Роль цитокинов семейства IL-1 в имплантации и развитии эко-индуцированной беременности

Автор: Лапштаева Анна Васильевна, Данилова Яна Андреевна

Журнал: Бюллетень науки и практики @bulletennauki

Рубрика: Медицинские науки

Статья в выпуске: 1 т.7, 2021 года.

Бесплатный доступ

Цитокины семейства интерлекина-1 (IL-1) играют важную роль в регуляции иммунного ответа, в том числе за счет индукции синтеза других цитокинов, хемокинов и матриксных металлопротеиназ. Все компоненты IL-1 обнаруживаются в эндометрии на протяжении всего менструального цикла. Стимуляции факторами эндометрия секреции эмбрионом IL-1 способствует образованию взаимосвязи между материнским эндометрием и эмбрионом перед имплантацией. В статье представлены результаты анализа современных литературных источников, посвященных роли IL-1α, IL-1β, IL-1Rа в процессе имплантации и развитии спонтанной и индуцированной беременности.

Экстракорпоральное оплодотворение, имплантация, беременность

Короткий адрес: https://sciup.org/14117922

IDR: 14117922   |   DOI: 10.33619/2414-2948/62/17

Текст научной статьи Роль цитокинов семейства IL-1 в имплантации и развитии эко-индуцированной беременности

Бюллетень науки и практики / Bulletin of Science and Practice

УДК 618.177-089.888.11                              

Семейство IL-1 включает в себя одиннадцать молекул: IL-1α, IL-1β, IL-18, IL-33, четыре изоформы IL-36 (IL-36α, IL-36β, IL-36γ, IL-36Rа), IL-37, IL-38, рецепторы IL-1 первого (IL-1R1) и второго (IL-1R2) типов, рецепторный антагонист IL-1(IL-1Rа) и дополнительный белок рецептора IL-1 (IL1RАР) [1–2].

Активированные моноциты и макрофаги, нейтрофилы, лимфоциты, кератиноциты, фибробласты, эндотелиальные и эпителиальные клетки способны продуцировать IL-1α и IL-1β в виде неактивных белков-предшественников (про-IL-1α и про-IL-1β), которые под действием протеазы каспазы-1 или IL-1-конвертирующего энзима (ICE) трансформируются в активные формы цитокинов и секретируются в окружающую среду. Молекулярная масса обеих белков примерно 18кДа. IL-1β является доминирующей формой [3].

IL-1α и IL-1β гомологичны и имеют сходные биологические свойства, которые они реализуют аутокринным и паракринным путем. Данные цитокины связываются с внеклеточной частью IL-1R1 и инициируют присоединение второй цепи рецептора IL1RAP [4]. Образованный комплекс привлекает внутриклеточные адаптерные молекулы (MYD88, IRAK, TRАF6) для активации передачи сигналов через транскрипционный фактор NF-κB и модуляции транскрипции гена-мишени [5].

Далее IL-1R1 принимает участие в процессах, происходящих внутри клетки, а IL-1R2 осуществляет функцию «ловушки» для IL-1 [6]. IL-1R2, находящийся на клеточной мембране, способен формировать неактивные комплексы с IL-1 и IL-1RАР, таким образом он оказывает преобладающее отрицательное влияние на передачу сигналов. Растворимая форма данного рецептора (sIL-1R2) способна с легкостью высвобождаться из клетки, где впоследствии она свяжется с IL-1. Продолжительная диссоциация (более двух часов) говорит о том, что комплекс IL-1β и sIL-1R2 практически необратим. Соответственно, растворимый и связанный с мембраной IL-1R2 способны осуществлять свои функции в качестве естественных ингибиторов IL-1 [6].

IL-1Rа связывается с IL-1R1 и IL-1R2 с той же специфичностью, как и IL-1, но не влияет на последующее проведение сигнала [7–8]. Этот мономерный гликозилированный белок, молекулярной массой 25 кДа, вырабатываемый моноцитами и другими клетками, играет роль ингибитора и важного физиологического регулятора экспрессии IL-1. IL-1Rа продуцируется в виде четырех различных изоформ, причем секретируется только одна из них, а остальные имеют внутриклеточную локализацию.

