Влияние химических фунгицидов на содержание почвенных микромицетов в агроценозе рапса ярового в центральной зоне Краснодарского края

Влияние химических фунгицидов на содержание почвенных микромицетов в агроценозе рапса ярового в центральной зоне Краснодарского края

Автор: Сердюк О.А.

Журнал: Масличные культуры. Научно-технический бюллетень Всероссийского научно-исследовательского института масличных культур @vniimk

Рубрика: Агрохимия, агропочвоведение, защита и карантин растений

Статья в выпуске: 2 (198), 2024 года.

Бесплатный доступ

Многие сельскохозяйственные культуры страдают от поражения различными почвенными грибами. Инфекционные болезни растений, вызываемые ими, могут представлять серьезную угрозу для урожайности культур, нанося значительный ущерб аграрной экономике во всем мире. На сегодняшний день химический метод защиты посевов масличных культур семейства Капустные наиболее распространен. Важным приемом этого метода является предпосевное протравливание семян, способствующее снижению уровня внешней и внутренней инфекции. Помимо эффективности против болезней, фунгициды должны быть экологически безопасными. В настоящее время нет однозначного мнения по вопросу влияния химических фунгицидов на почвенную микофлору. Целью исследований являлось изучение влияния некоторых протравителей семян на содержание грибов-супрессоров рода Trichoderma Pers. и патогенных грибов рода Fusarium Link. в почве агроценоза рапса ярового. Исследования проводили в 2020-2022 гг. в ФГБНУ ФНЦ ВНИИМК. Перед посевом семена рапса ярового обрабатывали протравителями с действующими веществами (д. в.): тирам, ВСК (400 г/л) (эталон); карбоксин + тирам, ВСК (200 + 200 г/л); имазалил + тебуконазол, МЭ (100 + 60 г/л) и флудиоксонил, КС (25 г/л). Отборы проб почвы проводили перед посевом обработанных протравителями семян рапса и в фазах 2-4 настоящих листа и желтого стручка культуры. Изучали слой почвы в глубину от 0 до 10 см, т. к. в нем находится наибольшее количество боковых корней этой культуры. К моменту созревания рапса количество грибов-супрессоров в вариантах с применением препаратов было на уровне с контролем, увеличившись на 1,8-2,4 × 103 КОЕ/г и достигало 7,3-8,0 × 103 КОЕ/г с максимумом в варианте с препаратом с д. в. флудиоксонил (25 г/л). Содержание патогенных микромицетов Fusarium spp. к моменту созревания рапса в вариантах с применением препаратов было ниже контроля (семена без обработки) в 1,7-2,0 раза.

Еще

Почвенные микромицеты, агроценоз, рапс, протравитель семян, фунгицид

Короткий адрес: https://sciup.org/142241306

IDR: 142241306   |   DOI: 10.25230/2412-608X-2024-2-198-100-107

Список литературы Влияние химических фунгицидов на содержание почвенных микромицетов в агроценозе рапса ярового в центральной зоне Краснодарского края

