Роль температурного фактора в морфогенезе генеративных органов лиственницы сибирской (Larix sibirica)

Автор: Иванова А.Н., Голованова Т.И., Новоселова Н.В.

Журнал: Вестник Красноярского государственного аграрного университета @vestnik-kgau

Рубрика: Экология

Статья в выпуске: 4, 2014 года.

Бесплатный доступ

В ходе исследования выявлено, что на морфогенез генеративных органов лиственницы сибирской оказывают влияние факторы внешней среды: низкие положительные температуры стимулируют воздействие на скорость прохождения материнскими клетками процесса мейоза.

Морфогенез, лиственница сибирская (larix sibirica), низкие положительные температуры, микроспороциты, мейоз

Короткий адрес: https://sciup.org/14083623

IDR: 14083623

Текст научной статьи Роль температурного фактора в морфогенезе генеративных органов лиственницы сибирской (Larix sibirica)

Способность молодых микроспор растений воспроизводить в условиях in vitro целостный организм открывает большие возможности экспериментального получения гаплоидных растений. Гаплоиды являются уникальным и перспективным объектом для клеточной селекции и генетической инженерии растений. Этой проблеме посвящено множество экспериментальных работ и обзорных статей [5, 8, 13, 14].

К настоящему времени накоплен значительный фактический материал по различным аспектам изучения этого явления у представителей различных семейств покрытосеменных растений. Однако не разработана эффективная система массового получения гаплоидов при культивировании мужских генеративных органов, не решены проблемы индукции и регенерации. Остаются неясными механизмы, обусловливающие смену программы развития микроспор с нормального пути созревания на вегетативный путь развития, через эмбриоидо- и каллусогенез в гаплоидное растение. Крайне мало данных по изучению морфогенеза мужских генеративных органов голосеменных.

Ряд исследователей отмечают, что непосредственными причинами морфогенеза являются физиолого-биохимические процессы, происходящие в индивидуальном развитии организма в определенных условиях внешней среды [1– 3, 5– 9, 11, 16, 17].

Одним из важнейших абиотических факторов, определяющих этапность онтогенеза и влияющих на фенотипическое проявление конкретного генотипа растения, являются низкие положительные температуры. Имеются данные о влиянии температурного фактора на становление полярности растительного организма, данный фактор используют как стрессор индукции андроклинии у покрытосеменных растений [8, 14].

Цель работы . Рассмотреть действие низких положительных температур как важный фактор культивирования мужских генеративных органов, при котором происходит высокий выход эмбриоидов.

Объекты и методы. В качестве объектов исследования использовали 30–35-летние деревья лиственницы сибирской, произрастающие на территории экспериментальной базы Института леса «Погорельский бор».

У опытных деревьев Larix sibirica собирали мужские гаметофиты (микростробиллы) с сентября 2003 по май 2004 г. Экспериментальные деревья были разделены на две группы по фенотипическим и морфологическим данным. В первую группу вошли деревья, пораженные лиственничной почковой галлицей, которые отличались от здоровых замедленным ростом и изреженной кроной (рис.1, а). У таких деревьев, как было показано И.Н. Третьяковой [10], идет нарушение мужской сексуализации, то есть превалируют женские шишки. Во вторую группу вошли деревья, не пораженные лиственничной почковой галлицей (рис. 1, б).

а                                       б

Рис. 1. Лиственница сибирская (Larix sibirica Ledeb.): а – не пораженная лиственничной почковой галлицей; б – пораженная лиственничной почковой галлицей

Собранные мужские генеративные органы помещали на модифицированную среду Мурасиге-Скуга [16].

В ходе работы снимали показатели: время прорастания микроспор, размеры пыльцевой трубки; время прохождения мейоза; морфологические особенности материнских клеток микроспор на каждой стадии развития.

Эксперимент проводился в двух вариантах:

  • 1.    Часть мужских генеративных органов, собранных с поврежденных и неповрежденных деревьев, помещали в холодильник на трое суток, где температура поддерживалась в пределах + 4 Со, после чего переносили на среду MS.

  • 2.    Другую часть мужских генеративных органов, собранных с поврежденных и неповрежденных деревьев, сразу же помещали на модифицированную среду MS.

Схема проведения эксперимента представлена на рисунке 2.

