Секвенирование фрагментов V3-V4 гена 16S rRNA для определения состава и взаимосвязи микробиоты при воспалении молочной железы и репродуктивного тракта у коров (Bos taurus)

Автор: Соколова О.В., Безбородова Н.А., Бытов М.В., Зубарева В.Д., Шкуратова И.А., Зайцева О.С., Мартынов Н.А.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Ветеринарная микробиология, микология

Статья в выпуске: 2 т.59, 2024 года.

Бесплатный доступ

Воспалительные заболевания молочной железы и репродуктивного тракта крупного рогатого скота наносят наибольший экономический ущерб молочному животноводству. Секвенирование нуклеотидных последовательностей гена 16S rRNA значительно расширило знание о бактериальных сообществах (микробиомах) и позволило выявить бактерии, о существовании которых ранее не было известно, поскольку их не удается культивировать in vitro. В представленной работе впервые показаны взаимосвязи между микробиотой репродуктивного тракта и молочной железы коров (Bos taurus) при развитии воспалительных заболеваний и выявлены новые этиологически значимые патогены. Нашей целью было определение состава микробиоты репродуктивного тракта и молочной железы коров при воспалении и сравнение полученных бактериальных профилей для обнаружения общей этиологии таких патологий. Для исследования на каждом из сельскохозяйственных предприятий, расположенных в пяти районах Свердловской области, сформировали 4 экспериментальных группы: 1-я - животные без признаков воспаления молочной железы и репродуктивного тракта (З); 2-я - животные с признаками воспаления молочной железы, но без признаков воспаления репродуктивного тракта (М); 3-я - животные с признаками воспаления репродуктивного тракта, но без признаков воспаления молочной железы (Э); 4-я - животные с признаками воспаления молочной железы и репродуктивного тракта (ЭМ). От каждой коровы в группах получали образцы биологического материала (секрет молочной железы, цервикальные смывы), который использовали для метагеномного анализа состава бактериальных сообществ. Анализ последовательностей вариабельных участков гена 16S rRNA показал, что подавляющее большинство идентифицированных операционных таксономических единиц (operational taxonomic units, ОТU) принадлежат домену Bacteria, остальные - филуму Euryarchaeota домена Archaea (0,38 % в пробах секрета молочной железы, 0,44 % - в цервикальных смывах). В образцах секрета молочной железы идентифицированы представители 19 бактериальных филумов, в том числе 43 класса, 85 порядков, 165 семейств и 484 рода. Половину бактериальных ОТU составлял филум Firmicutes (680 ОТU, 51,7 %), второй и третий по численности филумы - Actinobacteria и Bacteroidetes (соответственно 14,5 % и 11,3 %). В цервикальных смывах обнаружены представители 22 бактериальных филумов, в их числе 50 классов, 93 порядка, 172 семейства и 365 родов. Преобладающим бактериальным филумом оказался Firmicutes (876 ОТU, 55,3 %), вторым и третьим по численности - филумы Bacteroidetes и Actinobacteria (соответственно 13,3 % и 11,6 %). Секвенирование вариабельных участков гена 16S rRNA позволило установить наличие бактерий класса Clostridia и рода Facklamia, которые мы не обнаружили ранее, исследуя образцы с помощью культуральных методов. Этим подтверждается клиническое значение метагеномного секвенирования для уточнения состава этиологических агентов в случае некультивируемых или трудно культивируемых бактерий. Определена взаимосвязь микробиоты молочной железы и репродуктивного тракта при воспалительном процессе по относительному содержанию в секрете молочной железы и цервикальных смывах при воспалении, Turicibacter sanguinis, Staphylococcus aureus, Peptostreptococcus anaerobius, Peptoniphilus indolicus и Helcococcus ovis описаны как инфекционные агенты, провоцирующие воспалительный процесс. Полученные данные важны для углубленного понимание связи бактериальной этиологии и патогенеза при воспалительных заболеваниях молочной железы и репродуктивного тракта животных.

