Современный взгляд на проблему лечения инфекционного перитонита кошек
Автор: Кучинский М.П., Мурачева О.В.
Статья в выпуске: 2 т.254, 2023 года.
Бесплатный доступ
Инфекционный перитонит кошек (Feline infectious peritonitis (FIP)) - фатальная иммуноопосредованная вирусная болезнь кошачьих. Болеют кошки всех возрастов, но наиболее чувствительны молодые животные в возрасте до 2 лет, а также взрослые старше 10 лет. Прогноз для кошки с FIP крайне неблагоприятный - 99% летальный исход. В данной статье представлен современный взгляд на проблему лечения инфекционного перитонита кошек. Представлен краткий обзор препаратов, предложенных для симптоматического и этиотропного лечения болезни. Из обзора можно сделать выводы, что большинство препаратов, предложенных для этиотропного лечения FIP, обладают слабой доказательной базой и требуют проведения дальнейших исследований. Одним из наиболее эффективных средств показал себя нуклеозидный аналог GS-441524, разработанный в компании Gilead Sciences. На основе GS-441524 создан зарегистрированный препарат «Коронакэт» (разработчик ООО «ВЕТУЧАСТОК», производитель - филиал «Промветсервис-Альба» ООО «Промветсервис»).
Инфекционный перитонит кошек, fip, этиотропная терапия, gs-441524,
Короткий адрес: https://sciup.org/142238103
IDR: 142238103 | DOI: 10.31588/2413_4201_1883_2_254_130
Текст научной статьи Современный взгляд на проблему лечения инфекционного перитонита кошек
Инфекционный перитонит кошек (Feline infectious peritonitis (FIP)) – фатальная иммуноопосредованная вирусная болезнь кошачьих [2], вызываемая вирусом FCoV отряда Nidovirales ; семейства Coronaviridae ; рода Alphacoronavirus 1 [14].
Впервые FIP был описан Jean Holzworth в 1963 году в Бостонском ветеринарном центре Angell Memorial Animal Hospital как «фатальное расстройство у кошек» [2]. В России FIP начали регистрировать с середины 90-х годов у привозных чистопородных животных [7]. За исключением нескольких островов с изолированными популяциями кошек (например, Фолклендские острова), инфекция FCoV зарегистрирована во всем мире.
Этиология. FCoV относятся к двум патотипам: кишечным коронавирусом кошек (FECV), реплицируемом в кишечном эпителии, и вирусом инфекционного перитонита кошек (FIPV), приводящим к летальной инфекции с репликацией в моноцитах или макрофагах [14].
В настоящее время предполагается, что основной причиной развития FIP является мутация FCoV в организме у отдельно взятых животных [3]. Существует мнение, что менее вирулентный FECV превращается в FIPV, путём изменения клеточного тропизма с энтероцитов на моноциты/макрофаги [14]. Комплекс мутаций, вызывающих превращение FECV в FIPV, уникален для каждого животного
FCoV эндемичен в условиях большого скопления кошек. В среде с большим количеством кошек, например, в питомниках и в приютах, до 12 % кошек, инфицированных FCoV, могут заболеть FIP. Распространённость FCoV ниже у индивидуально содержащихся, бездомных или диких животных. FСoV и, следовательно, FIP у чистопородных животных регистрируется чаще, чем у метисов. Породная предрасположенность статистически значима у абиссинской, бенгальской, бирманской, британской короткошёрстной, гималайской, рэгдоллской и рексовой пород [14]. Болеют кошки всех возрастов, но наиболее чувствительны молодые животные в возрасте до 2 лет, а также взрослые старше 10 лет [7].
Источником FCoV служат больные и переболевшие кошки, а также вирусоносители, выделяющие в вирус с фекалиями, соответственно основной путь передачи – фекально-оральный [4, 5]. Факторы передачи – объекты внешней среды, в том числе предметы ухода, а также обувь и одежда владельцев, контаминированные возбудителем. Основным фактором передачи в группе кошек является лоток. Однако считается, что горизонтальная передача FIP, в отличие от FCoV, происходит не очень часто, если вообще происходит. Описаны случаи трансплацентарной передачи вируса.
