Видовой состав и этиологическая структура возбудителей инфекционных болезней кур в условиях промышленного птицеводства

Птицеводство является одной из наиболее рентабельных и высокопродуктивных отраслей сельского хозяйства. Однако, несмотря на достигнутые показатели, в промышленном птицеводстве остается много нерешенных проблем [3,4].

Особенность российского птицеводства заключается в чрезвычайно высокой концентрации поголовья на ограниченных площадях, что приводит к повышенной обсемененности производственных помещений микроорганизмами, что многократно увеличивает опасность условнопатогенной микрофлоры, способствует формированию полиэтиологических заболеваний, при которых меняется возрастная восприимчивость птицы, клиническое и патоморфологическое проявление известных болезней [2].

Решающая роль в системе противоэпизоотических мероприятий отводится диагностике инфекционных болезней животных, в том числе лабораторной. Из многочисленных методов лабораторной диагностики важное значение имеет бактериологический, основанный на индикации возбудителей из проб патологического материала и объектов внешней среды. Как правило, по результатам бактериологического исследования ставится первичный диагноз, на основе которого разрабатываются планы противоэпизоотических мероприятий [1].

Цель исследований. Изучить видовой состав и этиологическую структуру возбудителей инфекционных болезней, выделяемых из патологического материала кур, в условиях промышленного птицеводства Омска и Омской области.

Материалы и методы. Для определения видового состава возбудителей инфекционных болезней птиц, зарегистрированных в птицеводческих хозяйствах Омской области, были использованы данные отчетов БУ ОО «Омская областная ветеринарная лаборатория» за 20082012 гг., а также результаты собственных исследований.

На территории Омской области функционирует 9 птицеводческих хозяйств, как мясного, так и яичного направления, с общим поголовьем более 7 млн. птиц.

Бактериологические исследования проводили согласно нормативнотехнической документации по лабораторной диагностике бактериальных инфекций птиц.

Материалом для бактериологических исследований служили трупы кур, отходы инкубации, а также пробы комбикорма и смывы с производственного оборудования.

У цыплят до 10-сут возраста ярко выраженных клинических признаков болезни не наблюдали. У птицы старше отмечали отставание в росте, снижение аппетита, истощенность, взъерошенность, угнетение, загрязнение области клоаки фекалиями.

При вскрытии павших цыплят-бройлеров регистрировали истощенность, обезвоженность, гиперемию слизистых оболочек кишечника, увеличение селезенки (55%), энтерит, перитонит (40%) с большим количеством жидкости, соломенного цвета. На поверхности печени, сердца и легких большое количество фибринозных отложений (66%).

В каждом хозяйстве, с учетом эпизоотической обстановки, строго соблюдается схема вакцинопрофилактики, согласно которой птицу вакцинируют против следующих заболеваний: инфекционной бурсальной болезни, болезни Марека, инфекционного бронхита кур, болезни Ньюкасла, инфекционного ларинготрахеита, синдрома снижения яйценоскости - 76, микоплазмоза и сальмонеллеза.

Серологическую типизацию выделенных культур E.coli и Sal. enteritidis проводили с помощью О- и Н- агглютинирующих диагностических сальмонеллёзных сывороток и поли- и моновалентных О-колисывороток (Курск, «БИОК»).

Вирулентные свойства выделенных культур определяли, используя белых мышей, массой 14-16г, методом внутрибрюшинного заражения взвесью агаровых культур в дозе 0,5 мл 1х109 м.к. на физиологическом растворе. Чувствительность выделенных культур сальмонелл и кишечной палочки к антибиотикам определяли диско-диффузионным методом, согласно инструкции по применению дисков для определения чувствительности к антибиотикам (МЗ СССР 08.07.1986).

Результаты исследований и выводы. По результатам бактериологических исследований биоматериала, полученного с крупных птицеводческих хозяйств Омской области в период с 2008 по 2012 гг., выделено 14 видов микроорганизмов.

Установлено, что у птиц в инфекционном процессе в большинстве случаев участвуют три серогруппы возбудителей колибактериоза, два сероварианта стафилококков, стрептококков и протея, один клостридий, пастерелл, сальмонелл, а также микоплазма и синегнойная палочка. Всего за пять лет исследовано 21545 проб биоматериала, из них изолировано 3640 культур микроорганизмов. От общего числа исследованного материала 13% составляли пробы из патологического материала; 33,6% -отходы инкубации; 34,2% - смывы с производственного оборудования и 19,2% - пробы корма.

При исследовании смывов с производственного оборудования (n=7360) и комбикорма (n=4140) показатели КМАФАнМ (ОМЧ) и БГКП не превышали нормативные показатели в 95% случаев. От общего количества исследованных комбикормов в 0,5% проб были выделены культуры Salmonella enteritidis, а в 3,4% - Escherichia coli (I-02, I-078), в смывах с производственного оборудования культуры Salmonella enteritidis составили 0,5% и Escherichia coli (I-02, I-078) – 0,8%.