Все элементы системы IL-1 выявляется в эндометрии на протяжении всего менструального цикла. IL-1 экспрессируется в больших количествах в стромальных клетках эндометрия, макрофагах и клетках эндотелия в позднюю лютеиновую фазу [9–10], рецепторы к нему обнаруживается в течение всего цикла в железистом эпителии [10] и в строме — в лютеиновую фазу [11].

Следует отметить важную роль IL-1 во время имплантации эмбриона и децидуализации за счет создания воспалительно-подобного иммунного ответа при ремоделировании тканей [12–13]. Согласно исследованию авторов, при децидуализации IL-1 оказывает стимулирующее влияние на экспрессию факторов роста, цитокинов и молекул адгезии [14]. Кроме того, находящиеся в децидуа натуральные киллеры uNK способны повышать продукцию гранулоцитарно-макрофагального колониестимулирующего фактора (GM-CSF) в ответ на IL-1 [15]. IL-1β также способен к стимуляции эндотелина в культивируемых стромальных клетках эндометрия [16], что может указывать на местную регуляцию клеточной пролиферации и сосудистого тонуса.

IL-1 совместно со стероидными гормонами осуществляет регуляцию экспрессии эндометрием матриксных металлопротеиназ (ММР) во время менструального цикла [17–18]. IL-1α активирует ММР1,2,3,7 и 9, а IL-1β — ММР3 через фосфорилирование ЕRК и р38 МАР-киназы [19–20]. Действие ММР обуславливает общирное ремоделирование внеклеточного матрикса (ECM) при менструации и децидуализации.

Согласно исследованию авторов [21] повышение активности ММР12 (металлоэластазы) и ММР1 (коллагеназы) и снижение активности ММР11 (стромелизина-3) индуцировано IL-1β. Этот исключительный характер экспрессии может предполагать разрушение эластина и коллагена, в то время как эффекты MMP11 подвергаются обсуждению. Авторы выдвинули следующее объяснение: децидуализации сопутствует повышение отложения ламинина и фибронектина, а поскольку MMP11 обладает способностью разрушать их компоненты в ЕСМ, то это и может влиять на снижение его активности.

Фермент альдозоредуктаза AKR1B1 в эндометрии под действием IL-1β может защитить клетки от реактивных радикалов, оказывающих токсичное действие, и тяжелых металлов [22], которые способны оказывать неблагоприятное действие на прикрепление, имплантацию и дальнейшее развитие эмбриона [23] и обеспечить благоприятную среду для оплодотворения яйцеклетки.

Компоненты семейства IL-1 (IL-1β, IL-1Rа, IL-1R1) имеют зависимость от лептина в культуре эндотелиальных и стромальных клеток [24]. Лептин — главный регулятор системы IL-1 в эндометрии in vivo . Кроме того, сам IL-1β оказывает стимулирующее влияние на секрецию лептина и повышает экспрессию его рецептора Оb-R на клетках эпителия в эндометрии [25], в свою очередь лептин сильнее влияет на экспрессию интегрина β3, чем IL-1 при подобных концентрациях. C. Simon и соавторами при исследовании субъединицы интегрина в культуре эпителиальных клеток эндометрия отметили, что она регулируется двумя путями — путем добавления IL-1 в культуральную среду или путем совместного культивирования с эмбрионами перед имплантацией [12].

Следует обратить внимание на результаты исследований IL-1β in vitro [13, 26]. Освобождение IL-1β культивируемыми клетками цитотрофобласта прямо пропорционально их способности к инвазии [9]. S. Karmakar с соавторами [27] отметили, что IL-1β повышает выработку MMP2 и ММР9 клетками трофобласта in vitro. В нескольких исследованиях приводились данные, что IL-1β способен к последовательному ингибированию децидуализации стромальных клеток эндометрия человека in vitro [13, 28], вне зависимости от стимула децидуализации (прогестерон или цАМФ), через МАР-киназы ERК 1/2 и p38 [13, 29]. Более того, в исследовании O. Yoshino с соавторами [26] отмечалась тенденция к снижению чувствительности к экзогенному IL-1β в культуре клеток в процессе децидуализации.