После попадания в организм FCoV размножается в эпителиальных клетках ворсинок тонкого кишечника. Обычно это не сопровождается клиническими проявлениями, но иногда развивается энтерит [14] с транзиторной диареей у котят [3]. Выделение вируса во внешнюю среду наступает в течение недели после заражения [14], когда вирусом заселены тонкий и толстый кишечник. Кошки выделяют вирус с фекалиями в течение нескольких недель, месяцев, а в некоторых случаях всю жизнь (постоянно). Возбудитель также может реплицироваться в нёбных миндалинах, в этом случае он выделяется со слюной [6]. Инкубационный период FIP составляет около 14 дней при влажной форме и до нескольких недель при развитии сухой формы [2].
Репликация FCoV в активированных моноцитах и макрофагах является ключевым событием в патогенезе. В основе FIP лежит иммуноопосредованный системный васкулит, возникающий в результате взаимодействия между вирусом или его антигеном и специфическими противовирусными антителами.
Поражённые моноциты прикрепляются к стенкам вен малого и среднего размера, высвобождая матриксную металлопротеиназу-9, которая разрушает коллаген базальной мембраны сосудов, что приводит к утечке плазмы. При острых формах FIP поражаются многие сосуды, что проявляется клинически как выпот в брюшной, грудной и/или перикардиальной полостях [14].
Принципиальной особенностью болезни является образование пиогранулём. Пиогранулёмы покрывают серозные поверхности органов брюшной полости, однако могут встречаться в грудной полости на плевре и перикарде [3]. При хронических формах FIP периваскулярные пиогранулёмы могут стать довольно большими, их легко принять за опухоль.
Клиническая картина FIP значительно варьирует, отражая вариабельность распределения васкулита и гранулематозных поражений. Васкулопатия может привести к «влажным» выпотам, в то время как образование гранулём приводит к «сухим» массовым поражениям внутренних органов. Однако случаи выпотного FIP также имеют пиогранулематозные поражения, и, у многих кошек с сухой формой в конечном итоге развиваются выпоты. Наиболее частой считается форма, сопровождающаяся развитием выпота.
Выпотная форма FIP может быть связана с образованием выпота в одной или нескольких полостях тела. Абдоминальные выпоты, приводящие к клиническим проявлениям асцита, являются наиболее частыми [14]. Перитонит сопровождается увеличением живота в объёме из-за скопления свободной жидкости; отмечается тестоватость и иногда болезненность живота [6].
Клинические признаки сухой формы FIP зависят от органов, охваченных гранулематозными поражениями: могут наблюдаться иммуноопосредованный гломерулонефрит, пиогранулематозная пневмония, язвенный колит, мезентеральная лимфаденомегалия в виде пальпируемого образования в брюшной полости [3; 14]. Дерматологические признаки могут проявляться в виде множественных незудящих или зудящих узелков или папул. Сообщалось о синдроме хрупкости кожи. Неврологический FIP может проявляться клиническими признаками, связанными с очаговыми, мультифокальными или диффузными изменениями в головном, спинном мозге и мозговых оболочках [14]. Специфические глазные симптомы включают ирит с изменением цвета радужной оболочки глаза, двусторонний передний гранулематозный увеит, часто с большими роговичными преципитатами типа «бараньего жира», фибринозный экссудат в передней камере глаза, хориоретинит с пиогранулематозным экссудатом вокруг сосудов сетчатки [6]. У многих кошек может возникать генерализованный синовиит, проявляющийся хромотой [3].
Ни один диагностический тест не может подтвердить наличие FIP, так как до сих пор отсутствует метод диагностики со 100% специфичностью и чувствительностью.
В настоящее время эффективность единственной из доступных вакцин против FIP – Примуцелла FIP (Pfizer Animal Health) – активно оспаривается [6].
Результат исследований. Прогноз для кошки с FIP крайне неблагоприятный [24] – 99 % летальный исход [6]. Прогрессирование болезни между появлением клинических признаков и смертью варьирует, но у более молодых кошек и кошек с выпотом болезнь протекает острее, чем у пожилых кошек и кошек без выпота [24]. Выживаемость, как правило, меньше, чем 2 месяца при выпотной форме, тогда как сухой FIP имеет более хроническое течение [14]. Некоторые кошки без выпота могут жить от нескольких месяцев до нескольких лет [24].