При бактериологическом исследовании проб патологического материала выделено 3640 культур микроорганизмов, а именно 1580 от трупов птиц и 2060 из отходов инкубации. Все культуры микроорганизмов по частоте выделения распределились следующим образом: Escherichia coli – 35,1% (I-078 – 18,3%; I-02 – 16,5%; I-0116 – 0,3%), Mycoplasma sp. – 20,7%, Staphylococcus aureus – 19,2%, Proteus vulgaris – 7,4%, Staphylococcus gallinarum – 7,2%, Salmonella enteritidis – 5,2%, Pseudomonas aeroginosa - 2,3%, Streptococcus pneumoniae – 1,8%, Proteus mirabillis – 0,8%, Clostridium perfringens – 0,1%, Pasteurella multocida – 0,1% и Streptococcus septicus – 0,1%.

В результате проведенных исследований были выделены следующие ассоциации микроорганизмов, а именно: Escherichia coli + Mycoplasma sp. (21%); Escherichia coli + Staphylococcus gallinarum (3,6%); Escherichia coli + Salmonella enteritidis (3,3%); Staphylococcus aureus + Staphylococcus gallinarum (3%); Escherichia coli + Staphylococcus aureus (2,5%); Escherichia coli + Proteus vulgaris + Pseudomonas aeroginosa (1,9%); Staphylococcus aureus + Streptococcus pneumoniae (1,4%).

Рисунок1. Видовой состав бактерий, выделенных из патологического материала трупов птиц и отходов инкубации, % (n=3640)

20,7    19,2

7,4     7,2

5,2

Видовой состав бактерий, выделенных из

При изучении устойчивости, выделенных культур микроорганизмов установлено, что большинство антибиотиков, применяемых на птицефабриках, не обладают необходимой антибактериальной активностью по отношению к данным культурам микроорганизмов.

Наибольшее количество патогенных культур микроорганизмов из проб патологического материала были выделены зимой (38%), а наименьшее количество в осенний период (13%). Так, в 2010 году от общего числа выделенных культур на зимний период пришлось 56%, а в 2011 – 55%.

На территории птицеводческих хозяйств Омской области наибольший прессинг на организм птиц оказывают Escherichia coli в ассоциации с Mycoplasma sp. (21%) и Staphylococcus aureus (19,2%). За исследуемый период отмечается тенденция роста выделения микроорганизмов из трупов кур. Так, в 2009 году было выделено 230 изолятов микроорганизмов, что на 28% больше, чем в 2008 (n=165). В 2010 году (n=320) данный показатель вырос на 48%, в 2011 (n=420) увеличился до 61%, а в 2012 (n=445) достиг своего пика - 63%, в сравнении с 2008 годом, что свидетельствует о повышении устойчивости микроорганизмов к антибиотикам, используемым на птицефабрике (коридокс, коноэкс корифлокс и энроксил).

Таким образом, содержание большого количества птицы на малых площадях создает условия для накопления во внешней среде микроорганизмов, приводит к их многократным пассажам, в результате чего в хозяйствах появляются заболевания, вызываемые группами условно-патогенных бактерий.

ЛИТЕРАТУРА: 1. Васина Н.И. Нозологических профиль и структура возбудителей инфекционных болезней и животных и птиц на территории Омской области / Н.И. Васина, Ю.И. Смолянинов // Материалы II Сибирского ветеринарного конгресса «Актуальные проблемы ветеринарной медицины». – 2010. – С. 308-309. 2. Птицеводство России. История. Основные направления. Перспективы развития / М.Г. Петраш, И.И. Кочиш, И.А Егоров и др. – М.: КолосС, 2004. – 297 с. 3. Тухфатова Р.Ф., Бессарабова Е.В. Гематологические показатели кур при использовании препарата на основе серебра // Птица и птицепродукты, 2013. №1. – С. 39-40. 4. Черных М.Н., Федотов С.В., Неспецифическая профилактика ассоциированных инфекций. – Птицеводство. – 2008. -№11. – С. 23-24.

ВИДОВОЙ СОСТАВ И ЭТИОЛОГИЧЕСКАЯ СТРУКТУРА ВОЗБУДИТЕЛЕЙ ИНФЕКЦИОННЫХ БОЛЕЗНЕЙ КУР В УСЛОВИЯХ ПРОМЫШЛЕННОГО ПТИЦЕВОДСТВА

Плешакова В.И., Балашов В.В., Степанов Д.Н.

Резюме

В статье приведены данные о видовом составе возбудителей, выделяемых из патологического материала кур в условиях промышленного птицеводства Омской области.

SPECIES COMPOSITION AND ETIOLOGICAL STRUCTURE OF CAUSATIVE AGENTS OF HENS` INFECTIOUS DISEASESIN THE CONDITIONS OF COMMERCIAL POULTRY BREEDING

Pleshakova V.I., balashov V.V., Stepanov D.N.