Полагают, что IL-1β взаимосвязан с восприимчивостью эндометрия [30]. Некоторые исследователи считают, что IL-1β увеличивает адгезию бластоцисты к эпителию за счет увеличения экспрессии молекул адгезии эпителиальными клетками, тем самым регулируя восприимчивость эндометрия [31]. Обнаружено, что IL-1β активируется на 7–9 дни после овуляции в соответствии со стадией «окно имплантации».

Известно, что на адгезию трофобласта к клеткам эндометрия человека IL-1Rа оказывает подавляющее действие [32]. Авторами было выдвинуто предположение, что блокирование и регулирование MARK пути его ингибиторами вполне может быть использовано как средство, предупреждающее неудачные исходы при ЭКО. Критическую роль IL-1 в ранней имплантации можно объяснить тем фактом, что IL-1Rа во время имплантации способен блокировать ответную реакцию эндометрия на ХГЧ [19]. Внутрибрюшинная инъекция IL-1Ra спровоцировала штамм-специфическую блокировку имплантации, это связано со снижением регуляции критических интегринов на поверхности эпителия у обезьян [33].

Важно отметить, что между эндометрием и преимплантационным эмбрионом имеется четкая связь, заключающаяся в том, что факторы эндометрия стимулируют секрецию эмбрионом IL-1. В единичных преимплантационных эмбрионах были обнаружены основные составляющие системы IL-1 – IL-1α, IL-1β, IL-1Rа и IL-1R1 [34–35].

Но в исследовании, направленном на изучение одиночных бластомеров, мРНК IL-1β,

IL-1R1 и IL-1Ra обнаруживалась лишь в некоторых из них. Не менее важно то, что большинство преимплантационных эмбрионов, которые экспрессировали IL-1Ra, прекратили свое развитие на ранних стадиях [36]. Наряду с этим, исследования G. Chaouat с соавторами [37] показали, что сама бластоциста способна к экспрессии рецепторов IL-1α, стимуляция которых приводит к выработке ХГЧ, требующегося для формирования толерантности иммунной системы между матерью и плодом.

В исследованиях, посвященных роли IL-1в программах ЭКО установлено, что цитокин может участвовать в росте, развитии, созревании фолликулов и индуцированной овуляции, что может улучшить скорость оплодотворения и качество эмбриона, тем самым улучшая скорость имплантации. IL-1β участвует в механизмах иммунной толерантности при формировании плаценты и способствует росту эмбрионов посредством регуляции экспрессии NF-kB [38]. Кроме того, исследования показали, что IL-1β может запускать ангиогенез, способствуя тем самым росту эмбрионов, влияя на экспрессию ХГЧ [39]. Исследование K. Sequeira с соавторами [40] показало, что системная продукция IL-1β может быть вызвана контролируемой гиперстимуляцией яичников в циклах ЭКО. Данные работы Karagouni с соавторами [41] показали, что у женщин, проходящих ЭКО, введение препаратов ХГЧ влекло за собой увеличение сывороточных концентраций IL-1. Интересно, что у женщин, проходящих процедуру ЭКО, на фоне привычного выкидыша, отмечается повышенная концентрация IL-1β и TNF-α [42].

Также показаны связи между успехом ЭКО и IL-1. Авторами было установлено, что высоко-нормальные уровни IL-1α в сыворотке обладают прогностической значимостью и могут быть использованы в качестве ранних маркеров благоприятного исхода программы ЭКО у женщин с трубно-перитонеальным бесплодием [43]. Известно, что женщины с успешной имплантацией имели уровень IL-1β в фолликулярной жидкости выше, чем женщины без имплантации [34, 41]. Однако существуют и противоположные результаты. Сообщается, что повышенная продукция IL-1β взаимосвязана с ранними репродуктивными потерями после проведенного ЭКО [44]. Авторы частично объясняют это тем, что IL-1β индуцирует чрезмерную активацию матриксных металлопротеиназ MMP-2, 9, которые участвуют в ремоделировании ЕМС и приводят к чрезмерно агрессивной инвазии трофобласта.

