Валидация тест-системы для серодиагностики африканской чумы свиней методом иммуноблоттинга

Автор: Дубровская О.А., Середа А.Д., Казакова А.С., Иматдинов А.Р., Стрижакова О.М., Васильев А.П., Ногина И.В., Власов М.Е., Балышев В.М., Колбасов Д.В.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Вирусология

Статья в выпуске: 2 т.53, 2018 года.

Бесплатный доступ

Вследствие отсутствия вакцины в борьбе с африканской чумой свиней (АЧС, возбудитель - вирус африканской чумы свиней, African swine fever virus, ASFV, семейство Asfarviridae, род Asfivirus ) полагаются на быструю и раннюю диагностику и осуществление жестких ветеринарно-санитарных мероприятий. В восточноевропейских странах, где в настоящее время эта болезнь распространилась, как правило, выделяют высоковирулентные изоляты (J.M. Sanchez-Vizcaino с соавт., 2013). В лабораторной диагностике преимущественно используют полимеразную цепную реакцию (ПЦР) и метод прямой иммунофлуоресценции. Однако с 2012 года у некоторых изолятов ASFV стали отмечать изменения биологических и генетических свойств. Поэтому доминирующими в лабораторной диагностике, как это было в период эпизоотии АЧС в 1960-1990-х годов на Пиренейском полуострове, могут стать серологические методы. Ранее мы сообщали о разработке тест-системы для серодиагностики болезни методом иммуноблоттинга (Rec p30-IB) на основе рекомбинантного структурного белка р30 ASFV. В этой работе представлены результаты ее валидации. Диагностическая чувствительность Rec p30-IB составила 99,3 %, специфичность - 100 %. Антитела к р30 обнаруживали в сыворотке крови и органах домашних свиней и диких кабанов независимо от сероиммунотиповой принадлежности и вирулентности штамма ASFV. В пробах сывороток крови домашних свиней, зараженных гетерологичными вирусами, ложноположительных результатов не регистрировали. В сыворотке крови домашних свиней, выживших после внутримышечного введения аттенуированных штаммов ASFV ЛК-111, КК-262/С, МК-200, ФК-135, PSA-1-NH, СКА 2015 ВНИИВВиМ (103-104 ГАЕ50/ЦПД50), антитела к р30 выявляли на 7-10-е сут. В органах домашних свиней, павших от АЧС через 5-10 сут после внутримышечного заражения высоковирулентными штаммами Лиссабон-57, Мозамбик-78, Ставрополь 01/08 (103 ГАЕ50), антитела к р30 выявили у 30 % особей. Результаты валидации свидетельствуют, что предложенную тест-систему для серодиагностики африканской чумы свиней методом иммуноблоттинга можно использовать в лабораторной практике и при мониторинге образцов крови и органов домашних свиней и диких кабанов при АЧС.

Еще

Африканская чума свиней, рекомбинантный белок p30 asfv, серодиагностика, иммуноблоттинг, валидация

Короткий адрес: https://sciup.org/142214143

IDR: 142214143   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2018.2.430rus

Список литературы Валидация тест-системы для серодиагностики африканской чумы свиней методом иммуноблоттинга

