Влияние индивидуального и группового содержания мышей на уровень радиорезистентности

Автор: Дорожкина О.В., Булынина Т.М., Иванов А.А.

Журнал: Саратовский научно-медицинский журнал @ssmj

Рубрика: Радиационная медицина

Статья в выпуске: 4 т.11, 2015 года.

Бесплатный доступ

Цель: изучение влияния индивидуального и группового содержания мышей на радиорезистентность. Материал и методы. Исследовано влияние группового и индивидуального содержания аутбредных мышей-самцов ICR (CD-1) и инбредных C57BI6 на показатели системы крови и иммунитета до и после протонного облучения. Результаты. Групповое содержание интактных животных привело к снижению числа кариоцитов в костном мозге и массы тимуса. Облучение мышей протонами с энергией 171 МэВ в дозе 1 Гр вызывает статистически значимое большее снижение клеток костного мозга при групповом содержании по сравнению с индивидуальным. При индивидуальном содержании облученных животных отмечена тенденция к большей сохранности числа лейкоцитов в периферической крови и более высокой пролиферативной активности клеток костного мозга, а также к снижению уровня аберрантных митозов по сравнению с групповым содержанием. В восстановительном периоде лучевой болезни при групповом содержании мышей восстановительные процессы проходят с большей скоростью. Выводы. Групповое содержание мышей-самцов вызывает повышенную чувствительность системы крови и иммунитета к действию радиации и ускоряет процессы пострадиационного восстановления.

Еще

Аберрантные митозы, групповое и индивидуальное содержание, кариоциты костного мозга, митотический индекс, мыши, протонное облучение, селезенка, тимус

Короткий адрес: https://sciup.org/14918215

IDR: 14918215

Текст научной статьи Влияние индивидуального и группового содержания мышей на уровень радиорезистентности

1Введение. Трудами патофизиологической научной школы академика П. Д. Горизонтова [1] доказано, что ионизирующее излучение является мощным стрессором для организма млекопитающих. В этой связи взаимодействие различных стрессорных воздействий с радиационным стрессом представляет значительный интерес, поскольку облучение человека в аварийных и особых ситуациях сопровождается физическим и эмоциональным напряжением.

Имеются предположения о том, что важным фактором, влияющим на радиорезистентность, является стрессорное воздействие. За последние годы опубликованы данные, свидетельствующие о том, что как острый, так и хронический стресс индуцируют хромосомные аберрации и модифицируют чувствительность генома к мутагенам различной природы, в том числе и к ионизирующему излучению [2]. В работе [3] было показано, что длительный иммоби-лизационный стресс приводит к увеличению спонтанного уровня частоты хромосомных аберраций в ядросодержащих клетках костного мозга мышей линии BALB/C , а острое гамма-облучение характеризовалось ингибирующим действием на развитие адаптационных и компенсаторных возможностей кроветворной системы.

Известно, что стресс-факторы активизируют ги-поталамо-гипофиз-надпочечниковую систему и вызывают различные изменения в органах- и клетках-мишенях для гормонов и других медиаторов стресса. К одной из таких мишеней относится иммунная система и центральная иммунокомпетентная клетка — лимфоцит [4, 5]. При этом наблюдаются активация апоптоза и повышение частоты нарушений генетического аппарата [6–8]. При психоэмоциональном стрессе (длительной изоляции) происходит статистически значимое увеличение частоты ацентриков и аберраций хроматидного типа в лимфоцитах крови испытателей [9].

Особый интерес представляет взаимодействие эмоционального и радиационного стресса. В то же время достаточно сложно моделировать эмоциональный хронический стресс на экспериментальных животных. Одним из способов моделирования эмоционального стресса у самцов может быть их групповое содержание [10]: поскольку доминирующий самец оказывает стрессорное влияние на других животных, групповое содержание животных может вызвать снижение уровня тревоги при хроническом стрессе [11].

