Влияние на бактериальный гидролитический комплекс гумусо-аккумулятивного горизонта техноурбанозема пассажа через кишечник дождевого червя Aporrectodea caliginosa
Автор: Фролов О.А., Якушев А.В.
Журнал: Бюллетень Почвенного института им. В.В. Докучаева @byulleten-esoil
Статья в выпуске: 94, 2018 года.
Бесплатный доступ
Изучены экофизиологические особенности транзитного (прошедшее через кишечную полость) бактериального гидролитического комплекса Aporrectodea caliginosa : проведено сравнение в почве и копролитах биоразнообразия, преобладающих экологических стратегии и физиологических состояний среди его членов. Исследование проводили комплексным структурно-функциональным методом, основанном на кинетическом анализе сукцессии инициированных гидролитических бактериальных сообществ, возникающих после инокуляции набора селективных жидких питательных сред суспензией исследуемых образцов. В инициированные сообщества помимо гидролитических микроорганизмов входят негидролитические бактерии-спутники (олиготрофы и копиотрофы). Рост инициированных бактериальных сообществ на восьми средах с биополимерами (хитине, целлюлозе, пектине, крахмале, ксилане, декстране 500, твине 20, казеине) измеряли по оптической плотности. Описывали его двумя кинетическими параметрами, применяемыми для описания чистых культур микроорганизмов: максимальная удельная скорость роста и начальное физиологическое состояние...
Зоомикробные взаимодействия, кинетика роста, физиологическое состояние микроорганизмов, экологические стратегии микроорганизмов
Короткий адрес: https://sciup.org/143165447
IDR: 143165447 | DOI: 10.19047/0136-1694-2018-94-57-73
Список литературы Влияние на бактериальный гидролитический комплекс гумусо-аккумулятивного горизонта техноурбанозема пассажа через кишечник дождевого червя Aporrectodea caliginosa
- Благодатская Е.В., Ермолаев А.М., Мякшина Т.Н. Экологические стратегии микробных сообществ почв под растениями луговых экосистем//Изв. РАН. Сер. биологическая. 2004. №. 6. С. 740-748.
- Благодатский С.А., Богомолова И.Н., Благодатская Е.В. Микробная биомасса и кинетика роста микроорганизмов в черноземах при различном сельскохозяйственном использовании//Микробиология. 2008. Т. 77. № 1. С. 113-120.
- Бызов Б.А. Зоомикробные взаимодействия в почве. М.: ГЕОС, 2005. 213 с.
- Бызов Б.А., Якушев А.В., Микробиологическая характеристика вермикомпостирования методом мультисубстратного тестирования//Почвоведение. 2008. № 11. С. 1381-1387 DOI: 10.1134/S1064229308110112
- Всеволодова-Перель Т.С. Дождевые черви фауны России. Кадастр и определитель. М.: Наука, 1997. 102 с.
- Звягинцев Д.Г., Бабьева И.П., Зенова Г.М. Биология почв. М.: Изд-во Моск. ун-та, 2005. 445 с.
- Кутовая О.В. Характеристика гумусовых веществ агродерново-подзолистой почвы и копролитов дождевых червей//Бюл. Почв. ин-та им. В.В. Докучаева. 2012. Вып. 69. С. 46-59.
- Розанова М.С., Прокофьева Т.В., Лысак Л.В., Рахлеева А.А. Органическое вещество почв ботанического сада МГУ им. М.В. Ломоносова на Ленинских горах//Почвоведение. 2016. № 9. С. 1079-1092 DOI: 10.7868/S0032180X16090124
- Паников Н. С. Синтетическая хемостатная модель как средство описания сложного динамического поведения микроорганизмов//Микробиология. 1991. Т. 60. № 3. С. 431-441.
- Тихонов В.В., Бызов Б.А., Завгородняя Ю.А., Демин В.В. Дождевые черви преобразователи структуры и биологической активности гуминовых кислот//Изв. РАН. Сер. биологическая. 2011. № 1. С. 24-32 DOI: 10.1134/S1062359010061032
- Храмченкова О., Веремеев В., Бачура Ю. Водоросли почв и копролитов дождевых червей в луговых экосистемах//Наука и инновации. 2012. Т. 2. № 108.