Еще

Голштинская порода, 16s rrna, микробиота, молочная железа, репродуктивный тракт

Короткий адрес: https://sciup.org/142242449

IDR: 142242449   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2024.2.328rus

Список литературы Секвенирование фрагментов V3-V4 гена 16S rRNA для определения состава и взаимосвязи микробиоты при воспалении молочной железы и репродуктивного тракта у коров (Bos taurus)

  • Owens C.E., Daniels K.M., Ealy A.D., Knowlton K.F., Cockrum R.R. Graduate student litera-ture review: potential mechanisms of interaction between bacteria and the reproductive tract of dairy cattle. Journal of Dairy Science, 2020, 103(11): 10951-10960 (doi: 10.3168/jds.2019-18050).
  • Taponen S., McGuinness D., Hiitiö H., Simojoki H., Zadoks R., Pyörälä S. Bovine milk micro-biome: a more complex issue than expected. Veterinary Research, 2019, 50(1): 44 (doi: 10.1186/s13567-019-0662-y).
  • Derakhshani H., Fehr K.B., Sepehri S., Francoz D., De Buck J., Barkema H.W., Plaizier J.C., Khafipour E. Invited review: Microbiota of the bovine udder: contributing factors and potential implications for udder health and mastitis susceptibility. Journal of Dairy Science, 2018, 101(12): 10605-10625 (doi: 10.3168/jds.2018-14860).
  • Sokolova O.V., Bezborodova N.A., Lysova Y.Y., Pechura E.V. Characteristics of species composition, biochemical and pathogenic nature of the microbiota of mammary gland and the reproductive tract in dairy cows. E3S Web of Conferences, 2021, 282: 03017 (doi: 10.1051/e3sconf/202128203017).
  • Vakkamäki J., Taponen S., Heikkilä A-M., Pyörälä S. Bacteriological etiology and treatment of mastitis in Finnish dairy herds. Acta Veterinaria Scandinavica, 2017, 59(1): 33 (doi: 10.1186/s13028-017-0301-4).
  • Ault T.B., Clemmons B.A., Reese S.T., Dantas F.G., Franco G.A., Smith T.P.L., Edwards J.L., Myer P.R., Pohler K.G. Bacterial taxonomic composition of the postpartum cow uterus and vagina prior to artificial insemination. Journal of Animal Science, 2019, 97(10): 4305-4313 (doi: 10.1093/jas/skz212).
  • Santos T.M., Gilbert R.O., Bicalho R.C. Metagenomic analysis of the uterine bacterial microbiota in healthy and metritic postpartum dairy cows. Journal of Dairy Science, 2011, 94(1): 291-302 (doi: 10.3168/jds.2010-3668).
  • Jeon S.J., Vieira-Neto A., Gobikrushanth M., Daetz R., Mingoti R.D., Parize A.C., de Freitas S.L., da Costa A.N., Bicalho R.C., Lima S., Jeong K.C., Galvao K.N. Uterine microbiota progression from calving until establishment of metritis in dairy cows. Applied and Environmental Microbiology, 2015, 81(18): 6324-6332 (doi: 10.1128/AEM.01753-15).
  • Bicalho M.L.S., Santin T., Rodrigues M.X., Marques C.E., Lima S.F., Bicalho R.C. Dynamics of the microbiota found in the vaginas of dairy cows during the transition period: associations with uterine diseases and reproductive outcome. Journal of Dairy Science, 2017, 100(4): 3043-3058 (doi: 10.3168/jds.2016-11623).
  • Шкуратова И.А., Шилова Е.Н., Соколова О.В., Ряпосова М.В. Программы контроля инфекционных факторов, влияющих на репродуктивную функцию высокопродуктивных молочных коров. Ветеринария и кормление, 2020, 2: 54-57 (doi: 10.30917/ATT-VK-1814-9588-2020-2-13).
  • Лаптев Г.Ю., Новикова Н.И., Ильина Л.А., Йылдырым Е.А., Думова В.А., Племяшов К.В., Корочкина Е.А. Сравнительный анализ микробиоценоза влагалища у коров методом realtime PCR. Ветеринария, 2014, 8: 33-37.
