Влияние экспериментально вызванного метаболического синдрома на функциональное состояние мочевого пузыря у крыс

Автор: Кирпатовский В.И., Мудрая И.С., Греков Е.А., Кабанова И.В., Голованов С.А., Дрожжева В.В., Надточий О.Н.

Журнал: Экспериментальная и клиническая урология @ecuro

Рубрика: Экспериментальная урология

Статья в выпуске: 1, 2013 года.

Бесплатный доступ

Эксперименты проводили с использованием 20 зрелых самцов крыс (линия «Август») с массой 280-320 г. У 10 крыс метаболические изменения, характерные для метаболического синдрома (МС), были вызваны использованием высококалорийной диеты (добавление 20% маргарина к стандартной диете и 20% фруктозы в воду в течение 3 месяцев), двусторонняя орхиэктомия (для создания дефицита андрогенов) и стресс (стресс иммобилизации в течение 1 дня в конце периода наблюдения). Еще 10 крыс были контролем. В экспериментальной группе наблюдалось увеличение массы тела, гипергликемия, гиперглюкозурия, гипертриглицеридемия (с увеличением липопротеинов низкой плотности), гиперурикемия и гиперурикурия. Они были типичными для РС. У крыс с РС было показано, что были зафиксированы спонтанные сокращения мочевого пузыря с периодическим увеличением внутрипузырного давления до 7-12 см H 2 O, тогда как в контрольной группе эти сокращения не превышали точки 4 см H 2 O , Также in vitro оценка сокращения фрагментов мочевого пузыря показала, что амплитуда спонтанных сокращений в условиях покоя была выше у группы крыс с РС по сравнению с контрольной группой. Во время электростимуляции спонтанные сокращения в мышечных фрагментах крыс с МС также регистрировались между электрически индуцированными. Это не было случаем в контрольной группе. Автономное регулирование с использованием гармонического анализа вариации биоимпеданса, которое показало доминантность региональной парасимпатической активности у крыс с РС.

Еще

Метаболический синдром, гиперактивность мочевого пузыря, вегетативная регуляция

Короткий адрес: https://sciup.org/142188353

IDR: 142188353

Список литературы Влияние экспериментально вызванного метаболического синдрома на функциональное состояние мочевого пузыря у крыс