  • Dixon L.K., Costa J.V., Escribano J.M., Rock D.L., Vinuela E., Wilkinson P.J. Family Asfarviridae/M.H.V.V. Regenmortel (ed.). London Academic Press, 2000: 159-165.
  • Середа А.Д., Балышев В.М. Антигенное разнообразие вируса африканской чумы свиней. Вопросы вирусологии, 2011, 4: 38-42.
  • Malogolovkin A., Burmakina G., Titov I., Sereda A., Gogin A., Baryshnikova E., Kolbasov D. Comparative analysis of African swine fever virus genotypes and serogroups. Emerg. Infect. Dis., 2015, 21(2): 312-315 ( ) DOI: 10.3201/eid2102.140649
  • Gogin A., Gerasimov V., Malogolovkin A., Kolbasov D. African swine fever in the North Caucasus region and the Russian Federation in years 2007-2012. Virus Res., 2013, 173: 198-203 ( ) DOI: 10.1016/j.virusres.2012.12.007
  • Abrahantes J.C., Gogin A., Richardson J., Gervelmeyer A. Epidemiological analyses on African swine fever in the Baltic countries and Poland. EFSA Journal, 2017, 15(3): 4732 ( ) DOI: 10.2903/j.efsa.2017.4732
  • Sanchez-Vizcaino J.M., Mur L., Martinez-Lopez B. African swine fever (ASF): five years around Еurope. Vet. Microbiol., 2013, 165: 45-50 ( ) DOI: 10.1016/j.vetmic.2012.11.030
  • Gallardo C., Fernández-Pinero J., Pelayo V., Gazaev I., Markowska-Daniel I., Pridotkas G., Nieto R, Fernández-Pacheco P., Bokhan S., Nevolko O., Drozhzhe Z., Pérez C., Soler A., Kolvasov D., Arias M. Genetic variation among African swine fever genotype II viruses, Eastern and Central Europe. Emerg. Infect. Dis., 2014, 20(9): 1544-1547 ( ) DOI: 10.3209/eid2009.140554
  • Vlasova N.N., Varentsova A.A., Shevchenko I.V., Zhukov I.Yu., Remyga S.G., Gavrilova V.L., Puzankova O.S., Shevtsov A.A, Zinyakova N.G., Gruzdev K.N. Comparative analysis of clinical and biological characteristics of African swine fever virus isolates from 2013 year Russian Federation. British Microbiology Research Journal, 2015, 5(3): 203-215 ( ) DOI: 10.9734/BMRJ/2015/12941
  • Goller K.V., Malogolovkin A.S., Katorkin S., Kolbasov D., Titov I., Hoper D., Beer M., Keil G.M., Portugal R., Blome S. Tandem repeat insertion in African swine fever virus. Russia, 2012. Emerg. Infect. Dis., 2015, 21(4): 731-732 ( ) DOI: 10.3201/eid2104.141792
  • Frączyk M., Woźniakowski G., Kowalczyk A., Bocian Ł., Kozak E., Niemczuk K., Pejsak Z. Evolution of African swine fever virus genes related to evasion of host immune response. Vet. Microbiol., 2016, 25(193): 133-44 ( ) DOI: 10.1016/j.vetmic.2016.08.018
  • Reis A.L., Parkhouse R.M.E., Penedos A.R., Martins C., Leitão A. Systematic analysis of longitudinal serological responses of pigs infected experimentally with African swine fever virus. J. Gen. Virol., 2007, 88(9): 2426-2434 ( ) DOI: 10.1099/vir.0.82857-0
  • Arias M., Escribano J.M., Sánchez-Vizcaíno J.M. Persistence of African swine fever antibody reactivity on ELISA and immunoblotting assays. Vet. Rec., 1993, 133(8): 189-190.
  • Pastor M.J., Laviada M.D., Sanchez-Vizcaino J.M., Escribano J.M. Detection of African swine fever virus antibodies by immunoblotting assay. Can. J. Vet. Res., 1989, 53(1): 105-107.
  • World Organization for Animal Health (OIE), 2012. African swine fever. Chapter 2.8.1. In: Ma-nual of diagnostic tests and vaccines for terrestrial animals (mammals, birds and bees). Режим доступа: http://www.oie.int/fileadmin/Home/eng/Health_standards/tahm/2.08.01_ASF.pdf. Без даты.
  • Escribano J.M., Pastor M.J., Sánchez-Vizcaino J.M. Antibodies to bovine serum albumin in swine sera: implications for false-positive reactions in the serodiagnosis of African swine fever. Am. J. Vet. Res., 1989, 50: 1118-1122.