До сих пор для FIP не существовало эффективного этиотропного лечения, поэтому каждая кошка с подтверждённым FIP в конце концов умирала или подвергалась эвтаназии. Лечение инфекционного перитонита кошек сводилось к симптоматической терапии для подавления иммунитета и продления жизни животного (Таблица 1 и Таблица 2) [18].
Таблица 1 – Препараты, которые были предложены для симптоматического лечения кошек с
FIP (по данным European Advisory Board on Cat Diseases (ABCD))
Препарат |
Комментарий |
Рекомендации |
Преднизолон/ дексаметазон |
Действует как иммунодепрессант. Нет доступных контролируемых исследований. Некоторым кошкам лечение помогает, и они выживают в течение нескольких месяцев [27]. |
В настоящее время предпочтительное симптоматическое лечение, особенно у кошек с выпотом (при наличии выпота можно рассмотреть возможность введения высокой дозы дексаметазона в полость). |
Азатиоприн |
Направлен на иммуносупрессию (и на снижение дозы преднизолона/дексаметазона). Токсичен для кошек. Нет опубликованных исследований. |
Не рекомендуется к применению. |
Хлорамбуцил |
Направлен на иммуносупрессию (и на снижение дозы преднизолона/ дексаметазона). Нет опубликованных исследований. |
Можно рассматривать в комбинации с преднизолоном/ дексаметазоном. |
Циклофосфамид |
Направлен на иммуносупрессию (и на снижение дозы преднизолона/дексаметазона). Нет опубликованных исследований. |
Можно рассматривать в комбинации с преднизолоном/ дексаметазоном. |
Антитело против TNF-альфа |
Блокирует TNF-альфа [29]. Некоторая эффективность в плацебо-контролируемом исследовании с участием нескольких кошек с экспериментально индуцированным FIP [11] . Используется в неконтролируемом исследовании кошек с экспериментально индуцированным FIP наряду с лечением итраконазолом [12], в ходе которого у двух из трёх кошек улучшилось состояние. |
Требуются плацебо-контролируемые полевые исследования. |
Озагрел гидрохлорид |
Ингибирует синтез тромбоксана, что приводит к уменьшению агрегации тромбоцитов и высвобождению цитокинов. Применялся только у двух кошек с некоторым улучшением клинических признаков [35]. |
Не рекомендуется до тех пор, пока не будут проведены дальнейшие исследования. |
Пентоксифиллин/ Пропентофиллин |
Направлен на лечение васкулита. Единственное плацебо-контролируемое двойное слепое исследование пропентофиллина не показало эффективности (все кошки получали глюкокортикоиды) [14]. |
Не рекомендуется к применению. |
Противовирусные и иммуномодулирующие препараты, которые были предложены для этиотропного лечения кошек с FIP (по данным European Advisory Board on Cat Diseases (ABCD)):
-
1. GC376. Комментарий: ингибирует 3C-подобную протеазу. Многообещающие результаты in vitro и в одном экспериментальном исследовании in vivo [18], особенно у кошек с выпотом, и в одном полевом исследовании, хотя FIP не
-
2. GS-441524. Комментарий: действует как аналог нуклеозида, который обрывает цепь РНК вирусной РНК-зависимой РНК-полимеразы. Очень многообещающие результаты in vitro, в одном экспериментальном исследовании in vivo [22] и в трёх полевых исследованиях, хотя FIP не был подтверждён во всех случаях [10; 20; 27], а также в двух ретроспективных исследованиях кошек с подозрением на FIP [38]. Проспективное исследование показало 100 % эффективность у 18 кошек с FIP, получавших пероральный GS-441524 [20]. Рекомендации: коммерчески недоступен в большинстве стран, но доступен как «специальный» (нелицензированный) препарат для ветеринарного применения в Австралии и Великобритании. Показывает отличные перспективы.