Результаты исследований по изучению предикторной роли IL-1Rа при ЭКО достаточно противоречивые. J. S. Krüssel с соавторами [45] отметили у эмбрионов, экспрессирующих мРНК IL-1Rа in vitro, отсутствие дальнейшего развития. Однако есть несколько исследований полагающих, что IL-1Rа благоприятно влияет на качество и развитие эмбриона [27, 46]. Согласно данным, представленным в работе H.-Y. Huang с соавторами [9], повышение уровня IL-1Rа может активировать механизм нейтрализации излишних эффектов во время активной децидуализации in vivo , но in vitro отношение IL-1β к IL-1Ra мРНК неизменно. В исследовании А. Lekovich с соавторами [47] описывалось защитное действие IL-1Rа в рамках предотвращения развития эктопической беременности, из-за влияния на эпителий маточных труб, и рождение доношенного и здорового ребенка при проведении ЭКО.

В своей работе M. De los Sаntos с соавторами [27] показали, что антагонизм системы IL-1 (IL-1α+IL-1β/IL-1Ra) становится меньше по мере формирования эмбриона от четырех клеток до бластоцисты. Авторы также продемонстрировали, что для синтеза цитокинов IL-1 требуется наличие кокультивирования с эпителием эндометрия, что доказывает роль последнего в регуляции синтеза эмбрионального IL-1.

Таким образом, цитокины система IL-1 обладают плейотропными эффектами и играют важную роль в процессах имплантации эмбриона и последующей децидуализации путем активации воспалительно-подобного иммунного ответа при ремоделировании тканей. Кроме того, IL-1 способен предупреждать токсическое действие реактивных радикалов и тяжелых металлов, что создает благоприятную среду для оплодотворения. Цитокины семейства обеспечивают взаимосвязь между материнским эндометрием и эмбрионом. Однако данные о роли этих цитокинов в развитии ЭКО-индуцированной беременности неоднозначные.

Список литературы Роль цитокинов семейства IL-1 в имплантации и развитии эко-индуцированной беременности