  • Oikonomou G., Addis M.F., Chassard C., Nader-Macias M.E.F., Grant I., Delbès C., Bogni C.I., Le Loir Y., Even S. Milk microbiota: what are we exactly talking about? Frontiers in Microbiology, 2020, 11: 60 (doi: 10.3389/fmicb.2020.00060).
  • Fursova K., Sorokin A., Sokolov S., Dzhelyadin T., Shulcheva I., Shchannikova M., Ni-kanova D., Artemieva O., Zinovieva N., Brovko F. Virulence factors and phylogeny of Staphylo-coccus aureus associated with bovine mastitis in Russia based on genome sequences. Frontiers in Veterinary Science, 2020, 7: 135 (doi: 10.3389/fvets.2020.00135).
  • Gruninger R.J., Ribeiro G.O., Cameron A., McAllister T.A. Invited review: application of meta-omics to understand the dynamic nature of the rumen microbiome and how it responds to diet in ruminants. Animal, 2019, 13(9): 1843-1854 (doi: 10.1017/S1751731119000752).
  • Gharechahi J., Vahidi M.F., Bahram M., Han J.L., Ding X.Z., Salekdeh G.H. Metagenomic analysis reveals a dynamic microbiome with diversified adaptive functions to utilize high ligno-cellulosic forages in the cattle rumen. The ISME Journal, 2021, 15(4): 1108-1120 (doi: 10.1038/s41396-020-00837-2).
  • Ong C.T., Turni C., Blackall P.J., Boe-Hansen G., Hayes B.J., Tabor A.E. Interrogating the bovine reproductive tract metagenomes using culture-independent approaches: a systematic re-view. Animal Microbiome, 2021, 3(1): 41 (doi: 10.1186/s42523-021-00106-3).
  • Dahlberg J., Sun L., Persson Waller K., Östensson K., McGuire M., Agenäs S., Dicksved J. Microbiota data from low biomass milk samples is markedly affected by laboratory and reagent contamination. PLoS ONE, 2019, 14(6): e0218257 (doi: 10.1371/journal.pone.0218257).
  • Hoque M.N., Istiaq A., Rahman M.S., Islam M.R., Anwar A., Siddiki A.M.A.M.Z., Sultana M., Crandall K.A., Hossain M.A. Microbiome dynamics and genomic determinants of bovine mastitis. Genomics, 2020, 112(6): 5188-5203 (doi: 10.1016/j.ygeno.2020.09.039).
  • Ong C.T., Ross E.M., Boe-Hansen G., Turni C., Hayes B.J., Fordyce G., Tabor A.E. Adaptive sampling during sequencing reveals the origins of the bovine reproductive tract microbiome across reproductive stages and sexes. Scientific Reports, 2022, 12(1): 15075 (doi: 10.1038/s41598-022-19022-w).
  • Anahtar M.N., Bowman B.A., Kwon D.S. Efficient nucleic acid extraction and 16S rRNA gene sequencing for bacterial community characterization. Journal of Visualized Experiments: JoVE, 2016, (110): 53939 (doi: 10.3791/53939).
  • Edgar R.C. UPARSE: highly accurate OTU sequences from microbial amplicon reads. Nature Methods, 2013, 10(10): 996-998 (doi: 10.1038/nmeth.2604).
  • Edgar R.C. SINTAX: a simple non-Bayesian taxonomy classifier for 16S and ITS sequences. bioRxiv, 2016: 074161 (doi: 10.1101/074161).
  • Camacho C., Coulouris G., Avagyan V., Ma N., Papadopoulos J., Bealer K., Madden T.L. BLAST+: architecture and applications. BMC Bioinformatics, 2019, 10: 421 (doi: 10.1186/1471-2105-10-421).
  • Calle M.L. Statistical analysis of metagenomics data. Genomics & Informatics, 2019, 17(1): e6 (doi: 10.5808/GI.2019.17.1.e6).
  • Gryaznova M.V., Syromyatnikov M.Y., Dvoretskaya Y.D., Solodskikh S.A., Klimov N.T., Mi-khalev V.I., Zimnikov V.I., Mikhaylov E.V., Popov V.N. Microbiota of cow’s milk with udder pathologies. Microorganisms, 2021, 9(9): 1974 (doi: 10.3390/microorganisms9091974).