Рис. 2. Схема проведения эксперимента

Результаты и обсуждение. Данные по влиянию температурного фактора на развитие микроспороцитов Larix sibirica in vitro представлены в таблице 1. Необходимо отметить, что для анализа использовали материнские клетки микроспор, которые находились на различных стадиях развития: в осенне-зимний период – на стадии профазы I, в весенний период в микроспороцитах обнаруживалась сильная асинхронность прохождения мейоза (табл. 1), что характерно для хвойных.

Таблица 1

Влияние низких положительных температур на развитие микроспороцитов in vitro , собранных в разные периоды развития микростробил Larix sibirica

Дерево

Месяц

Сутки

Метафаза I

Анафаза I

Телофаза I

Интерфаза

Тетрады

Микроспоры

1

2

3

4

5

6

7

8

9

Микростробилы, не обработанные низкими положительными температурами +4 Сo

нП

Октябрь

3

11,2

78,2

10,6

5

0,1

99,9

7

0,1

10,2

89,7

Декабрь

3

62,4

37,6

5

0,7

52,1

47,1

0,1

7

0,3

21,9

77,8

14

0,1

99,9

Апрель

3

100

Окончание табл. 1

1

2

3

4

5

6

7

8

9

П

Октябрь

3

35,6

64,4

5

0,7

52,1

47,1

0,1

7

0,3

21,9

77,8

14

0,1

99,9

Декабрь

3

78,2

11,2

10,6

5

0,1

75,3

24,6

7

10,3

89,7

14

100

Апрель

3

100

Микростробилы, об

работанные низкими положительными температурами +4 Сo

нП

Октябрь

3

9,6

67,3

23,1

5

89,2

10,8

7

10,3

89,7

Декабрь

3

8,4

67,3

24,3

5

81,3

18,7

7

19,1

80,9

Апрель

3

100

П

Октябрь

3

9,1

67,7

23,2

5

99,9

0,1

7

2,9

97,1

Декабрь

3

7,2

92

0,8

5

0,2

87,7

12,1

7

14,7

85,3

Апрель

3

100

В культуре in vitro в октябре месяце у непораженных деревьев большое количество материнских клеток микроспор находилось в анафазе I, а на 7-е сутки культивирования появляются тетрады, на долю которых приходится около 90 %. В декабре, когда лиственница сибирская находилась в состоянии физиологического покоя, распределение микроспороцитов по фазам несколько иное. На 3-и сутки большее количество микроспороцитов находилось на стадии метафазы I, однако на 14-е сутки было обнаружено 100 %-е образование микроспор, покрытых тонкой экзиной. У растений, пораженных лиственничной почковой галлицей, было отмечено в осенне-зимний период неравномерное распределение микроспороцитов по отдельным фазам мейоза, и образование микроспор проходило медленнее (табл. 1).

В весенние сроки культивирования у не пораженных и пораженных деревьев лиственничной почковой галлицей у микроспороцитов происходило быстрое завершение мейоза.

Большой интерес представляют данные по обработке микростробил низкими положительными температурами. В литературе встречаются исследования, где низкие положительные температуры способствовали получению высокого выхода андрогенных культур у пшеницы [5]. В.Ю. Горбуновой впервые обнаружено: «… дифференциальная эксперессия транскриптов, накапливающихся в микроспорах в ответ на воздействие пониженных положительных температур на пыльники яровой мягкой пшеницы поздней стадии микроспорогенеза. Эта спорофитная генетическая информация реализуется в перестройке веретена деления первого митоза и появлении микроспор с двумя равными ядрами, что характеризует начало прямого андрогенеза in vitro » [4].

В наших исследованиях показано, что пониженные положительные температуры оказывали стимулирующее воздействие на прохождение клетками процесса мейоза, микростробилы которых были собраны в осенне-зимний и весенний периоды. Следует отметить, что у микростробил, собранных в данный период, уже на 3-е сутки культивирования микроспороциты находились в анафазе I в отличие от клеток, микростробилы которых не были обработаны низкими положительными температурами.

Несмотря на то, что на 7-е сутки образованы микроспоры как у непораженных, так и у пораженных деревьев, в их размерах были отмечены существенные различия (табл. 2).