- Юрков А.М., Чернов И.Ю., Тиунов А.В Влияние дождевых червей lumbricus terrestris на структуру дрожжевого сообщества лесной подстилки//Микробиология. 2008. Т. 77. № 1. С. 121-125 DOI: 10.1134/S0026261708010153
- Якушев А.В. Комплексный структурно-функциональный метод характеристики микробных популяций//Почвоведение. 2015. № 4. С. 429-446 DOI: 10.7868/S0032180X15040115
- Akkermans S., Van Impe J.F. Mechanistic modelling of the inhibitory effect of pH on microbial growth//Food Microbiol. 2018. Т. 72. P. 214-219 DOI: 10.1016/j.fm.2017.12.007
- AlSayed A., Fergala A., Eldyasti A. Influence of biomass density and food to microorganisms ratio on the mixed culture type I methanotrophs enriched from activated sludge//J. Environ. Sci. 2017 DOI: 10.1016/j.jes.2017.11.017
- Atungulu G.G., Thote S., Wilson S. Storage of hybrid rough rice-Consideration of microbial growth kinetics and prediction models//J. Stored Products Res. 2016. Т. 69. С. 235-244 DOI: 10.1016/j.jspr.2016.09.003
- Bal L. Morphological investigation in two moder-humus profiles and the role of the soil fauna in their genesis//Geoderma. 1970. Т. 4. № 1. С. 5-36 DOI: 10.1016/0016-7061(70)90030-3
- Bi Y.M., Tian G.L., Wang C., Zhang Y., Wang D.N., Zhang F.F., Sun Z.J. Differential effects of two earthworm species on Fusarium wilt of strawberry//Appl. Soil Ecology. 2018. V. 126. P. 174-181 DOI: 10.1016/j.apsoil.2018.02.024
- Byzov B.A., Thanh V.N., Babjeva I.P. Interrelationships between yeasts and soil diplopods//Soil Biol. Biochem. 1993. Т. 25. № 8. С. 1119-1126 DOI: 10.1016/0038-0717(93)90160-D
- Chang C.H., Szlavecz K., Buyer J.S. Species-specific effects of earthworms on microbial communities and the fate of litter-derived carbon//Soil Biol. Biochem. 2016. V. 100. P. 129-139 DOI: 10.1016/j.soilbio.2016.06.004
- Córdova O. et al. Influence of growth kinetics of microalgal cultures on biogas production//Renewable Energy. 2018. Т. 122. С. 455-459 DOI: 10.1016/j.renene.2018.01.125
- Dev S., Roy S., Bhattacharya J. Understanding the performance of sulfate reducing bacteria based packed bed reactor by growth kinetics study and microbial profiling//J. Environ. Management. 2016. Т. 177. С. 101-110 DOI: 10.1016/j.jenvman.2016.03.049
- Hargitai L. The role of organic matter content and humus quality in the maintenance of soil fertility and in environmental protection//Landscape and Urban Planning. 1993. Т. 27. № 2-4. С. 161-167 DOI: 10.1016/0169-2046(93)90044-E
- Huang G., Chen S., Dai C., Sun L., Sun W., Tang Y., Xiong F., He R., Ma H., Effects of ultrasound on microbial growth and enzyme activity//Ultrasonics Sonochemistry. 2017. Т. 37. С. 144-149 DOI: 10.1016/j.ultsonch.2016.12.018
- Huang K., Xia H. Role of earthworms' mucus in vermicomposting system: Biodegradation tests based on humification and microbial activity//Sci. Total Environ. 2018. V. 610. 703-708 DOI: 10.1016/j.scitotenv.2017.08.104
- Krichen E., Harmand J., Torrijos M., Godon J.J., Bernet N., Rapaport A. High biomass density promotes density-dependent microbial growth rate//Biochem. Engin. J. 2018. Т. 130. С. 66-75 DOI: 10.1016/j.bej.2017.11.017
- Laverack M.S. The Physiology of Earthworms. N.Y.: Macmillan, 1963. 230 p.
- Laverack N.S. Mechanistic mathematical models of microbial growth in bioreactors and in natural soils: explanation of complex phenomena//Mathematics and Computers in Simulation. 1996. Т. 42. № 2-3. С. 179-186 DOI: 10.1016/0378-4754(95)00127-1
- Panikov N.S. Kinetics of Microbial Processes, Reference Module in Earth Systems and Environmental Sciences. Elsevier, 2016. P. 1-19 DOI: 10.1016/B978-0-12-409548-9.09733-5
- Peigne J., Vian J.F., Payet V., Saby N.P. Soil fertility after 10 years of conservation tillage in organic farming//Soil and Tillage Res. 2018. V. 175. 194-204 DOI: 10.1016/j.still.2017.09.008
- Sanchez-Hernandez J. C. Biochar activation with exoenzymes induced by earthworms: A novel functional strategy for soil quality promotion//J. Hazardous Materials, 2018. V. 350. 136-143 DOI: 10.1016/j.jhazmat.2018.02.019
- Sanchez-Hernandez J.C., del Pino J.N., Capowiez,Y., Mazzia C., Rault M. Soil enzyme dynamics in chlorpyrifos-treated soils under the influence of earthworms//Sci. Total Environ. 2018. V. 612. P. 1407-1416 DOI: 10.1016/j.scitotenv.2017.09.043
- Satchell J.E. Earthworm microbiology//Earworm ecology from Darwin to vermiculture. London, N.Y, 1983. P. 315-364 DOI: 10.1007/978-94-009-5965-1
- Stanbury P.F., Whitaker A., Hall S.J. Principles of Fermentation Technology. Elsevier, 2017 P. 21-74 DOI: 10.1016/B978-0-08-099953-1.00002-8