  • Liu K., Deng Z., Zhang L., Gu X., Liu G., Liu Y., Chen P., Gao J., Han B., Qu W. Biological characteristics and pathogenicity of Helcococcus ovis isolated from clinical bovine mastitis in a Chi-nese dairy herd. Frontiers in Veterinary Science, 2022, 8: 756438 (doi: 10.3389/fvets.2021.756438).
  • Wang M.L., Liu M.C., Xu J., An L.G., Wang J.F., Zhu Y.H. Uterine microbiota of dairy cows with clinical and subclinical endometritis. Frontiers in Microbiology, 2018, 9: 2691 (doi: 10.3389/fmicb.2018.02691).
  • Kanoe M., Nouka K., Toda M. Isolation of obligate anaerobic bacteria from bovine abscesses in sites other than the liver. Journal of Medical Microbiology, 1984, 18(3): 365-369 (doi: 10.1099/00222615-18-3-365).
  • Francis A.M., Jeon S.J., Cunha F., Jeong K.C., Galvão K.N. Draft genome sequences of two Fusobacterium necrophorum strains isolated from the uterus of dairy cows with metritis. Microbi-ology Resource Announcements, 2019, 8(17): e00201-19 (doi: 10.1128/MRA.00201-19).
  • Tadepalli S., Narayanan S.K., Stewart G.C., Chengappa M.M., Nagaraja T.G. Fusobacterium necrophorum: a ruminal bacterium that invades liver to cause abscesses in cattle. Anaerobe, 2009, 15(1-2): 36-43 (doi: 10.1016/j.anaerobe.2008.05.005).
  • Polveiro R.C., Vidigal P.M.P., Mendes T.A.O., Yamatogi R.S., Lima M.C., Moreira M.A.S. Effects of enrofloxacin treatment on the bacterial microbiota of milk from goats with persistent mastitis. Scientific Reports, 2020, 10(1): 4421 (doi: 10.1038/s41598-020-61407-2).
  • Tosaki K., Kojima H., Akama S., Ootake Y., Inoue K., Katsuda K., Shibahara T. Bovine esoph-ageal and glossal ulceration associated with Pseudomonas aeruginosa and Fusobacterium spp. in a 10-month-old Holstein heifer. The Journal of Veterinary Medical Science, 2018, 80(7): 1174-1178 (doi: 10.1292/jvms.17-0616).
  • Staton G.J., Sullivan L.E., Blowey R.W., Carter S.D., Evans N.J. Surveying bovine digital der-matitis and non-healing bovine foot lesions for the presence of Fusobacterium necrophorum, Por-phyromonas endodontalis and Treponema pallidum. The Veterinary Record, 2020, 186(14): 450 (doi: 10.1136/vr.105628).
  • Kano R., Kobayashi Y., Nishikawa A., Murata R., Itou T., Ito T., Suzuki K., Kamata H. Next-generation sequencing analysis of bacterial flora in bovine prototheca mastitic milk. Medical My-cology Journal, 2018, 59(3): E41-E46 (doi: 10.3314/mmj.18-00004).
  • Mackie R.I., Aminov R.I., Hu W., Klieve A.V., Ouwerkerk D., Sundset M.A., Kamagata Y. Ecology of uncultivated Oscillospira species in the rumen of cattle, sheep, and reindeer as assessed by microscopy and molecular approaches. Applied and Environmental Microbiology, 2003, 69(11): 6808-6815 (doi: 10.1128/AEM.69.11.6808-6815.2003).
  • Verdier-Metz I., Delbès C., Bouchon M., Pradel P., Theil S., Rifa E., Corbin A., Chassard C. Influence of post-milking treatment on microbial diversity on the cow teat skin and in milk. Dairy, 2022, 3(2): 262-276 (doi: 10.3390/dairy302002).
  • Verdier-Metz I., Gagne G., Bornes S., Monsallier F., Veisseire P., Delbès-Paus C., Montel M.C. Cow teat skin, a potential source of diverse microbial populations for cheese production. Applied and Environmental Microbiology, 2012, 78(2): 326-333 (doi: 10.1128/AEM.06229-11).