В доступной литературе мы не встретили данных о влиянии такого стресс-фактора, как групповое содержание на цитогенетический аппарат клетки и уровень радиорезистентности.

Цель : изучение влияния индивидуального и группового содержания мышей на радиорезистентность.

Материал и методы. Исследования осуществлялись на аутбредных мышах ICR (CD-1) — SPF категории, а также инбредных C57Bl6 самцах в возрасте 4–4,5 месяца с массой тела от 28 до 40 грамм. Общее число животных 57 голов, число животных на точку от 4 до 14. В ходе всего эксперимента животные содержались на стандартном рационе питания и в неограниченном доступе к воде. Интактные мыши C57Bl6 содержались в группе или индивидуально в

течение 8 суток, а ICR (CD-1) — 16 суток, при этом число животных в группе было 4–8 голов.

Облучение мышей проводили терапевтическим пучком протонов с энергией 171 МэВ в дозе 1 Гр, созданном на фазотроне ОИЯИ для проведения лучевой терапии пациентов [12]. ЛПЭ протонов-171 МэВ составила 0,49 кэВ/мкм, мощность дозы 0,37 Гр/мин. Группы биоконтроля составили 19 животных.

Эвтаназию животных осуществляли путем цервикальной дислокации через 21–22 часа и на восьмые сутки после облучения.

Подсчет лейкоцитов в периферической крови и определение числа кариоцитов в костном мозге бедренной кости проводили в камере Горяева по стандартной методике [13].

Критериями изменений в клетках костного мозга являлись величина митотического индекса и количество клеток с аберрантными митозами, для анализа которых использовался анафазный метод [14].

Масса тела животных, тимуса и селезенки определялась на электронных весах Zelmer и Ohrus с ценой деления 1,0 г и 1,0 мг соответственно.

Для статистической обработки: подсчета средней арифметической и ошибки средней — использовали программный комплекс Microsoft Office Excel 2010, достоверность различий рассчитывали по критерия Стьюдента при р≤0,05. Распределение вариант соответствовало нормальному.

Все эксперименты над животными проводили с соблюдением «Правил проведения работ с использованием экспериментальных животных», регламентированных приказом Министерства здравоохранения СССР №755 от 12.08.1987 г., в том числе по гуманному отношению к ним.

Результаты. Данные, представленные в табл. 1, показывают, что при групповом содержании интактных животных число кариоцитов в костном мозге и масса тимуса оказались сниженными. Наиболее чувствительными к стрессу, как известно, являются лимфоциты тимуса [1], поэтому вполне логичным является снижение массы тимуса.

В табл. 2 представлены данные о показателях системы крови и центральных органов системы иммунитета через 21–22 часа после облучения протонами с энергией 171 МэВ. При групповом содержании мышей масса тимуса оказалась выше по сравнению с индивидуальным. Масса селезенки не различалась в обеих группах. Число кариоцитов в костном мозге мышей, содержащихся индивидуально, статистически значимо было выше по сравнению с данным показателем у мышей группового содержания. Отмечена тенденция к большей сохранности числа лейкоцитов в периферической крови и более высокой пролиферативной активности клеток костного мозга при индивидуальном содержании животных, в то время как уровень аберрантных митозов при групповом содержании был несколько выше.

Влияние различного содержания на восстановление систем крови и иммунитета представлено в табл. 3. При сопоставлении данных табл. 1 и табл. 3 видно, что к восьмым суткам полного восстановления не происходит. Тем не менее, по показателю массы тимуса отмечено опережение восстановления при групповом содержании мышей. По показателям массы селезенки, числа кариоцитов в костном мозге и числа лейкоцитов в периферической крови отмечено достоверное ускорение восстановления. По величине митотического индекса и уровню аберрантных митозов отмечена тенденция более благоприятного

Таблица 1.