  • Chakraborty P., Krishnani K.K. Emerging bioanalytical sensors for rapid and close-to-real-time detection of priority abiot-ic and biotic stressors in aquaculture and culture-based fisheries: [Электронный ресурс] // Science of The Total Environment. – 2022. – V. 838. – 156128. – Режим доступа: https://doi.org/10.1016/j.scitotenv. 2022.156128 (дата обращения: 15.01.2024).
  • Мишустин Е.Н., Емцев В.Т. Микробиология. 3-е изд., перераб. и доп. – М.: Агропромиздат, 1987. – 368 с.
  • Berg B., McClaugherty C. Plant Litter. Decomposition, Humus Formation, Carbon Sequestration. – Springer Berlin, Heidelberg, 2014. – 315 р.
  • Lisuma J.B., Mbega E.R., Ndakidemi P.A. Dynamics of nicotine across the soil–tobacco plant interface is dependent on agro-ecology, nitrogen source, and rooting depth: [Электронный ресурс] // Rhizosphere. – 2019. – V. 12. – 100175. – Режим доступа: https://doi.org/10.1016/j.rhisph.2019.100175 (дата обращения: 15.01.2024).
  • Назаров П.А., Балеев Д.Н., Иванова М.И., Соколова Л.М. [и др.]. Инфекционные болезни растений: этиология, совре-менное состояние, проблемы и перспективы защиты растений // Acta Naturae (русскоязычная версия). – 2020. – Т. 12. – № 3 (46). – С. 46–59.
  • Пивень В.Т., Сердюк О.А. Снижение вредоносности болезней озимого рапса // Масличные культуры. Науч.-тех. бюл. ВНИИМК. – 2010. – Вып. 2 (144–145). – С. 97–98.
  • Сердюк О.А., Шипиевская Е.Ю., Трубина В.С. Поражение горчицы белой болезнями в условиях центральной зоны Краснодарского края // Международная науч.-практ. конф. «Научное обеспечение производства риса и овощебахчевых культур в современных условиях». Краснодар, 09 сентября 2016 г. – Краснодар, 2016. – С. 184–188.
  • Egging V., Nguyen J., Kurouski D. De-tection and identification of fungal infections in intact wheat and sorghum grain using a hand-held Raman spectrometer: [Электрон-ный ресурс] // Analytical Chemistry. – 2018. – V. 90. – Р. 8616–8621. – Режим до-ступа: https://doi.org/10.1021/acs.anal-chem.8b01863 (дата обращения: 15.01.2024).
  • Escamilla D., Rosso M.L., Zhang B. Identification of fungi associated with soy-beans and effective seed disinfection treat-ments // Food Science & Nutrition. – 2019. – V. 7. – I. 10. – P. 3194–3205.
  • Hu X., Roberts D.P., Xie L., Qin L. [et al.]. Seed treatment containing Bacillus subtilis BY-2 in combination with other Ba-cillus isolates for control of Sclerotinia scle-rotiorum on oilseed rape // Biol. Control. – 2019. – V. 133. – P. 50–57.
  • Gupta S., Didwania N., Singh D. Bio-logical control of mustard blight caused by Alternaria brassicae using plant growth promoting bacteria: [Электронный ресурс] // Current Plant Biology. – 2020. – V. 23. – 100166. – Режим доступа: https://doi.org/10.1016/j.cpb.2020.100166 (дата обращения: 15.01.2024).
  • Пивень В.Т., Коновалов Н.Г., Сердюк О.А. Влияние обеззараживания семян горчицы сарептской фунгицидами на их посевные качества // Научно-технический бюллетень ВНИИМК. – 2004. – Вып. 2 (131). – С. 83–84.
  • Сердюк О.А., Горлова Л.А. Влияние предпосевной обработки семян рапса ярового фунгицидами на их посевные качества и биометрические параметры проростков // Агрофорум. – 2019. – № 6. – С. 38–40.
  • Государственный каталог пестици-дов и агрохимикатов, разрешенных к применению на территории Российской Федерации. – М., 2023. – Часть I. Пестициды. – С. 65–894.
  • Здрожевская С.Д. Перспективные фунгициды на основе тритиконазола // Фитосанитарное оздоровление систем: материалы Второго Всероссийского съезда по защите растений. – СПб., 2005. – Т. ΙΙ. – С. 285–286.
  • Prudnikova S.V., Menzianova N.G., Pyatina S.A., Streltsova N.V. Fungicidal ac-tivity of slow-release formulations of tebu-conazole and epoxiconazole to control root rot pathogens of cereal crops: [Электрон-ный ресурс] // Physiological and Molecular Plant Pathology. – 2023. – V. 128. – 102166. – Режим доступа: https://doi.org/ 10.1016/j.pmpp.2023.102166 (дата обра-щения: 15.01.2024).
  • Кандыбин Н.В., Смирнов О.В. Мик-робиологизация – альтернатива химизации при получении экологически безопасной продукции растениеводства: региональные рекомендации. – М., 1995. – Вып. 1. – 72 с.
  • Новожилов К.В., Семенова Н.Н., Петрова Т.М. Моделирование поведения пестицидов в окружающей среде // Защита и карантин растений. – 1999. – № 12. – С. 8–13.
  • Ижевский С.С. Негативные последствия применения пестицидов // Защита и карантин растений. – 2006. – № 5. – С. 16–19.
  • Xiao Z., Hou K., Zhou T., Zhang J. [et al.] Effects of the fungicide trifloxystrobin on the structure and function of soil bacterial community: [Электронный ресурс] // Envi-ronmental Toxicology and Pharmacology. – 2023. – V. 99. – 104104. – Режим доступа:
  • https://doi.org/10.1016/j.etap.2023.104104 (дата обращения: 15.01.2024).
  • Verdenelli R.A., Dominchin M.F., Barbero F.M., Pérez-Brandán C. [et al.]. Effect of two broad-spectrum fungicides on the microbial communities of a soil subject-ed to different degrees of water erosion: [Электронный ресурс] // Applied Soil Ecology. – 2023. – V. 190. – 104984. – Ре-жим доступа: https://doi.org/10.1016/j. ap-soil.2023.104984 (дата обращения: 15.01.2024).
  • Karlsson I., Friberg H., Steinberg C., Persson P. Fungicide effects on fungal community composition in the wheat phyllo-sphere: [Электронный ресурс] // PLoS One. – 2014. – Режим доступа: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0111786 (дата обращения: 15.01.2024).
  • Esmaeili T.A., Hamel C., Gan Y. Py-rosequencing reveals the impact of foliar fungicide application to chickpea on root fungal communities of durum wheat in sub-sequent year // Fungal Ecology. – 2015. – V. 15. – P. 73–81.
  • Иванцова Е.А. Влияние пестицидов на микрофлору почвы и полезную биоту // Вестн. Волгогр. гос. ун-та. – 2013. – Сер. 11. Естеств. науки. – № 1 (5). – С. 35–40.
  • Методические указания по протравливанию семян сельскохозяйственных культур. – М.: Колос, 1988. – 48 с.
  • Литвинов М.А. Методы выделения микроскопических грибов из почвы. Определитель микроскопических почвенных грибов. – Л.: Изд-во «Наука», 1967. – 311 с.
  • Методы микробиологического контроля почвы. Методические рекомендации / ФНЦ им. Ф.Ф. Эрисмана, Федеральный центр госсанэпиднадзора Минздрава России, Центр ГСЭН в Краснодарском крае. – 2004. – 12 с.
  • Билай В.И. Фузарии. – Киев: «Нау-кова думка», 1977. – 339 с.
Еще
Статья научная
QR-код для установки приложения SciUp Наведите камеру и скачайте бесплатное приложение SciUp