-
3. Ремдесивир – GC-5734. Комментарий: аналог нуклеозида и пролекарство GS-441524. Не активен при приёме внутрь, поэтому его следует вводить подкожно или внутривенно. Нет опубликованных исследований эффективности, но имеется информация о его положительном использовании [35] из обсервационных исследований. Рекомендации: коммерчески доступный как лекарство для человека, но очень дорогой, доступный как доступный «специальный» (нелицензированный) препарат для ветеринарного применения в Австралии и Великобритании. Требуются полевые исследования.
-
4. Итраконазол. Комментарий: ингибирует транспорт холестерина в FCoV типа I in vitro [29] и, таким образом, ингибирует репликацию FCoV. Синергизм in vitro с GS-441524 показан для FCoV типа 1 [11]. Использовался в небольшом неконтролируемом исследовании кошек с экспериментально индуцированным FIP наряду с лечением антителами против TNF-альфа человека [13], в ходе которого у двух из трёх кошек с FIP наблюдалось улучшение. Рекомендации: необходимы дальнейшие контролируемые полевые
-
5. Куркумин. Комментарий: снижал количество связанных с иммунитетом белков, вырабатываемых при заражении клеточных культур FCoV, ассоциированным с FIP, и ингибировал репликацию вируса in vitro в виде наночастиц хитозана, инкапсулированных куркумином [23]. Повышенная биодоступность инкапсулированных куркумином хитозановых наночастиц по сравнению с куркумином в фармакокинетическом анализе у здоровых кошек. Рекомендации: необходимы дальнейшие исследования.
-
6. Рибавирин. Комментарий: ингибирует репликацию FCoV in vitro, но очень токсичен для кошек [37]. Рекомендации: к использованию не рекомендуется.
-
7. Видарабин. Комментарий: ингибирует репликацию FCoV in vitro, но эффективность in vivo неизвестна [9]. Токсичен для кошек при системном введении. Рекомендации: к использованию не рекомендуется.
-
8. Нелфинавир. Комментарий: действует как ингибитор протеазы, который показал синергетический эффект против FCoV с агглютинином Galanthus nivalis in vitro [17]. Данные in vivo отсутствуют. Рекомендации: не рекомендуется до тех пор, пока не проведены исследования in vivo.
-
9. Galanthus nivalis агглютинин (GNA). Комментарий: связывается с FCoV-гликозилированными гликопротеинами оболочки, тем самым ингибируя прикрепление вируса к клетке-хозяину. Показан синергический эффект против FCoV с Нелфинавиром in vitro [17]. Данные in vivo отсутствуют. Рекомендации: не рекомендуется до тех пор, пока не проведены исследования in vivo.
-
10. Циклоспорин А и неиммуносупрессивные производные (например, алоспоривир). Комментарий: ингибирует циклофилины и тем самым блокирует репликацию FCoV in vitro [34]. Снижение вирусной нагрузки у одной кошки [32]. В зависимости от производного циклоспорина А, может привести к
-
11. Индометацин. Комментарий: действует как метаболит циклопентенонциклооксигеназы (ЦОГ) с активностью против нескольких РНК-вирусов, включая собачий коронавирус [8]. Нет данных об эффективности против FCoV in vitro или у кошек с FIP. Рекомендации: не рекомендуется до тех пор, пока не проведены дальнейшие исследования. Безопасность у кошек неизвестна.
-
12. Хлорохин. Комментарий: ингибирует репликацию FCoV in vitro и оказывает противовоспалительное действие in vivo [31]. Может повышать активность ферментов печени. Эффективен в качестве низкомолекулярного ингибитора репликации FCoV in vitro [21]. Рекомендации: не рекомендуется до тех пор, пока не проведены дальнейшие полевые исследования.
-
13. Гидроксихлорохин. Комментарий: ингибирует репликацию FCoV типа I и II in vitro с меньшими признаками цитотоксичности, чем у хлорохина [33]; добавление омега-интерферона усилило противовирусное действие против репликации FCoV типа I. Рекомендации: Не рекомендуется до тех пор, пока не проведены дальнейшие полевые исследования.