Влияние индивидуального и группового содержания интактных мышей C57Bl6 и CD-1 на показатели системы крови и иммунитета (M±m) на 8–16-е сутки от начала эксперимента

Группа

Кол-во мышей

Масса тела, г

Масса тимуса, мг

Масса селезенки, мг

Число кариоцитов в костном мозге

Число лейкоцитов в периферической крови, nx109

Митотический индекс, %

Аберрантные митозы, %

1

Индивидуальное содержание, CD-1

8

36,9 ± 1

41,6 ± 2,1

130 ± 7,3*

26,9 ± 1,2*

8,9 ± 0,2*

1,73 ± 0,06

1,63 ± 0,5

2

Групповое содержание, CD-1

7

36,6 ± 0,5

38,6 ± 4,8

174,4 ± 34,2

21,4 ± 1,1

10,4 ± 2,6

1,7 ± 0,05

1,72 ± 0,5

3

Индивидуальное содержание, C57Bl6

4

30 ± 0,1

63,5 ± 5,1

87,5 ± 2

29,9 ± 0,25**

7,25 ± 0,5**

1,93 ± 0,06

1,5 ± 0,47

4

Групповое содержание, C57Bl6

4

27,5 ± 0,2

60 ± 8,9

82 ± 6,7

26,7 ± 0,1

3,3 ± 0,04

1,82 ± 0,05

1,58 ± 0,5

П р и м еч а н и е : статистически значимые различия с группой: * — № 2; ** — № 4.

Таблица 2

Влияние индивидуального и группового содержания мышей C57Bl6 на показатели системы крови и иммунитета (M±m) через 21–22 часа после облучения протонами с энергией 171 МэВ в дозе 1 Гр

Группа

Кол-во мышей

Масса тела, г

Масса тимуса, мг

Масса селезенки, мг

Число кариоцитов в костном мозге

Число лейкоцитов в периферической крови, nx109

Митотический индекс, %

Аберрантные митозы, %

1

Индивидуальное содержание

14

28,4 ± 0,6

26,9 ± 1,8

60 ± 2,3

22,8 ± 0,54*

1,6 ± 0,2

1,34 ± 0,3

16,1 ± 1,3

2

Групповое содержание

8

27,9 ± 0,4

32,25 ± 3,5

63,4 ± 2

19,7 ± 1,07

1,46 ± 0,17

1,27 ± 0,3

18,2 ± 1,7

П р и м еч а н и е : статистически значимые различия с группой: * — № 2.

эффекта группового содержания животных. В восстановительном периоде лучевой болезни групповое содержание мышей, в соответствии с нашими данными, оказывает стимулирующее влияние на восстановление кроветворения.

Обсуждение. Полученные нами данные указывают на меньшую поражаемость системы кроветворения у мышей при индивидуальном содержании, за исключением центрального органа иммуногенеза и наиболее стресс-чувствительного — тимуса. Однако эти данные статистически недостоверны. Наиболее значимым показателем, отражающим более высокий уровень радиорезистентности при индивидуальном содержании, является число кариоцитов в костном мозге мышей [15, 16].

Результаты наших исследований согласуются с выводами [11] о том, что групповое содержание мышей вызывает снижение уровня тревоги при хроническом стрессе.

В работе [17] показано, что после 120-суточной гипокинезии испытателей-добровольцев частота ацентрических парных фрагментов увеличилась в 2 раза, а частота ацентриков снизилась, уровень дицентриков и центрических колец не отличался от контрольного.

Таким образом, радиационный стресс вызывает повышение нарушений цитогенетического аппарата клеток (см. табл. 2–3), усиливаемое при групповом содержании животных. Однако следует отметить, что данные, полученные о различиях в группах по показателю уровня аберрантных митозов, оказались статистически недостоверными. Данное обстоятельство указывает на то, что групповое содержание живот- ных является относительно слабым стрессором по данному показателю.

Заключение. Суммируя все изложенное, следует заключить, что при групповом содержании интактных животных число кариоцитов в костном мозге и масса тимуса оказались сниженными.

