388-395 (doi: 10.14202/vetworld.2016.388-395).
  • Martinez M.F., McLeod B., Tattersfield G., Smaill B., Quirke L.D., Juengel J.L. Successful induction of oestrus, ovulation and pregnancy in adult ewes and ewe lambs out of the breeding season using a GnRH+progesterone oestrus synchronisation protocol. Animal Reproduction Sci-ence, 2015, 155: 28-35 (doi: 10.1016/j.anireprosci.2015.01.010).
  • Jackson C.G., Neville T.L., Mercadante V.R.G., Waters K.M., Lamb G.C., Dahlen C.R., Red-den R.R. Efficacy of various five-day estrous synchronization protocols in sheep. Small Ruminant Research, 2014, 120(1): 100-107 (doi: 10.1016/j.smallrumres.2014.04.004).
Еще
Статья научная