-
14. Мефлохин. Комментарий: эффективно ингибирует репликацию in vitro как низкомолекулярный ингибитор FCoV [21]. Используется в Австралии в качестве дополнительного лечения FIP [35], но пока нет опубликованных исследований. Рекомендации: необходимы дальнейшие контролируемые полевые исследования.
-
15. Кошачий интерферон-омега. Комментарий: ингибирует репликацию FCoV in vitro и уменьшил выделение FCoV у 9 из 11 кошек (без FIP) [16], но не был эффективен в одном плацебо-контролируемом исследовании кошек с выпотным FIP, которые одновременно лечились глюкокортикоидами [28]. Рекомендации: необходимы дальнейшие исследования на кошках без выпота и с
был подтверждён во всех случаях [26]. Рекомендации: требуются дальнейшие контролируемые полевые исследования.
исследования.
иммуносупрессии. Рекомендации: необходимы дальнейшие контролируемые полевые исследования.
более низкими одновременными дозами глюкокортикоидов.
По последним данным большинство препаратов, которые были предложены для этиотропного лечения кошек с FIP, имеют слабую доказательную базу и требуют дальнейших исследований (GC376, Ремдесивир – GC-5734, Нелфинавир, Galanthus nivalis, Циклоспорин А, Индометацин, Хлорохин, Гидроксихлорохин, Мефлохин, Итраконазол, Кошачий интерферон-омега, Куркумин).
Одним из наиболее эффективных препаратов с прямым противовирусным действием показал себя GS-441524(GS = Gilead Sciences). GS-441524 – это антивирусный препарат, сложное органическое соединение, которое представляет собой аналог нуклеозида и является молекулярным предшественником фармакологически активной молекулы нуклеозидтрифосфата. GS-441524 становится активным только после внутриклеточного метаболизма до трифосфата, который является ложным субстратом для вирусной РНК- зависимой РНК-полимеразы. Активная форма нуклеозида GS-441524 ингибирует транскрипцию, опосредованную РНК-зависимой РНК-полимеразой, путём включения в зарождающийся вирусный транскрипт и преждевременного прекращения транскрипции. Следовательно, это ингибитор, который действует как терминирующая последовательность (терминатор) цепи вирусной РНК, и вирус не может дальше реплицироваться. До недавнего времени были доступны только незарегистрированные препараты на основе GS-441524, произведённые в Китае. Однако в 2022 году появился первый зарегистрированный препарат, предназначенный для этиотропного лечения инфекционного перитонита кошек, – «Коронакэт» (разработчик ООО «ВЕТУЧАСТОК», производитель – филиал «Промветсервис-Альба» ООО «Промветсервис»). В составе 1 мл препарата содержится 10 мг нуклеозида GS 441524 [1].
Ещё один препарат, показавший свою эффективность против FIP, – Молнупиравир. Молнупиравир – пролекарство, метаболизирующееся до аналога рибонуклеозида бета-d-N4-гидроксицитидина (EIDD-2801). В присутствии бета-d-N4-гидроксицитидина (EIDD-2801) вирусная РНК-зависимая РНК-полимераза считывает его как уридин вместо цитидина и вставляет аденозин вместо гуанозина. Нарушение транскрипции ведёт к многочисленным мутациям в вирусном геноме и дальнейшему прекращению репликации вируса. Молнупиравир был испытан in vivo на 286 кошках с различными формами FIP, при этом среди кошек не было зарегистрировано летальных исходов. 28 кошек были клинически здоровы через 4-6 недель лечения и 258 кошек — через 8 недель. Однако в исследовании in vitro на культуре клеток цитотоксичность бета-d-N4-гидроксицитидина (EIDD-2801) при 100 uM составляет 3,8 (в то время как цитотоксичность GS-441524 при 100 uM равна 0). С учётом вышесказанного не исключено наличие токсических эффектов при долгосрочном применении упомянутого препарата [24].