Таблица 2

Дерево Месяцп Сутки in vivo 1 Метафаза I1 Анафаза Iп Телофаза Iп Интерфаза Тетрадып Микроспоры

Микростробилы, не обработанные низкими положительными темпе

ратурами +4 Сo

нП

Октябрь

3

37,76 ±0,22

39,17±0,17

56,06 ±0,24

76,01±0,21

5

54,01±0,21

75,31± 0,18

7

76,13±0,19

84,21±0,31

91,52 ±0,21

Декабрь

3

37,92 ±0,20

38,19±0,17

54,6±0,33

5

38,92±0,24

56,40±0,59

75,68±0,18

85,53±0,16

7

85,43±0,19

92,01±0,26

101,3±0,15

Апрель

3

51,27 ±0,16

91,59±0,21

5

101,08±0,15

7

115,1±0,31

П

Октябрь

3

34,48 ±0,17

37,76 ± 0,2

41,36±0,21

52,28±0,33

5

50,21±0,29

60,01±0,36

75,61±0,23

89,75±0,27

7

76,12±0,12

90,20±0,31

99,89±0,21

Декабрь

3

35,76 ±0,19

38,4±0,19

39,63±0,25

60,3±0,59

5

54,7±0,27

73,47±0,18

76,09±0,18

7

90,56±0,26

91,60±0,38

Апрель

3

49,92 ±0,12

89,79±0,23

5

98,09±0,38

7

102,12±0,26

Микростробилы, обработанные низкими положительными температурами +4 Сo

нП

Октябрь

3

37,76 ±0,22

69,82±0,23

85,46±0,36

90,06±0,28

5

91,87±0,21

95,3 ± 0,12

7

96,89±0,27

110,63±0,27

Декабрь

3

37,92 ±0,20

65,78±0,34

78,26±0,18

89,61±0,18

5

95,41±0,21

109,56±0,31

7

19,1

120,31±0,15

Апрель

3

51,27 ±0,16

93,76±0,28

5

101,31±0,21

7

124,3±0,15

П

Октябрь

3

34,48 ±0,17

50,43±0,19

74,89±0,29

80,91±0,21

5

76,5±0,31

82,84±0,20

89,03±0,25

7

90,95±0,21

100,8±0,33

Декабрь

3

35,76 ±0,19

60,11±0,33

77,23±0,59

80,59±0,25

5

80,65±0,21

85,36±0.23

100,15±0,24

7

85,95±0,29

100,23±0,38

Апрель

3

49,92 ±0,12

90,12±0,33

5

99,89±0,59

7

106,39±0,38

Размеры микроспороцитов и микроспор

Размеры микроспороцитов, образованных от микростробил не обработанных низкими положительными температурами деревьев, не пораженных лиственничной почковой галлицей, в метафазе I на 3-е сутки отличались от размеров микроспороцитов пораженных деревьев. Существенную разницу наблюдали у непораженных и пораженных деревьев на 5-е и 7-е сутки культивирования. Особенно значительные отличия проявились в анафазе I и телофазе I (табл. 2). Образованные микроспоры имели тонкую экзину и к 14-м суткам культивирования образовывали двухклеточное пыльцевое зерно, которое прорастало с образованием пыльцевой трубки.

Наиболее существенную разницу в размерах микроспороцитов наблюдали у деревьев, обработанных низкими положительными температурами: в осенне-зимний и весенний периоды на 3-е сутки культивирования их размеры составили: у деревьев, не пораженных лиственничной почковой, – 69,82 мкм, а у пораженных – 60,11 мкм. Такая же закономерность наблюдается и на 5- и на 7-е сутки культивирования. У микроспор, полученных таким путем, наблюдаются тонкая экзина и деполяризация клетки.

Таким образом, низкие положительные температуры оказывают положительное влияние не только на прохождение мейоза, но и на размер образованных микроспор.

У микроспор, образованных в осенне-зимний период, наблюдается образование одноклеточного пыльцевого зерна, которое образует пыльцевую трубку на 14-е сутки культивирования (рис. 3, а), а в дальнейшем – ценоцит (рис. 3, б).

Рис. 3. Образование пыльцевой трубки на 14-е сутки культивирования и на 21-е сутки ценоцита

У микроспор, полученных в апреле месяце, на 14-е сутки от момента инокуляции микроспорофиллов на среду in vitro в образованных микроспорах отмечены равные митотические деления с образованием сначала двух равных ядер, а затем двух равных клеток (рис. 4).

Рис. 4. Митотическое деление микроспоры in vitro

Следовательно, низкие положительные температуры оказывают положительное влияние не только на прохождение мейоза, но и на переход от гаметофитного пути на спорофитный. Это объясняется тем, что в результате действия температур подавляется процесс гаметофитной программы развития и запускается тем самым спорофитная программа.

Статья научная