  • Petri R.M., Vahmani P., Yang H.E., Dugan M.E.R., McAllister T.A. Changes in rumen microbial profiles and subcutaneous fat composition when feeding extruded flaxseed mixed with or before hay. Frontiers in Microbiology, 2018, 9: 1055 (doi: 10.3389/fmicb.2018.01055).
  • Dréno B., Pécastaings S., Corvec S., Veraldi S., Khammari A., Roques C. Cutibacterium acnes (Propionibacterium acnes) and acne vulgaris: a brief look at the latest updates. Journal of the Eu-ropean Academy of Dermatology and Venereology: JEADV, 2018, 32(Suppl 2): 5-14 (doi: 10.1111/jdv.15043).
  • Kumar H., Jang Y.N., Kim K., Park J., Jung M.W., Park J.E. Compositional and functional characteristics of swine slurry microbes through 16S rRNA metagenomic sequencing approach. Animals, 2020, 10(8): 1372 (doi: 10.3390/ani10081372).
  • Jeon S.J., Cunha F., Vieira‐Neto A., Bicalho R.C., Lima S., Bicalho M.L., Galvão K.N. Blood as a route of transmission of uterine pathogens from the gut to the uterus in cows. Microbiome, 2017, 5: 109 (doi: 10.1186/s40168‐017‐0328‐9).
  • Khalil A., Batool A., Arif S. Healthy cattle microbiome and dysbiosis in diseased phenotypes. Ruminants, 2022, 2(1): 134-156 (doi: 10.3390/ruminants2010009).
  • Deng F., McClure M., Rorie R., Wang X., Chai J., Wei X., Lai S., Zhao J. The vaginal and fecal microbiomes are related to pregnancy status in beef heifers. Journal of Animal Science and Bio-technology, 2019, 10: 92 (doi: 10.1186/s40104-019-0401-2).
  • Лаптев Г., Йылдырым Е., Ильина Л. Микробиом рубца — основа здоровья коров. Животноводство России, 2020, 4: 42-45.
  • Chen H., Fu K., Pang B., Wang J., Li H., Jiang Z., Feng Y., Tian W., Cao R. Determination of uterine bacterial community in postpartum dairy cows with metritis based on 16S rDNA sequenc-ing. Veterinary and Animal Science, 2020, 10: 100102 (doi: 10.1016/j.vas.2020.100102).
  • Ueno Y., Suzuki K., Takamura Y., Hoshinoo K., Takamatsu D., Katsuda K. Antimicrobial re-sistance and associated genetic background of Histophilus somni isolated from clinically affected and healthy cattle. Frontiers in Veterinary Science, 2022, 9: 1040266 (doi: 10.3389/fvets.2022.1040266).
  • Maboni G., Blanchard A., Frosth S., Stewart C., Emes R., Tötemeyer S. A distinct bacterial dysbiosis associated skin inflammation in ovine footrot. Scientific Reports, 2017, 7: 45220 (doi: 10.1038/srep45220).
  • Jangid A., Fukuda S., Suzuki Y., Taylor T.D., Ohno H., Prakash T. Shotgun metagenomic se-quencing revealed the prebiotic potential of a grain-based diet in mice. Scientific Reports, 2022, 12: 6748 (doi: 10.1038/s41598-022-10762-3).
  • Zhao Y., Zhao G. Decreasing ruminal methane production through enhancing the sulfate reduc-tion pathway. Animal Nutrition (Zhongguo xu mu shou yi xue hui), 2022, 9: 320-326 (doi: 10.1016/j.aninu.2022.01.006).
  • Horvat R.T., El Atrouni W., Hammoud K., Hawkinson D., Cowden S. Ribosomal RNA sequence analysis of Brucella infection misidentified as Ochrobactrum anthropi infection. Journal of Clinical Microbiology, 2011, 49(3): 1165-1168 (doi: 10.1128/JCM.01131-10).
  • Wang Y., Wang J., Li H., Fu K., Pang B., Yang Y., Liu Y., Tian W., Cao R. Characterization of the cervical bacterial community in dairy cows with metritis and during different physiological phases. Theriogenology, 2018, 108: 306-313 (doi: 10.1016/j.theriogenology.2017.12.028).
Еще
Статья научная