Свойства экспериментальных образцов вакцины против инфекционного ринита кур

Автор: Фирсова М.С., Потехин А.В., Евграфова В.А., Прунтова О.В., Русалеев В.С., Яшин Р.В.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Ветеринарная микробиология

Статья в выпуске: 2 т.56, 2021 года.

Бесплатный доступ

Инфекционный ринит кур (возбудитель Avibacterium paragallinarum ) встречается во всех странах мира с развитым птицеводством, в том числе в Российской Федерации, и наносит серьезный экономический ущерб. Основным звеном в системе мер борьбы с инфекционным ринитом кур служит специфическая профилактика. Вакцинация птиц обеспечивает выработку напряженного иммунитета, обусловленного наличием антигемагглютинирующих антител. В настоящей работе впервые представлены результаты, характеризующие безвредность, антигенные и протективные свойства образцов вакцины, включающей антиген нового отечественного штамма A. paragallinarum № 5111 серогруппы В. Цель работы состояла в оценке безвредности, антигенных и протективных свойств образцов сорбированной и эмульсионной вакцины против инфекционного ринита кур на основе антигена штамма Avibacterium paragallinarum № 5111. Для изготовления экспериментальных образцов вакцины использовали цельноклеточный антиген штамма A. paragallinarum № 5111 (серотип В-1), инактивированный формальдегидом. Концентрация бактерий в объеме прививной дозы (0,5 см3) каждого образца составляла 109 микробных клеток по оптическому стандарту мутности. Образец сорбированной вакцины содержал 3,75 мг гидроокиси алюминия в иммунизирующей дозе. Образец эмульсионной вакцины содержал в составе масляный адъювант Montanide ISA 70 VG («SEPPIC», Франция) в количестве 70 % по массе. Иммунобиологические свойства вакцины оценивали в 2019 году на 125 серонегативных к A. paragallinarum цыплятах ( Gallus gallus L.) кросса Хайсекс коричневый в возрасте 1,5-2,0 мес. Безвредность образцов вакцины определяли при инъекциях цыплятам в 2-кратной дозе (1,0 см3). Каждый образец вводили подкожно в область средней трети шеи и внутримышечно в область груди (по 5 гол. в каждом варианте). Наблюдение за клиническим состоянием птиц и наружный осмотр осуществляли в течении 42 сут. По завершении эксперимента проводили убой птицы и визуальную оценку состояния тканей в месте инъекции на разрезе. Протективные свойства вакцины определяли на 75 цыплятах (три группы по 25 гол. в каждой). Птицу I группы иммунизировали образцом сорбированной вакцины, II группы - эмульсионным образцом, III группу не вакцинированных цыплят использовали в качестве контроля. Образцы вводили подкожно в среднюю треть шеи в дозе 0,5 см3, 2-кратно с интервалом 20 сут. Спустя 15 сут после ревакцинации цыплят заражали 1-суточной бульонной культурой штамма A. paragallinarum № 5111 с концентрацией 5 ед. по оптическому стандарту мутности. В течение 7 сут после заражения наблюдали за клиническим состоянием цыплят. Во время эксперимента и по завершении опыта проводили патологоанатомическое вскрытие с бактериологическим анализом содержимого носовых пазух. Антигенные свойства вакцины и продолжительность иммунитета определяли на 30 птицах (три группы по 10 гол. в каждой). Цыплят I группы иммунизировали сорбированной вакциной, II группы - эмульсионной вакциной, контролем служила III группа не вакцинированных птиц. Антигенную активность образцов оценивали по содержанию гуморальных антител в реакции торможения гемагглютинации. При введении вакцины наблюдали поражения тканей легкой и средней степени тяжести без выраженной воспалительной реакции. В месте подкожного введения образца сорбированной вакцины у отдельных цыплят возникала незначительная отечность и гиперемия подкожной клетчатки, а в месте инъекции эмульсионного образца у всех птиц происходило образование соединительнотканных гранулем с наличием остатков вакцины без некротических поражений и выраженной воспалительной реакции окружающих тканей. При сравнении результатов контрольного заражения птиц, иммунизированных разными образцами вакцины, значимых различий не наблюдали (р > 0,05), однако отмечали существенную разницу между опытными и контрольной группами (р 0,05). Их существенное увеличение наблюдали спустя 15 сут после повторного введения обоих образцов вакцины, а через 60 сут содержание антител достигало максимальных значений. У птиц из I группы средний титр антител составил 7,5±0,8 log2, из II группы - 8,9±0,7 log2 (р > 0,05). Через 240 сут после ревакцинации в I группе наблюдали снижение количества антител до 5,5±0,7 log2, во II группе средний титр составлял 8,7±0,8 log2 (р > 0,05). У птиц контрольной группы в течение всего срока наблюдения специфические антитела к возбудителю инфекционного ринита не выявляли. Таким образом, опытные образцы сорбированной и эмульсионной вакцины против инфекционного ринита были безвредными для птиц при подкожном введении и обладали высокой антигенной и протективной активностью после двукратного применения.