  • Gorbachisky I, Akpinar H, Assimos DG. Metabolic syndrome and urological diseases.//Rev. Urol. 2010. Vol. 12, N 4. P. 157-180.
  • Мудрая И.С., Ибрагимов А.Р., Кирпатовский В.И., Ревенко С.В., Несторов А.В., Гаврилов И.Ю. Оценка функцмионального состояния мочевого пузыря крыс методом Фурье-импедансной цистометрии.//Экспер. и клинич. урология. 2010. № 3. С. 21-27.
  • Кирпатовский В.И., Кудрявцев Ю.В., Мудрая И.С., Белик С.М., Хромов Р.А. Гетерогенность морфологических и функциональных изменений разных отделов мочевого пузыря крыс при инфравезикальной обструкции мочевых путей.//Бюлл. экспер. биол. мед. 2009. Т. 147. № 1. С. 108-112.
  • Vazquez-Prieto MA, Gonzalez RE, Renna NP, Galmarini CR, Miatello RM. Aqueous garlic extracts prevent oxidative stress and vascular remodeling in an experimental model of metabolic syndrome.//J Agric Food Chem. 2010. Vol. 58, N 11. P. 630-635.
  • Kong X, Zhang DY, Wu H.B, Li FX. Losartan and pioglitazone ameliorate nephroathy in experimental metabolic syndrome rats.//Biol Pharm Bull. 2011. Vol. 34, N 5. P. 693-699.
  • Vila L, Rebollo A, Adalsteisson GS, Alegre TM, Merlos M, Roglans N, Laguna JC. Reduction of liver fructokinase expression and improved hepatic inflammation and metabolism in liquid fructose-fed rats after atrovastatin treatment.//Toxicol Appl Pharmacol. 2011. Vol. 251, N 1. P. 32-40.
  • Panchal SK, Poudyal H, Iyer A, Nazer R, Alam A, Diwan V, Kauter K, Sernia C, Campbell F, Ward L, Gobe G, Fenning A, Brown L. High-carbohydrate high-fat diet-induced metabolic syndrome and cardiovascular remodeling in rats.//J Cardiovasc Pharmacol. 2011. Vol. 57, N 1. P. 51-64.
  • Dhibi L, Brahmi F, Mnari A, Houas Z, Charg I, Bchir L, Gazzah N, Alsaif MA, Hammami M. The intake of high fat diet with different trans-fatty acids levels differentially induces oxidative stress and non-alcoholic fatty liver disease (NAPLD) in rats.//Nutr Metab. 2011. Vol.8, N 1. P. 65.
  • Hashitani H, Fukuta H, Takano H, Klemm M, Suzuki H. Origin and propagation of spontaneous excitation in smooth muscle of guinea pig urinary bladder.//J Physiol. 2001. Vol. 530. P. 273-286.
  • Gillespie JL. The autonomous bladder: a view of the origin of bladder overactivity and sensory urge.//BJU Int. 2004. Vol. 93. P. 478-483.
  • Almasri AM, Ratz PH, Bhatia H, Klausner AP, Speich JE. Rhythmic contraction generates adjustable passive stiffness in rabbit detrusor.//J Appl Physiol. 2010. Vol. 108. P. 544-553.
  • Бурсиан А.В. Пейсмейкеры висцеральной системы.//Усп. Физиол. Наук. 2008. Т. 39. № 4. С. 3-13.
  • Thornbury KD, Hollywood MA, McHale NG, Sergeant GP. Cajal Beyond the gut: interstitial cells in the urinary system -towards general regulatory mechanisms of smooth muscle contractility.//Acta Gastroenterol Belg. 2011. Vol. 74, N 4. P. 536-542.
  • Нестеров А.В., Гаврилов И.Ю., Селектор Л.Я. и др. Фурье-анализ биоимпеданса пальца человека.//Бюлл. экспер. биол. мед. 2010. Т. 150, № 7. С. 31-37.
  • Julien C. The enigma of Mayer waves: Facts and models.//Cardiovasc Res. 2006. Vol. 70, N 1. P. 12-21.
  • Кирпатовский В.И., Мудрая И.С., Ревенко С.В., Нестеров А.В., Гаврилов И.Ю., Хромов Р.А., Баблумян А.Ю. Оценка интрамурального кровотока и нейрогенной регуляции в интактном и гипертрофированном мочевом пузыре крыс с помощью гармонического анализа биоимпеданса.//Бюлл. экспер. биол. мед. 2012 г. Т. 153, № 4. С. 422-427.
  • Кирпатовский В.И., Фролова Е.В., Надточий О.Н. Спонтанная ритмическая активность органов мочевой системы: роль интерстициальных клеток, биологическая значимость, патофизиологические аспекты.//Экспер. и клинич. урология, 2012. № 2. C.70-77
  • Shafik A, El-Sibai O, Shafik AA, Shafuk I. Identification of interstitial cells of Cajal in human urinary bladder: Concept of vesical pacemaker.//Urology. 2004. Vol. 64, N 4. P. 809-813.
  • Hashitani H. Interaction between interstitial cells and smooth muscles in the lower uri-nary tract and penis.//J Physiol. 2006. Vol. 576, N 3. P. 707-714.
  • Hashitani H, Lang RJ. Function of ICC-like cells in the urinary tract and male genital organs.//J Cell Mol Med. 2010. Vol. 14, N 6A. P. 1199-1211.
  • McQoskey KD. Interstitial cells of Cajal in the urinary tract.//Handb Exp Pharmacol. 2011. Vol. 202. P. 233-254.
  • Davidson RA, McCloskey KD. Morphology and localization of interstitial cells in the guinea pig bladder: structural relationship with smooth muscle and neurons.//J Urol. 2005. Vol. 173. P. 1385-1390.
  • Johnston L, Carson C, Lyons AD, Davidson RA, McCloskey KD. Choliergic-induced Ca2+ signaling in interstitial cells of Cajal from the guinea pig bladder.//Amer J Physiol, Renal Physiol. 2008. Vol. 294, N 3. P. F645-F655.
  • Min Y, He P, Wang Q, Jin X, Song B, Li L. The effect of c-kit blocker glivac on the contractile response of urinary bladder.//J Surg Res. 2011. Vol. 171, N 2. P. 193-199.
  • Vahabi B, McKay NG, Lawson K, Sellers DJ. The role of c-kit positive interstitial cells in mediating phasic contractions of bladder strips from streptozotocin-induced diabetic rats.//BJU Int. 2011. Vol. 107, N 9. P. 1480-1487.
Еще
Статья научная