Заключение. Инфекционный перитонит более известный под аббревиатурой FIP – это тяжело протекающая аутоиммунная болезнь кошек. Инфекционный перитонит кошек до недавних пор, вследствие отсутствия средств этиотропной терапии, считался неизлечимой болезнью с 99 % летальным исходом. Лечение инфекционного перитонита кошек сводилось к симптоматической терапии и введению высоких доз глюкокортикоидов для подавления иммунитета и продления жизни животного. Большинство препаратов, предложенных для этиотропного лечения FIP, обладают слабой доказательной базой и требуют проведения дальнейших исследований. Одним из наиболее эффективных средств показал себя нуклеозидный аналог GS-441524, разработанный в компании Gilead Sciences. На основе GS-441524 создан зарегистрированный препарат
«Коронакэт».
Резюме
Инфекционный перитонит кошек (Feline infectious peritonitis (FIP)) – фатальная иммуноопосредованная вирусная болезнь кошачьих. Болеют кошки всех возрастов, но наиболее чувствительны молодые животные в возрасте до 2 лет, а также взрослые старше 10 лет. Прогноз для кошки с FIP крайне неблагоприятный – 99% летальный исход. В данной статье представлен современный взгляд на проблему лечения инфекционного перитонита кошек. Представлен краткий обзор препаратов, предложенных для симптоматического и этиотропного лечения болезни. Из обзора можно сделать выводы, что большинство препаратов, предложенных для этиотропного лечения FIP, обладают слабой доказательной базой и требуют проведения дальнейших исследований. Одним из наиболее эффективных средств показал себя нуклеозидный аналог GS-441524, разработанный в компании Gilead Sciences. На основе GS-441524 создан зарегистрированный препарат «Коронакэт» (разработчик ООО «ВЕТУЧАСТОК», производитель – филиал «Промветсервис-Альба» ООО «Промветсервис»).
MODERN VIEW ON THE PROBLEM OF TREATMENT OF INFECTIOUS PERITONITIS IN CATS
Kuchinsky M.P., Muracheva O.V.
Список литературы Современный взгляд на проблему лечения инфекционного перитонита кошек
- Инструкция по применению ветеринарного препарата «Коронакэт». – Текст: электронный // Коронакэт: сайт препарата. –URL: https://fip-cat.ru/ (23.10.22).
- Барсегян, Л. С. Инфекционный вирусный перитонит кошек (обзор литературы) / Л. С. Барсегян, О. И. Сухарев, Е. В. Куликов // Актуальные вопросы ветеринарной биологии. – 2015. – №1(25). – С. 16-23.
- Куликов, Е. В. Патологоанатомическая характеристика вирусного перитонита кошек / Е. В. Куликов, Ю. А. Ватников, Н. В. Сахно, И. А. Попова, Л. А. Гнездилова [и др.] // Российский журнал сельскохозяйственных и социально-экономических наук. – 2017. – № 4(64). – C. 270-280.
- Пальцева, Е. Д. Коронавирусы в популяции домашних кошек / Е. Д. Пальцева, В. И. Плешакова // Вестник Омского государственного аграрного университета. – 2022. – № 1 (45). – С. 94-101.
- Равилов, Р.Х. Хламидиоз собак и кошек / Р. Х. Равилов // Практикум ветеринарного врача. – Москва, 2006. – 126 с.
- Соломахина, Л. А. Офтальмологические проявления вирусного перитонита кошек / Л. А. Соломахина, О. О. Смирнова // VetPharma. – 2017. – № 1. – С. 52-63.
- Терехова, Ю. О. Современный взгляд на диагностику, лечение и профилактику инфекционного перитонита кошек / Ю. О. Терехова, В. В. Цибезов, О. А. Верховский, Н. А. Рахманина, А. Л. Елаков // VetPharma. – 2014. – № 2(18). – С. 46-53.
- Amici, C. Indomethacin has a potent antiviral activity against SARS coronavirus / C. Amici, A. Di Caro, A. Ciucci, L. Chiappa [et all.] // Antivir Ther. – 2006. – №11(8). – PP. 1021-1030.
- Barlough, J. E. Effectiveness of three antiviral agents against FIP virus in vitro / J. E. Barlough, F. W. Scott // Vet Rec. – 1990. – № 126(22). – PP. 556-558.
- Dickinson, P. J. Antiviral treatment using the adenosine nucleoside analogue GS-441524 in cats with clinically diagnosed neurological feline infectious peritonitis / P. J. Dickinson, M. Bannasch, S. M. Thomasy, V. D. Murthy [et all.] // J Vet Intern Med. – 2020. – №34(4). – PP. 1587-1593.