  • Насонов Е. Л. Роль интерлейкина 1 в развитии заболеваний человека // Научно-практическая ревматология. 2018. №56. С. 19-27. DOI: 10.14412/1995-4484-2018-19-27
  • Sims J. E., Smith D. E. The IL-1 family: regulators of immunity // Nature Reviews Immunology. 2010. V. 10. №2. P. 89-102. DOI: 10.1038/nri2691
  • Матвеева Л. В., Мосина Л. М. Роль цитокинов семейства интерлейкина-1 в желудочном канцерогенезе // Вестник Российской академии медицинских наук. 2012. №11. С. 59-65.
  • Boraschi D., Tagliabue A. The interleukin-1 receptor family // Vitamins & Hormones. 2006. V. 74. P. 229-254. DOI: 10.1016/S0083-6729(06)74009-2
  • Dunne A., O'Neill L. A. J. The interleukin-1 receptor/Toll-like receptor superfamily: signal transduction during inflammation and host defense // Science's STKE. 2003. V. 2003. №171. P. re3-re3. DOI: 10.1126/stke.2003.171.re3
  • Colotta F., Dower S. K., Sims J. E., Mantovani A. The type II ‘decoy' receptor: a novel regulatory pathway for interleukin 1 // Immunology today. 1994. V. 15. №12. P. 562-566.
  • DOI: 10.1016/0167-5699(94)90217-8
  • Bigonnesse F., Labelle Y., Akoum A. Triphasic expression of interleukin-1 receptor type I in human endometrium throughout the menstrual cycle of fertile women and women with unexplained infertility // Fertility and sterility. 2001. V. 75. №1. P. 79-87.
  • DOI: 10.1016/S0015-0282(00)01634-4
  • Balavoine J. F., De Rochemonteix B., Williamson K., Seckinger P., Cruchaud A., Dayer J. M. Prostaglandin E2 and collagenase production by fibroblasts and synovial cells is regulated by urine-derived human interleukin 1 and inhibitor (s) // The Journal of clinical investigation. 1986. V. 78. №4. P. 1120-1124.
  • DOI: 10.1172/JCI112669
  • Huang H. Y., Wen Y., Kruessel J. S., Raga F., Soong Y. K., Polan M. L. Interleukin (IL)-1β regulation of IL-1β and IL-1 receptor antagonist expression in cultured human endometrial stromal cells // The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism. 2001. V. 86. №3. P. 1387-1393.
  • DOI: 10.1210/jcem.86.3.7284
  • Simón C. A. R. L. O. S., Piquette G. N., Frances A., Polan M. L. Localization of interleukin-1 type I receptor and interleukin-1 beta in human endometrium throughout the menstrual cycle // The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism. 1993. V. 77. №2. P. 549-555.
  • DOI: 10.1210/jcem.77.2.8345061
  • Bigonnesse F., Labelle Y., Akoum A. Triphasic expression of interleukin-1 receptor type I in human endometrium throughout the menstrual cycle of fertile women and women with unexplained infertility // Fertility and sterility. 2001. V. 75. №1. P. 79-87.
  • DOI: 10.1016/S0015-0282(00)01634-4
  • Simón C., Gimeno M. J., Mercader A., O'Connor J. E., RemohÍ J., Polan M. L., Pellicer A. Embryonic regulation of integrins β3, α 4, and α1 in human endometrial epithelial cells in vitro // The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism. 1997. V. 82. №8. P. 2607-2616.
  • DOI: 10.1210/jcem.82.8.4153
  • Frank G. R., Brar A. K., Jikihara H., Cedars M. I., Handwerger S. Interleukin-1β and the endometrium: an inhibitor of stromal cell differentiation and possible autoregulator of decidualization in humans // Biology of reproduction. 1995. V. 52. №1. P. 184-191.
  • DOI: 10.1095/biolreprod52.1.184
  • Nasu K., Fujisawa K., Arima K., Kai K., Sugano T., Miyakawa I. Expression and regulation of growth-regulated oncogene α in human endometrial stromal cells // MHR: Basic science of reproductive medicine. 2001. V. 7. №8. P. 741-746.
  • DOI: 10.1093/molehr/7.8.741
  • Okada H., Nakajima T., Yasuda K., Kanzaki H. Interleukin-1 inhibits interleukin-15 production by progesterone during in vitro decidualization in human // Journal of reproductive immunology. 2004. V. 61. №1. P. 3-12.
  • DOI: 10.1016/j.jri.2003.10.002
  • Lin Z., Kubota T., Masuda M., Aso T. Role of nitric oxide synthase in release of endothelin from cultured human endometrial cells // European journal of endocrinology. 1998. V. 138. №4. P. 467-471.
  • Orsi N. M., Leese H. J. Protection against reactive oxygen species during mouse preimplantation embryo development: role of EDTA, oxygen tension, catalase, superoxide dismutase and pyruvate // Molecular Reproduction and Development: Incorporating Gamete Research. 2001. V. 59. №1. P. 44-53.
