Сравнительное исследование эффектов мезенхимальных стволовых клеток при различных методах доставки в экспериментальной модели фиброза легких
Автор: Аверьянов Александр Вячеславович, Коноплянников Анатолий Георгиевич, Забозлаев Фдор Георгиевич, Сотникова Анна Геннадьевна, Данилевская Олеся Васильевна, Коноплянников Михаил Анатольевич, Татарский Алексей Романович
Журнал: Клиническая практика @clinpractice
Рубрика: Оригинальные исследования
Статья в выпуске: 4 т.9, 2018 года.
Бесплатный доступ
Обоснование. Одним из перспективных направлений лечения идиопатического легочного фиброза является трансплантация мезенхимальных стволовых клеток. В экспериментальных исследованиях на мелких животных используются внутривенный и эндобронхиальный (инсталляции) методы доставки клеточного препарата, в то время как у человека наиболее простым и доступным является ингаляционный способ доставки лекарств. Цель - определение оптимального типа небулайзера для сохранения жизнеспособных мезенхимальных стволовых клеток (МСК) при распылении с последующим сравнением эффектов ингаляционного и внутривенного методов доставки на стандартной модели блеомицинового легочного фиброза у кроликов. Методы. На первом этапе проводилась оценка выживаемости МСК ex vivo после 10-минутной небулизации через компрессорный, ультразвуковой и сетчатый (меш) небулайзеры. В дальнейшем использовался небулайзер, продемонстрировавший сохранность наибольшего числа клеток после распыления. На втором этапе, после бронхоскопической инсталляции блеомицина, 5 кроликов получили в заднюю правую долю внутривенную трансплантацию 2*106 аллогенных МСК, 5 - 2*107 МСК ингаляционно через компрессорный небулайзер; по 5 животных использовались в качестве здорового и блеомицинового контроля без лечения...
Мезенхимальные стволовые клетки, легочный фиброз, кролики, небулайзер
Короткий адрес: https://sciup.org/143166566
IDR: 143166566 | DOI: 10.17816/clinpract944-14
Список литературы Сравнительное исследование эффектов мезенхимальных стволовых клеток при различных методах доставки в экспериментальной модели фиброза легких
- Raghu G, Collard HR, Egan JJ, et al. An official ATS/ERS/JRS/ALAT statement: idiopathic pulmonary fibrosis: evidence-based guidelines for diagnosis and management. Am J Respir Crit Care Med. 2011; 183(6): 788-824 DOI: 10.1164/rccm.2009-040GL
- Navaratnam V, Fleming KM, West J, et al. The rising incidence of idiopathic pulmonary fibrosis in the U.K. Thorax. 2011; 66(6): 462-467 DOI: 10.1136/thx.2010.148031
- American Thoracic Society; European Respiratory Society. American Thoracic Society/European Respiratory Society international multidisciplinary consensus classification of the idiopathic interstitial pneumonias. Am J Respir Crit Care Med. 2002; 165(2): 277-304 DOI: 10.1164/ajrccm.165.2.ats01
- Toonkel RL, Hare JM, Matthay MA, Glassberg MK. Mesenchymal stem cells and idiopathic pulmonary fibrosis. Potential for clinical testing. Am J Respir Crit Care Med. 2013; 188(2): 133-140 DOI: 10.1164/rc-cm.201207-1204PP
- Moodley Y Ilancheran S, Samuel C, et al. Human amnion epithelial cell transplantation abrogates lung fibrosis and augments repair. Am J Respir Crit Care Med. 2010; 182(5): 643-651 DOI: 10.1164/rc-cm.201001-0014OC
- Murphy S, Lim R, Dickinson H, et al. Human amnion epithelial cells prevent bleomycin-induced lung injury and preserve lung function. Cell Transplant. 2011; 20(6): 909-923 DOI: 10.3727/096368910X543385
- Reddy M, Fonseca L, Gowda S, et al. Human adipose-derived mesenchymal stem cells attenuate early stage of bleomycin induced pulmonary fibrosis: comparison with pirfenidone. Int J Stem Cells. 2016; 9(2): 192-206 DOI: 10.15283/ijsc16041
- Awad HA, Butler DL, Boivin GP, et al. Autologous mesenchymal stem cell-mediated repair of tendon. Tissue Eng. 1999; 5(3): 267-277 DOI: 10.1089/ten.1999.5.267
- Ashcroft T, Simpson JM, Timbrell V. Simple method of estimating severity of pulmonary fibrosis on a numerical scale. J Clin Pathol. 1988; 41(4): 467-470.