Еще

Инфекционный ринит кур, штамм, avibacterium paragallinarum, антиген, адъювант, образец вакцины

Короткий адрес: https://sciup.org/142229489

IDR: 142229489   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2021.2.315rus

Список литературы Свойства экспериментальных образцов вакцины против инфекционного ринита кур

  • Болезни домашних и сельскохозяйственных птиц /Под ред. Б.У. Кэлнека, Х. Дж.Барнса, Ч.У. Биэрда, Л.Р. Макдугалда, И.М. Сэйфа. М., 2011.
  • Евграфова В.А. Биологические свойства изолятов возбудителя инфекционного ринита кур, выделенных на территории Российской Федерации. Канд. дис. Владимир, 2018.
  • Ali M., Hossain M.S., Akter S., Khan M.A.H.N.A, Hossain M.M. Pathogenesis of infectious coryza in chickens (Gallus gallus) by Avibacterium paragallinarum isolate of Bangladesh. The Agriculturists, 2013, 11(1): 39-46 (doi: 10.3329/agric.v11i1.15240).
  • Conde M.D., Huberman Y.D., Espinoza A.M., Delgado R.I., Terzolo H.R. Vaccination of one-day-old broiler chicks against infectious coryza. Avian Diseases, 2011, 6(1): 119-122 (doi: 10.1637/9655-946311-DIGEST.1).
  • Kumar A., Rawat M., Verma R. Studies on absolute requirement of NAD and reduced oxygen tension for growth of field isolates of Avibacterium paragallinarum of poultry origin. Indian Journal of Poultry Science, 2012, 47(1): 90-92.
  • Tu T., Hsieh M., Tan D., Ou S., Shien J., Yen T., Chang P. Loss of the capsule increases the adherence activity but decreases the virulence of Avibacterium paragallinarum. Avian Diseases, 2015, 59(1): 87-93 (doi: 10.1637/10937-091414-Reg).
  • Deshmukh S., Banga H.S., Sodhi S., Brar R.S. An update on avian infectious coryza: its re-emerging trends on epidemiology, etiologic characterization, diagnostics, therapeutic and prophylactic advancements. Journal of Dairy, Veterinary and Animal Research, 2015, 2(3): 86-92 (doi: 10.15406/jdvar.2015.02.00037).
  • Sun H., Xie S., Li X., Xu F., Li Y., Boucher C.E., Chen X. Selection of Avibacterium paragallinarum Page serovar B strains for an infectious coryza vaccine. Veterinary Immunology and Im-munopathology, 2018, 199: 77-80 (doi: 10.1016/j.vetimm.2018.04.001).
  • Page L.A., Rosenwald A.S., Price F.C. Haemophilus infections in chickens. IV. Results of laboratory and field trials of formalinized bacterins for the prevention of disease caused by Haemophilus gallinarum. Avian Diseases, 1963, 7(3): 239-256.
  • Blackall P.J., Eaves L.E., Rogers D.G., Firth G. An evaluation of inactivated infectious coryza vaccines containing a double-emulsion adjuvant system. Avian Diseases, 1992, 36(3): 632-636 (doi: 10.2307/1591758).
  • Akter S., Saha S., Khan K., Amin M., Haque M. Isolation and identification of Avibacterium paragallinarum from layer chickens in Gazipur, Bangladesh. Microbes and Health, 2014, 3(1): 911 (doi: 10.3329/mh.v3i1.19769).
  • Muhammad T.M., Sreedevi B. Detection of Avibacterium paragallinarum by polymerase chain reaction from outbreaks of Infectious coryza of poultry in Andhra Pradesh. Veterinary World, 2015, 8(1): 103-108 (doi: 10.14202/vetworld.2015.103-108).