Облучение в сублетальной дозе протонного излучения приводит к большему поражению клеток костного мозга при групповом содержании животных по сравнению с индивидуальным, тогда как восстановительные процессы при групповом содержании проходят с большей скоростью.

Таким образом, групповое содержание мышей-самцов вызывает повышенную чувствительность системы крови и иммунитета к действию радиации и в то же время ускоряет процессы пострадиационного восстановления.

Список литературы Влияние индивидуального и группового содержания мышей на уровень радиорезистентности

  • Горизонтов П.Д. Гомеостаз. М.: Медицина, 1981; 576 с.
  • Ингель Ф.И. Перспективы использования микроядерного теста на лимфоцитах крови человека, культивируемых в условиях цитокинетического блока. Экологическая генетика 2006; 4 (4): 38-53
  • Муратова М.Ю., Ворожцова С.В., Абросимова А.Н. и др. Сочетанное влияние иммобилизационного стресса и гамма-излучения на кроветворную систему мышей. Авиакосмическая и экологическая медицина 2001; 35 (5): 22-25
  • Даев E.B., Суринов Б.П., Дукельская А.В. и др. Влияние хемосигналов стресса на стабильность хромосомного аппарата и функцию лимфоидных клеток самцов лабораторных мышей. Цитология 2007; 49 (8): 696-701
  • Абрамов В.В. Взаимозависимость функционирования иммунной и нервной систем. Успехи соврем, биол. 1991; 111 (6): 840-844).
  • Ингель Ф.И., Прихожан А.М., Геворкян H.M., Илюшина Н.А. и др. Длительный психоэмоциональный стресс как индуктор мутаций у млекопитающих и модификатор мутагенеза. Бюлл. эксперим. биол. и медицины 1993; (9): 307-309
  • Дюжикова H.A., Быковская H.В., Вайдо А.И. и др. Частота хромосомных нарушений, индуцированных однократным стрессорным воздействием, у крыс, селектированных по возбудимости нервной системы. Генетика 1996; (32): 851-853
  • Clem RJ. Apoptosis as a stress response: lessons from an insect virus. In: Stress-inducible processes in higher eucariotic cells. New York: Plenum Press, 1997; 109-136
  • Федоренко B.C., Снигирева Г.П., Шевченко В.А. и др. Влияние психологического стресса на частоту аберраций хромосом в лимфоцитах периферической крови человека. В кн.: Модельный эксперимент с длительной изоляцией: проблемы и достижения. М.: Слово, 2001; с. 525-531
  • Guide for the Care and Use of Laboratory Animals. National Research Council. National Academy Press 2011
  • Liu X, Wu R, Tai F, et al. Effects of group housing on stress induced emotional and neuroendocrine alteration. Brain Res 2013; (1502): 71-80
  • Молоканов А.Г. Формирование радиотерапевтического протонного пучка фазотрона ЛЯП ОИЯИ. Вопросы атомной науки и техники 2008; (5): 146
  • Mantz JM. Method forthe quantitative examination of the bone marrow of white rats. C.R. Sciences Soc Biol Fil 1957; 151 (11): 1957-1960
  • Стржижовский А.Д. Количественная оценка длительности существования хромосомных аберраций в клетках различных тканей млекопитающих in vivo. Генетика 1972; 8 (2): 93-100
  • Груздев Г.П., Федотова М.И., Щербова Е.Н. О некоторых закономерностях опустошения костного мозга у крыс, пораженных гамма-излучением. Радиобиология 1984; 3 (3): 389-392
  • Груздев Г.П. Проблема поражения кроветворной ткани при острой лучевой патологии. М.: Медицина, 1968; 212 с.
  • Репина Л.А., Дружинин С.В. Действие длительной антиортостатической гипокинезии на частоту хромосомных аберраций в лимфоцитах периферической крови человека. Вестн. Междунар. ун-та природы, общества и человека. Дубна 2001; (2): 43-45.
Еще
Статья научная