  • DOI: 10.1002/mrd.1006
  • Salamonsen L. A., Nie G. Proteases at the endometrial-trophoblast interface: their role in implantation // Reviews in Endocrine and Metabolic Disorders. 2002. V. 3. №2. P. 133-143. :1015407012559
  • DOI: 10.1023/A
  • Strakova Z., Mavrogianis P., Meng X., Hastings J. M., Jackson K. S., Cameo P.,.. Fazleabas A. T. In vivo infusion of interleukin-1β and chorionic gonadotropin induces endometrial changes that mimic early pregnancy events in the baboon // Endocrinology. 2005. V. 146. №9. P. 4097-4104.
  • DOI: 10.1210/en.2005-0380
  • Singer C. F., Kronsteiner N., Marton E., Walter I., Kubista M., Czerwenka K.,.. Kubista E. Interleukin-1 system and sex steroid receptor gene expression in human endometrial cancer // Gynecologic oncology. 2002. V. 85. №3. P. 423-430.
  • DOI: 10.1006/gyno.2002.6598
  • Rossi M., Sharkey A. M., Vigano P., Fiore G., Furlong R., Florio P.,.. Petraglia F. Identification of genes regulated by interleukin-1β in human endometrial stromal cells // Reproduction. 2005. V. 130. №5. P. 721-729.
  • DOI: 10.1530/rep.1.00688
  • Kägi J. H. R. Overview of metallothionein // Methods in enzymology. 1991. V. 205. P. 613-626.
  • DOI: 10.1016/0076-6879(91)05145-l
  • Orsi N. M., Leese H. J. Protection against reactive oxygen species during mouse preimplantation embryo development: role of EDTA, oxygen tension, catalase, superoxide dismutase and pyruvate // Molecular Reproduction and Development: Incorporating Gamete Research. 2001. V. 59. №1. P. 44-53.
  • DOI: 10.1002/mrd.1006
  • Gonzalez R. R., Leary K., Petrozza J. C., Leavis P. C. Leptin regulation of the interleukin-1 system in human endometrial cells // MHR: Basic science of reproductive medicine. 2003. V. 9. №3. P. 151-158.
  • DOI: 10.1093/molehr/gag022
  • Gonzalez R. R., Leavis P. Leptin upregulates β3-integrin expression and interleukin-1β upregulates leptin and leptin receptor expression in human endometrial epithelial cell cultures // Endocrine. 2001. V. 16. №1. P. 21-28. :16:1:21
  • DOI: 10.1385/ENDO
  • Yoshino O., Osuga Y., Hirota Y., Koga K., Hirata T., Yano T.,.. Taketani Y. Endometrial stromal cells undergoing decidualization down-regulate their properties to produce proinflammatory cytokines in response to interleukin-1β via reduced p38 mitogen-activated protein kinase phosphorylation // The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism. 2003. V. 88. №5. P. 2236-2241.
  • DOI: 10.1210/jc.2002-021788
  • De los Santos, M. J., Mercader, A., Francés, A., Portolés, E., Remohí, J., Pellicer, A., & Simón, C. Role of endometrial factors in regulating secretion of components of the immunoreactive human embryonic interleukin-1 system during embryonic development // Biology of Reproduction. 1996. V. 54. №3. P. 563-574.
  • DOI: 10.1095/biolreprod54.3.563
  • Vićovac L. M., Starkey P. M., Aplin J. D. Comment: effect of cytokines on prolactin production by human decidual stromal cells in culture: studies using cells freed of bone marrow-derived contaminants // The Journal of Clinical Endocrinology & Metabolism. 1994. V. 79. №6. P. 1877-1882.
  • DOI: 10.1210/jcem.79.6.7989496
  • Yu J., Berga S. L., Zou W., Yook D. G., Pan J. C., Andrade A. A.,.., Taylor R. N. IL-1 β Inhibits Connexin 43 and Disrupts Decidualization of Human Endometrial Stromal Cells Through ERK1/2 and p38 MAP Kinase // Endocrinology. 2017. V. 158. №12. P. 4270-4285.
  • DOI: 10.1210/en.2017-00495
  • Wang H., Shi G., Li M., Fan H., Ma H., Sheng L. Correlation of IL-1 and HB-EGF with endometrial receptivity // Experimental and therapeutic medicine. 2018. V. 16. №6. P. 5130-5136.
  • DOI: 10.3892/etm.2018.6840
  • Bourdiec A., Akoum A. L'implantation embryonnaire-Importance de la famille de l'interleukine 1 // Médecine/sciences. 2014. V. 30. №6-7. P. 644-650.
  • DOI: 10.1051/medsci/20143006014
  • Montazeri M., Sanchez-Lopez J. A., Caballero I., Maslehat Lay N., Elliott S., Fazeli A. Interleukin-1 receptor antagonist mediates toll-like receptor 3-induced inhibition of trophoblast adhesion to endometrial cells in vitro // Human Reproduction. 2016. V. 31. №9. P. 2098-2107.
  • DOI: 10.1093/humrep/dew171
