Диагностика инфекций. Рубрика в журнале - Сельскохозяйственная биология

Динамика аминокислотного состава молока у BIV- и BLV-BIV-инфицированных коров при хранении

Красникова Е.С., Ларионова О.С., Банникова А.В., Евтеев А.В., Утанова Г.Х.

Статья научная

Лейкоз и вирусный иммунодефицит крупного рогатого скота относятся к разряду труднодиагностируемых инфекционных заболеваний сельскохозяйственных животных, что повышает вероятности вирусоносительства. Для диагностики иммунодефицита крупного рогатого скота не существует законодательно утвержденных норм, поэтому в хозяйствах молоко от больных коров может инфицировать товарную продукцию от здоровых животных. Часто возбудитель вирусного иммунодефицита (BIV) обнаруживается у животных, инфицированных возбудителем энзоотического лейкоза (BLV). В представленной работе мы впервые выявили, что молоко инфицированных ретровирусами коров имеет измененный аминокислотный баланс казеиновой фракции, а также низкую стабильность белка при хранении в условии холодильника. Целью наших исследований был сравнительный анализ и оценка стабильности аминокислотного состава молока от коров, зараженных возбудителями иммунодефицита и иммунодефицита/лейкоза, и животных, интактных по этим вирусам. Материалом для исследования служили 6 проб цельного молока от коров ( Bos taurus taurus ) черно-пестрой породы (2,8-6,7 лет), зараженных вирусом бычьего иммунодефицита, и коров с BLV-BIV микст-инфекцией...

Бесплатно

Дифференциация Mycoplasma bovis, Mycoplasma bovigenitalium, Mycoplasma californicum и выявление Ureaplasma diversum методом ПЦР в реальном времени

Козлова А.Д., Горбачева Н.С., Хаерова Р.Ф., Красникова М.С., Лазарева Е.А., Яцентюк С.П.

Статья научная

Микоплазмы и уреаплазмы - важные этиологические агенты маститов, пневмоний и репродуктивных нарушений у крупного рогатого скота (КРС), которые наносят значительный экономический ущерб хозяйствам. К наиболее распространенным клинически значимым видам относятся Mycoplasma bovis , M. bovigenitalium , M. californicum и Ureaplasma diversum. Существующие диагностические наборы на основе полимеразной цепной реакции (ПЦР) позволяют с высокой точностью выявлять в биологическом материале бактерии рода Mycoplasma , но не проводить видовую идентификацию. В представленной работе с помощью разработанных методик на основе ПЦР мы впервые выявили и дифференцировали патогенные виды семейства Mycoplas-mataceae в образцах криоконсервированной спермы быков-производителей, используемой для искусственного осеменения в отечественных хозяйствах. Нашей целью была разработка методик для идентификации и дифференциации наиболее распространенных патогенных микоплазм ( Mycoplasma bovis , M. californicum , M...

Бесплатно

Мультиплексная мультилокусная ПЦР в реальном времени для анализа и контроля вируса лейкоза птиц подгрупп A, B, J и K в России

Бородин А.М., Алексеев Я.И., Коновалова Н.В., Терентьева Е.В., Серова Н.Ю., Ефимов Д.Н., Емануйлова Ж.В., Смолов С.В., Огнева О.А., Фисинин В.И.

Статья научная

Вирус лейкоза птиц (ВЛП) относится к роду Alpharetrovirus семейства Retroviridae и имеет диплоидный геном, состоящий из одноцепочечной РНК. Для кур специфичны вирусы подгрупп A, B, C, D, E, J и K. Классификация вируса основана на различиях в структуре белка оболочки - GP85. Инфекция ВЛП, и в особенности инфекция ВЛП подгруппы J, наносит огромный ущерб промышленному птицеводству. Золотым стандартом для выявления ВЛП считается выделение вируса в культурах клеток CEFs или DF-1. Недостаток этого метода - длительность процедуры до получения результата (7-9 сут). Наиболее широкое распространение для выявления ВЛП получил иммуноферментный анализ. В его основе лежит выявление группоспецифического антигена ВЛП р27. Однако у этого метода также есть недостатки, главные из которых - получение ложноположительных результатов из-за экспрессии р27 эндогенными вирусами и недостаточная чувствительность. При проведении настоящего исследования нами разработана тест-система для выявления наиболее распространенных в мире подгрупп ВЛП (A, B, J и K) и осуществления контроля за распространением ВЛП...