  • Charoenvisal N., Chansiripornchai P., Chansiripornchai N. Efficacy of four commercial infectious coryza vaccines on prevention of Avibacterium paragallinarum serovar A, B, and C infection in Thailand. Pakistan Veterinary Journal, 2017, 37(3): 287-292.
  • Chukiatsiri K., Sasipreeyajan J., Neramitmansuk W., Chansiripornchai N. Efficacy of autogenous killed vaccine of Avibacterium paragallinarum. Avian Diseases, 2009, 53(3): 382-386 (doi: 10.1637/8563- 121908-Reg. 1).
  • Wahyuni A.E.T.H., Ramandani D., Prakasita V.C., Widyarini S. Efficacy of tetravalent coryza vaccine against the challenge of Avibacterium paragallinarum serovars A and B isolates from Indonesia in chickens. Veterinary World, 2019 12(7): 972-977 (doi: 10.14202/vetworld.2019.972-977).
  • Исаенко Е.Ю., Бабич Е.М., Елисеева И.В., Ждамарова Л.А., Белозерский В.И., Колпак С.А. Адъюванты в современной вакцинологии. Annals of Mechnikov Institute, 2013, 4: 5-21.
  • Paudel S., Hess M., Hess C. Coinfection of Avibacterium paragallinarum and Gallibacterium anatis in specific-pathogen-free chickens complicates clinical signs of infectious coryza, which can be prevented by vaccination. Avian Diseases, 2017, 61(1): 55-63 (doi: 10.1637/11481-081016-Reg).
  • Gupta R.K. Aluminum compounds as vaccine adjuvants. Advanced Drug Delivery Reviews, 1998, 32(3): 155-172 (doi: 10.1016/S0169-409X(98)00008-8).
  • Бомфорд Р. Адъюванты. В кн.: Биотехнология клеток животных. Т. 2/Под ред. Р.Е. Спи-ера, Дж.Б. Гриффитса; Пер. с англ. В.М. Тарасенко. М., 1989, 264-280.
  • Blackall P.J., Soriano-Vargas E. Infectious coryza and related bacterial infections. In: Disease of Poultry /Swayne D.E. (ed.). John Wiley & Sons, NY, 2013: 859-873 (doi: 10.1002/9781119421481.ch20).
  • Stone H.D. Newcastle disease oil emulsion vaccines prepared with animal, vegetable, and synthetic oils. Avian Diseases, 1997, 41(3): 591-597 (doi: 10.2307/1592149).
  • Soriano V.E., Longinos G.M., Fernández R.P., Velásquez Q.E., Ciprián C.A., Salazar-García F., Blackall P.J. Virulence of the nine serovar reference strains of Haemophilus paragallinarum. Avian Diseases, 2004, 48(4): 886-889 (doi: 10.1637/7188-033104R1).
  • Garçon N., Leroux-Roels G, Cheng W.-F., Vaccine adjuvants. Perspectives in Vaccinology, 2011, 1(1): 89-113 (doi: 10.1016/j.pervac.2011.05.004).
  • Page L.A. Haemophilus infections in chickens. I. Characteristics of 12 Haemophilus isolates recovered from diseased chickens. American Journal of Veterinary Research, 1962, 23: 85-95.
  • Garçon N., Segal L., Tavares F., Van Mechelen M. The safety evaluation of adjuvants during vaccine development: The AS04 experience. Vaccine, 2011, 29(27): 4453-4459 (doi: 10.1016/j.vaccine.2011.04.046).
  • Gong Y., Zhang P., Wang H., Zhu W., Sun H., He Y., Shao Q., Blackall P.J. Safety and efficacy studies on trivalent inactivated vaccines against infectious coryza. Veterinary Immunology and Im-munopathology, 2014, 158(1-2): 3-7 (doi: 10.1016/j.vetimm.2013.01.015).
  • Byarugaba D.K., Minga U.M., Gwakisa P.S., Katunguka-Rwakishya E., Bisgaard М., Olsen J.E. Virulence characterization of Avibacterium paragallinarum isolates from Uganda. Avian Pathology, 2007, 36(1): 35-42 (doi: 10.1080/03079450601102947).
Еще
Статья научная