  • Simon C., Frances A., Piquette G. N., El Danasouri I., Zurawski G., Dang W., Polan M. L. Embryonic implantation in mice is blocked by interleukin-1 receptor antagonist // Endocrinology. 1994. V. 134. №2. P. 521-528.
  • DOI: 10.1210/en.134.2.521
  • Sheth K. V., Roca G. L., Al-Sedairy S. T., Parhar R. S., Hamilton C. J., Jabbar F. A. A. Prediction of successful embryo implantation by measuring interleukin-1-alpha and immunosuppressive factor (s) in preimplantation embryo culture fluid // Fertility and sterility. 1991. V. 55. №5. P. 952-957.
  • DOI: 10.1016/S0015-0282(16)54305-2
  • Baranao R. I., Piazza A., Rumi L., Polak de Fried E. Predictive value of Interleukin-1β in supernatants of human embryo culture // Fertil. Steril. 1992. V. 58. P. O-007.
  • Krüssel J. S., Bielfeld P., Polan M. L., Simón C. Regulation of embryonic implantation // European Journal of Obstetrics & Gynecology and Reproductive Biology. 2003. V. 110. P. S2-S9.
  • DOI: 10.1016/S0301-2115(03)00167-2
  • Chaouat G., Ledée-Bataille N., Dubanchet S., Zourbas S., Sandra O., Martal J. TH1/TH2 paradigm in pregnancy: paradigm lost? // International archives of allergy and immunology. 2004. V. 134. №2. P. 93-119.
  • DOI: 10.1159/000074300
  • Geisert R., Fazleabas A., Lucy M., Mathew D. Interaction of the conceptus and endometrium to establish pregnancy in mammals: role of interleukin 1β // Cell and tissue research. 2012. V. 349. №3. P. 825-838.
  • DOI: 10.1007/s00441-012-1356-1
  • Bourdiec A., Shao R., Rao C. V., Akoum A. Human chorionic gonadotropin triggers angiogenesis via the modulation of endometrial stromal cell responsiveness to interleukin 1: a new possible mechanism underlying embryo implantation // Biology of reproduction. 2012. V. 87. №3. P. 66, 1-10.
  • DOI: 10.1095/biolreprod.112.100370
  • Sequeira K., Espejel-Núñez A., Vega-Hernández E., Molina-Hernández A., Grether-González P. An increase in IL-1β concentrations in embryo culture-conditioned media obtained by in vitro fertilization on day 3 is related to successful implantation // Journal of assisted reproduction and genetics. 2015. V. 32. №11. P. 1623-1627.
  • DOI: 10.1007/s10815-015-0573-4
  • Karagouni E. E., Chryssikopoulos A., Mantzavinos T., Kanakas N., Dotsika E. N. Interleukin-1β and interleukin-1α may affect the implantation rate of patients undergoing in vitro fertilization-embryo transfer // Fertility and sterility. 1998. V. 70. №3. P. 553-559.
  • DOI: 10.1016/S0015-0282(98)00243-X
  • Литвин Н. В. Иммунологические взаимодействия организма у женщин с бесплодием, включенных в программу IVF // Здоровье женщины. 2017. №6. С. 136-136.
  • Лапштаева А. В., Евсегнеева И. В., Новиков В. В., Сычев И. В., Караулов А. В. Сывороточный уровень интерлейкина-1α, полиморфизм его гена и результативность лечения бесплодия методом экстракорпорального оплодотворения // Медицинская иммунология, 2018. Т. 20. № 1. С. 115-122.
  • DOI: 10.15789/1563-0625-2018-1-115-122
  • Spandorfer S. D., Neuer A., Liu H. C., Bivis L., Clarke R., Veeck L.,.. Rosenwaks Z. Interleukin-1 Levels in the Supernatant of Conditioned Media of Embryos Grown in Autologous Endometrial Coculture: Correlation with Outcome After In Vitro Fertilization // American Journal of Reproductive Immunology. 2000. V. 43. №1. P. 6-11.
  • DOI: 10.1111/j.8755-8920.2000.430102.x
  • Krüssel J. S., Simón C., Rubio M. C., Pape A. R., Wen Y., Huang H. Y.,.., Polan M. L. Expression of interleukin-1 system mRNA in single blastomeres from human preimplantation embryos // Human reproduction (Oxford, England). 1998. V. 13. №8. P. 2206-2211.
  • DOI: 10.1093/humrep/13.8.2206
  • Spandorfer S. D., Neuer A., Liu H. C., Rosenwaks Z., Witkin S. S. Involvement of Interleukin-1 and the Interleukin-1 receptor antagonist in in vitro embryo development among women undergoing in vitro fertilization - embryo transfer // Journal of assisted reproduction and genetics. 2003. V. 20. №12. P. 502. :JARG.0000013650.76052.ae
  • DOI: 10.1023/B
  • Lekovich J., Witkin S. S., Doulaveris G., Orfanelli T., Shulman B., Pereira N.,.., Spandorfer S. D. Elevated serum interleukin-1β levels and interleukin-1β-to-interleukin-1 receptor antagonist ratio 1 week after embryo transfer are associated with ectopic pregnancy // Fertility and sterility. 2015. V. 104. №5. P. 1190-1194.
  • DOI: 10.1016/j.fertnstert.2015.07.1145
Еще
Статья научная