- Yeo LY Friend JR, McIntosh MP, et al. Ultrasonic nebulization platforms for pulmonary drug delivery. Expert Opin Drug Deliv. 2010; 7(6): 663-679 DOI: 10.1517/17425247.2010.485608
- Martin AR, Finlay WH. Nebulizers for drug delivery to the lungs. Expert Opin Drug Deliv. 2015; 12(6): 889-900 DOI: 10.1517/17425247.2015.995087
- Kamaruzaman NA, Kardia E, Kamaldin N, et al. The rabbit as a model for studying lung disease and stem cell therapy. Biomed Res Int. 2013; 2013: 691830 DOI: 10.1155/2013/691830
- Degryse AL, Lawson WE. Progress toward improving animal models for idiopathic pulmonary fibrosis. Am J Med Sci. 2011; 341(6): 444-449 DOI: 10.1097/MAJ.0b013e31821aa000
- Cargnoni A, Gibelli L, Tosini A, et al. Transplantation of allogeneic and xenogeneic placenta-derived cells reduces bleomycin induced lung fibrosis. Cell Transplant. 2009; 18(4): 405-422 DOI: 10.3727/096368909788809857
- Lee SH, Jang AS, Kim YE, et al. Modulation of cytokine and nitric oxide by mesenchymal stem cell transfer in lung injury/fibrosis. Respir Res. 2010; 11: 16 DOI: 10.1186/1465-9921-11-16
- Lan YW, Choo KB, Chen CM, et al. Hypoxia-preconditioned mesenchymal stem cells attenuate bleomycin-induced pulmonary fibrosis. Stem Cell Res Ther. 2015; 6: 97 DOI: 10.1186/s13287-015-0081-6
- Rojas M, Xu J, Woods CR, et al. Bone marrow-derived mesenchymal stem cells in repair of the injured lung. Am J Respir Cell Mol Biol. 2005; 33(2): 145-152 DOI: 10.1165/rcmb.2004-03300C
- Xu J, Mora A, Shim H, et al. Role of the SDF-1/CXCR4 axis in the pathogenesis of lung injury and fibrosis. Am J Respir Cell Mol Biol. 2007; 37(3): 291-299 DOI: 10.1165/rcmb.2006-01870C
- Ortiz LA, Dutreil M, Fattman C, et al. Interleukin 1 receptor antagonist mediates the antiinflammatory and antifibrotic effect of mesenchymal stem cells during lung injury. Proc Natl Acad Sci U S A. 2007; 104(26): 11002-11007 DOI: 10.1073/pnas.0704421104
- Cargnoni A, Piccinelli EC, Ressel L. Conditioned medium from amniotic membrane-derived cells prevents lung fibrosis and preserves blood gas exchanges in bleomycin-injured mice-specificity of the effects and insights into possible mechanisms. Cytotherapy. 2014; 16(1): 17-32 DOI: 10.1016/j.jcyt.2013.07.002
- Rathinasabapathy A, Bruce E, Espejo A, et al. Therapeutic potential of adipose stem cell-derived conditioned medium against pulmonary hypertension and lung fibrosis. Br J Pharmacol. 2016; 173(19): 2859-2879 DOI: 10.1111/bph.13562
- Islam MN, Das SR, Emin MT, et al. Mitochondrial transfer from bone-marrow-derived stromal cells to pulmonary alveoli protects against acute lung injury. Nat Med. 2012; 18(5): 759-765 DOI: 10.1038/nm.2736
- Sinclair KA, Yerkovich ST, Hopkins PM, Chambers DC. Characterization of intercellular communication and mitochondrial donation by mesenchymal stromal cells derived from the human lung. Stem Cell Res Ther. 2016; 7(1): 91 DOI: 10.1186/s13287-016-0354-8
