Сравнение методов изотермической петлевой амплификации в режиме реального времени (LAMP) и полимеразной цепной реакции с флуоресцентной детекцией в режиме реального времени (ПЦР) для диагностика Streptococcus pneumoniae у свиней
Автор: Толстова Е.А., Агольцов В.А., Черных О.Ю., Падило Л.П., Попова О.М.
Статья в выпуске: 3 т.255, 2023 года.
Бесплатный доступ
Цель исследования являлось сравнение методов изотермической петлевой амплификации в режиме реального времени (LAMP) и полимеразной цепной реакции с флуоресцентной детекцией в режиме реального времени (ПЦР) для диагностика Streptococcus pneumoniae у свиней. Результаты, полученные при проведении лабораторных диагностических исследований биоматериала от свиней, поступившего в Кропоткинскую краевую лабораторию за последние 4 года (с 2019 по 2022 гг.), свидетельствуют о высокой частоте обнаружения S. pneumoniae (от 33 до 65%). Сравнив методики ПЦР и LAMP можно отметить, что у изотермической петлевой амплификации время реакции занимает от 5 до 45 минут, что позволяет провести то же исследование, что и ПЦР, но значительно быстрее, а также LAMP имеет высокую специфичность от 4-6 праймеров, а ПЦР только 2.
Диагностика, пцр с флуоресцентной детекцией в режиме реального времени, изотермическая петлевая амплификация lamp, свиньи
Короткий адрес: https://sciup.org/142238924
IDR: 142238924 | DOI: 10.31588/2413_4201_1883_2_255_336
Список литературы Сравнение методов изотермической петлевой амплификации в режиме реального времени (LAMP) и полимеразной цепной реакции с флуоресцентной детекцией в режиме реального времени (ПЦР) для диагностика Streptococcus pneumoniae у свиней
- Агольцов, В. А. Эффективность и безопасность лекарственных препаратов при лечении экспериментальных и спонтанных микоплазменных инфекций / В. А. Агольцов, Л. П. Падило, О. П. Бирюкова, М. М. Лигидова // Ветеринария сегодня. – 2022. – № 11. – С. 169-175.
- Бирюченкова, М. В. Разработка методов обнаружения генома Streptococcus suis на основе полимеразной цепной реакции / М. В. Бирюченкова, // Труды Федерального центра охраны здоровья животных. – Владимир. – 2017. – Т. 15 – С. 70-81.
- Лигидова, М. М. Терапевтическая эффективность энтрикима при энзоотической пневмонии свиней / М. М. Лигидова, В. А. Агольцов, Л. П. Падило, А. А. Гусев // Научная жизнь – 2020. – Выпуск 9 – С. 1260-1269.
- Лигидова, М. М. Изучение фармакокинетики действующих веществ препарата «Энтриким» при применении его животным / М. М. Лигидова, Е. А. Толстова, А. М. Семиволос, В. А. Агольцов, М. П. Мариничева // Аграрный научный журнал– 2022. – № 8 – С.47-49.
- Сухинин, А. А. Использование ПЦР для идентификации патогенных стрептококков / А. А. Сухинин // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии. – 2010. – № 2 – С. 13-15.
- Толстова, Е. А. Особенности диагностики и терапии стрептококкоза свиней, осложненного РРСС на племенной ферме / Е. А. Толстова, В. А. Агольцов, Л. П. Падило // Научная жизнь – 2022. – Т. 17. – Выпуск 1 – С. 157-166.
- Толстова, Е. А. Диагностика, терапия и специфическая профилактика стрептококкоза свиней, осложненного пастереллезом и микоплазмом / Е. А. Толстова, М. М. Лигидова, Л. П. Падило, А. М. Семиволос, В. А. Агольцов // Аграрный научный журнал – 2022. – № 1 – С.71-75.
- Clark, L. K. Evaluation of the effectiveness of a macrolide antibiotic on reduction of respiratory pathogens in 12-day and 21-day weaned pigs / L. K. Clark, C. C Wu., W. G. Alstine., K. E. Knox // J. Swine Health Prod. – 1998. V. 6 (6). – P. 257-262.
- Dacak, D. Primer reporte de micoplasmosis en Procyon cancrivorus en cautiverio en Asunción, Paraguay / D. Dacak, J. Petters., L. Batista-Cirne, M. Lucero, R. Aliendre, J. Guzmán, R. Ordoñez // Rev. Inv. Vet. – Perú. – 2021. – P. 32 (1): e19494. DOI: 10.15381/RIVEP.V32I1.19494.
- De Almeida, J. F. Polimerase chain reaction (PCR) in the diagnosis of goat mycoplasmosis proceeding from cultures stored in glycerol / J. F. De Almeida, E. R. do Nascimento, V. L. De Almeida Pereira [et al.] // Rev. Bras. Med. Vet. – 2007. – V. 29 (2). – P. 54-57.
- Mc Kelvie, J. Evaluation of tulathromycin for the treatment of pneumonia following experimental infection of swine with Mycoplasma hyopneumoniae / J. Mc Kelvie, J. H. Morgan., I. A. Nanjiani, J. Sherington, T. G. Rowan, S. J. Sunderland // Veterinary Therapeutics. – 2005. V. 6 (2). – P. 197-202. PMID: 16094566.
- Morrow, C. J. M. Antimicrobial susceptibility of pathogenic mycoplasmas in chickens in Asia. / C. J. M. Morrow, M. Z. Kreizinger, R. R. Achari, K. Bekő, C. Yvon Gyuranecz //Vet. Microbiol. – 2020. – V. 250. – P. 108840. – DOI: 10.1016/j.vetmic.2020.108840.
- Olson, L. B. The effect of tilmicosin in minimizing atrophic rhinitis, pneumonia, and pleuritis in swine / L. B. Olson, L. R. J. Bäckström // Swine Health Prod. – 2000. – V. 8 (6). P. 263–268.
- Suresh, V. Novel Real-Time PCR Assay for Rapid Detection of Virulent Streptococcus equi Subspecies zooepidemicus / V. Suresh, V. Kuchipudi, Meera Nair, A. Michele Yon // An Emerging Pathogen of Swine Front Vet Sci.2021.DOI:10.3389/fvets.2021.604675
- Zhang, X. H. Investigation of the efficiency and safety of tilmicosin phosphate in treating experimental mycoplasmal infections in pigs. / X. H. Zhang, J. Z. Pan, N. Wu, S. Tang, X. D. Lei, Y. Y. Sun [et al.] // Turk. J. Vet. Anim. Sci. – 2018. – V. 42(6). – P. 571–580. DOI: 10.3906/vet-1804-76.