- Doki, T. In vitro antiviral effects of GS-441524 and itraconazole combination against feline infectious peritonitis virus / T. Doki, K. Takahashi, N. Hasegawa, T. Takano // Res Vet Sci. – 2022. – №144. – PP. 27-33.
- Doki, T. Therapeutic effect of antifeline TNF-alpha monoclonal antibody for feline infectious peritonitis / T. Doki, T. Takano, K. Kawagoe, A. Kito, T. Hohdatsu // Res Vet Sci. – 2016. – №104. – PP. 17-23.
- Doki, T. Therapeutic effect of an anti-human-TNF-alpha antibody and itraconazole on feline infectious peritonitis / T. Doki, M. Toda, N. Hasegawa, T. Hohdatsu, T. Takano // Arch Virol. – 2020. – №165(5). – PP. 1197-1206.
- Feline Coronavirus & Feline Infectious Peritonitis. ABCD Guideline with literature review / European Advisory Board on Cat Diseases (ABCD); [updated by Séverine Tasker et al.]. – 2022. – 82 p.
- Fischer Y. Randomized, Placebo Controlled Study of the Effect of Propentofylline on Survival Time and Quality of Life of Cats with Feline Infectious Peritonitis / Y. Fischer, S. Ritz, K. Weber, C. Sauter-Louis, K. Hartmann // J. Vet. Intern. Med. – 2011. – № 25(6). – PP. 1270-1276.
- Gil, S. Relevance of feline interferon omega for clinical improvement and reduction of concurrent viral excretion in retrovirus infected cats from a rescue shelter / S. Gil, R. O. Leal, A. Duarte, D. Mc Gahie [et all.] // Res Vet Sci. – 2013. – №94(3). – PP. 753-763.
- Hsieh, L. E. Synergistic antiviral effect of Galanthus nivalis agglutinin and nelfinavir against feline coronavirus / L. E. Hsieh, C. N. Lin, B. L. Su, T. R. Jan [et all.] // Antiviral Res. – 2010. – №88(1). – PP. 25-30.
- Ishida, T. Use of recombinant feline interferon and glucocorticoid in the treatment of feline infectious peritonitis / T. Ishida, A. Shibanai, S. Tanaka, K. Uchida, M. Mochizuki // J Feline Med Surg. – 2004. – №6(2). – PP. 107-109.
- Kim, Y. Reversal of the Progression of Fatal Coronavirus Infection in Cats by a Broad-Spectrum Coronavirus Protease Inhibitor / Y. Kim, H. Liu, A. C. Galasiti Kankanamalage, S. Weerasekara // PLoS Pathog. – 2016. – № 12(3) – e1005531.
- Krentz, D. Curing Cats with Feline Infectious Peritonitis with an Oral Multi- Component Drug Containing GS-441524 / D. Krentz, K. Zenger, M. Alberer, S. Felten [et all.] // Viruses. – 2021. – №13(11).
- Mc Donagh, P. Identification and characterisation of small molecule inhibitors of feline coronavirus replication / P. Mc Donagh, P. A. Sheehy, J. M. Norris // Vet. Microbiol. – 2014. – № 174(3-4). – PP. 438-447.
- Murphy, B. G. The nucleoside analog GS-441524 strongly inhibits feline infectious peritonitis (FIP) virus in tissue culture and experimental cat infection studies / B. G. Murphy, M. Perron, E. Murakami, K. Bauer [et all.] // Vet. Microbiol. – 2018. – № 219. – PP. 226-233.
- Ng, S. W. Vitro Evaluation of Curcumin-Encapsulated Chitosan Nanoparticles against Feline Infectious Peritonitis Virus and Pharmacokinetics Study in Cats / S. W. Ng, G. T. Selvarajah, M. Z. Hussein, S. K. Yeap, A. R. Omar // Biomed Res Int. – 2020. – 3012198.
- Pedersen, N. C. An update on feline infectious peritonitis: virology and immunopathogenesis / N. C. Pedersen // Vet J. – 2014. – №201(2). – PP. 123-132.