  • Alcaraz C., Rodriguez F., Oviedo J.M., Eiras A., De Diego M., Alonso C., Escribano J.M. Highly specific confirmatory western blot test of African swine fever virus antibody detection using the recombinant virus protein p54. J. Virol. Methods, 1995, 52(1-2): 111-119 ( ) DOI: 10.1016/0166-0934(94)00150-F
  • Kollnberger S.D., Gutierrez-Castaneda B., Foster-Cuevas M., Corteyn A., Parkhouse R.M. Identification of the principal serological immunodeterminants of African swine fever virus by screening a virus cDNA library with antibody. J. Gen. Virol., 2002, 83(6): 1331-1342 ( ) DOI: 10.1099/0022-1317-83-6-1331
  • Gallardo C., Reis A.L., Kalema-Zikusoka G., Malta J., Soler A., Blanco E., Parkhouse R.M., Leitão A. Recombinant antigen targets for serodiagnosis of African swine fever. Clin. Vaccine Immunol., 2009, 16(7): 1012-1020 ( ) DOI: 10.1128/CVI.00408-08
  • Gallardo C., Dufton M.M., Macharia J.M., Arias M., Taracha E.A., Soler A., Okoth E., Martin E., Kasiti J., Bishop R.P. Enhanced discrimination of African swine fever virus isolates through nucleotide sequencing of the p54, p72, and pB602L (CVR) genes. Virus Genes, 2009, 38: 85-95 ( ) DOI: 10.1007/s11262-008-0293-2
  • Oviedo J.M., Rodríguez F., Gómez-Puertas P., Brun A., Gómez N., Alonso C., Escribano J.M. High level expression of the major antigenic African swine fever virus proteins p54 and p30 in baculovirus and their potential use as diagnostic reagents. J. Virol. Methods, 1997, 64(1): 27-35 ( ) DOI: 10.1016/S0166-0934(96)02140-4
  • Pérez-Filgueira D.M., González-Camacho F., Gallardo C., Resino-Talaván P., Blanco E., Gómez-Casado E., Alonso C., Escribano J.M. Optimization and validation of recombinant serological tests for African swine fever diagnosis based on detection of the p30 protein produced in Trichoplusia ni larvae. J. Clin. Microbiol., 2006, 44 (9): 3114-3121 ( ) DOI: 10.1128/JCM.00406-06
  • Kazakova A.S., Imatdinov I.R., Dubrovskaya O.A., Imatdinov A. R., Sidlik M.V., Balyshev V.M., Krasochko P.A., Sereda A.D. Recombinant protein p30 for serological diagnosis of African swine fever by immunoblotting assay. Transbound. Emerg. Dis., 2017, 64: 1479-1492 ( ) DOI: 10.1111/tbed.12539
  • Sereda A.D., Dubrovskaya O.A., Imatdinov A.R., Strizhakova O.M., Vasil’ev A.P., Sindryako-va I.P., Lunitsin A.V. Laboratory diagnostics of chronic and asymptomatic forms of African swine fever. Agricultural Biology, 2016, 51(4): 459-466 ( ) DOI: 10.15389/agrobiology.2016.4.459eng
  • Прудникова Е.Ю. Адаптация вируса африканской чумы свиней, выделенного на территории Российской Федерации, к перевиваемым культурам клеток и изучение его биологических свойств. Канд. дис. Покров, 2013. Режим доступа: http://search.rsl.ru/ru/record/01005543218. Без даты.
  • Балышев В.М., Калантаенко Ю.Ф., Болгова М.В., Прудникова Е.Ю. Сероиммуноло-гическая принадлежность вируса африканской чумы свиней, выделенного в Российской Федерации. Доклады РАСХН, 2011, 5: 52-53.
  • Стрижакова О.М., Лыска В.М., Малоголовкин А.С., Новикова М.Б., Сидлик М.В., Ногина И.В., Шкаев А.Э., Балашова Е.А., Куриннов В.В., Васильев А.П. Валидация ИФА-набора для обнаружения антител к вирусу африканской чумы свиней в крови и селезенке домашних свиней и диких кабанов. Сельскохозяйственная биология, 2016, 51(6): 845-852 ( ) DOI: 10.15389/agrobiology.2016.6.845rus
  • Cubillos C., Gómez-Sebastian S., Moreno N., Nuñez M.C., Mulumba-Mfumu L.K., Quembode C.J., Heath L., Etter E.M.C., Jori F., Escribano J.M., Blanco E. African swine fever virus serodiagnosis: a general review with a focus on the analyses of African serum samples. Virus Res., 2013, 173: 159-167 ( ) DOI: 10.1016/j.virusres.2012.10.021
Еще
Статья научная