- Pedersen N. C. The Long History of Beta-d-n4-Hydroxycytidine and Its Modern Application to Treatment of COVID-19 in People and FIP in Cats / N. C. Pedersen // Sock it to Fip. [(accessed on 8 October 2022)]. Available online: https://sockfip.org/httpssockfip- org-wp-content-uploads-2022-04-thelong- history-of-beta-d-n4-hydroxycytidineand-its-modern-application-to-treatment-ofcovid- 19-in-people-and-fip-in-cats-v2-pdf/.
- Pedersen, N. C. Efficacy of a 3Clike protease inhibitor in treating various forms of acquired feline infectious peritonitis / N. C. Pedersen, Y. Kim, H. Liu, A. C. Galasiti Kankanamalage [et al.] // J. Feline Med. Surg. – 2018. – № 20(4). – PP. 378-392.
- Pedersen, N. C. Efficacy and safety of the nucleoside analog GS-441524 for treatment of cats with naturally occurring feline infectious peritonitis / N. C. Pedersen, M. Perron, M. Bannasch, E. Montgomery [et al.] // J Feline Med Surg. – 2019. – № 21(4). – PP. 271-281.
- Ritz, S. Effect of feline interferonomega on the survival time and quality of life of cats with feline infectious peritonitis / S. Ritz, H. Egberink, K. Hartmann // J. Vet. Intern. Med. – 2007. – № 21(6). – PP. 1193-1197.
- Takano, T. Antiviral activity of itraconazole against type I feline coronavirus infection / T. Takano, M. Akiyama, T. Doki, T. Hohdatsu // Vet. Res. – 2019. – № 50(1). – 5 p.
- Takano, T. "Possible" involvement of TNF-alpha in apoptosis induction in peripheral blood lymphocytes of cats with feline infectious peritonitis / T. Takano, T. Hohdatsu [et al.] // Vet. Microbiol. – 2007. – № 119(2-4). – PP. 121-131.
- Takano T. Effect of chloroquine on feline infectious peritonitis virus infection in vitro and in vivo / T. Takano [et al.] // Antiviral Res. – 2013. – №99(2). – PP. 100-107.
- Takano, T. Differential effects of viroporin inhibitors against feline infectious peritonitis virus serotypes I and II / T. Takano, K. Nakano, T. Doki, T. Hohdatsu // Arch Virol. – 2015. – №160(5). – PP. 1163-1170.
- Takano, T. Antiviral Effects of Hydroxychloroquine and Type I Interferon on In Vitro Fatal Feline Coronavirus Infection / T. Takano, K. Satoh, T. Doki, T. Tanabe, T. Hohdatsu // Viruses. – 2020. – №12(5).
- Tanaka, Y. Suppression of feline coronavirus replication in vitro by cyclosporine A / Y. Tanaka, Y. Sato, S. Osawa, M. Inoue, S. Tanaka, T. Sasaki // Vet. Res. – 2012. – №43(1). – 41 p.
- Taylor, S. S. ISFM Protocol: An update on a treatment of feline infectious peritonitis in the UK. bit.ly / S. S. Taylor [et al.] // ISFMFIP protocol Accessed 20th February 2022.
- Watari, T. Effect of thromboxane synthetase inhibitor on feline infectious peritonitis in cats / T. Watari, T. Kaneshima, H. Tsujimoto, K. Ono, A. Hasegawa // J. Vet. Med. Sci. – 1998. – №60(5). – PP. 657-659.
- Weiss, R. C. Effect of interferon or Propionibacterium acnes on the course of experimentally induced feline infectious peritonitis in specific-pathogen-free and random-source cats / R. C. Weiss, N. R. Cox, T. Oostrom-Ram // Am. J. Vet. Res. – 1990. – № 51(5). – PP. 726-733.
- Yin, Y. A retrospective study of clinical and laboratory features and treatment on cats highly suspected of feline infectious peritonitis in Wuhan, China / Y. Yin, T. Li, C. Wang, X. Liu [et al.] // Sci Rep. – 2021. – № 11(1). – 5208 p.