Бесплатно

Получение рекомбинантного нуклеокапсидного белка вируса чумы мелких жвачных для применения в серодиагностике

Морозова Д.Ю., Иматдинов А.Р., Живодеров С.П., Титов И.А., Лыска В.М., Луницин А.В., Середа А.Д.

Статья научная

Чума мелких жвачных (ЧМЖ, peste des petits ruminants) - высококонтагиозная, остро или подостро протекающая вирусная болезнь овец и коз, характеризующаяся язвенными поражениями слизистой оболочки ротовой полости, лихорадкой, поражением лимфоидной системы, развитием пневмонии, геморрагическим гастроэнтеритом (A. Diallo с соавт., 1989; T.M. Ismail с соавт., 1995). Из-за высокой заболеваемости (50-100 %) и смертности (50-90 %) ЧМЖ относится к числу опасных заболеваний, наносящих значительный экономический ущерб (R.A. Kock с соавт., 2015). Возбудитель болезни - вирус ЧМЖ (род Morbillivirus , сем. Paramyxoviridae ) антигенно связан с другими морбилливирусами (G. Libeau с соавт., 2014). Степень проявления клинических признаков заболевания зависит от линии вируса ЧМЖ, вида, породы, иммунного статуса животных. Поэтому окончательный диагноз должен быть подтвержден в лаборатории. Для диагностических и мониторинговых серологических исследований предпочтение отдается технологичному и чувствительному методу иммуноферментного анализа (ИФА)...

Бесплатно

Тест-система для выявления генома вируса чумы мелких жвачных животных методом от-ПЦР в реальном времени

Сальников Н.И., Живодеров С.П., Янжиева Д.В., Кольцов А.Ю., Усадов Т.Р., Сухер М.М., Моргунов Ю.П., Луницин А.В.

Статья научная

Чума мелких жвачных животных (ЧМЖЖ) - высококонтагиозная трансграничная инфекционная болезнь мелких жвачных, характеризующаяся лихорадкой, анорексией, истечениями из глаз и носа, эрозиями и язвами в слизистой оболочке пищеварительного тракта, диареей, а также лейкопенией с иммуносупрессией. Ввиду сложной эпизоотической обстановки по ЧМЖЖ в сопредельных с Российской Федерацией государствах (Таджикистан, Китай, Монголия, Казахстан, Афганистан) существует высокий риск проникновения данного заболевания на территории Сибирского, Уральского, Дальневосточного, Северо-Кавказского и Южного федеральных округов. В связи с этим необходимы методы молекулярно-генетической диагностики возбудителя ЧМЖЖ, а также способы стабилизации образцов биоматериала для диагностических исследований при транспортировке на дальние расстояния. Нами представлены данные по разработке тест-системы для выявления генома вируса ЧМЖЖ методом ОТ-ПЦР в реальном времени. Методика основана на амплификации фрагмента гена гемагглютинина размером 148 п.н...

Бесплатно

Тест-системы ПЦР для выявления генома каприпоксвирусов и вируса заразного узелкового дерматита

Спрыгин А.В., Пестова Я.Е., Кострова Е.С., Кононова С.В., Бьядовская О.П., Жбанова Т.В., Кононов А.В.

Статья научная

Интенсификация животноводства неизбежно повышает риски заноса и распространения инфекционных заболеваний, из которых наиболее опасны трансграничные. Инфекции крупного рогатого скота, вызываемые каприпоксвирусами, в частности вирусом заразного узелкового дерматита (ЗУД, Lumpy skin disease, LSD), поражают крупный и мелкий рогатый скоту, нанося существенный экономический ущерб. До 2015 года территория Российской Федерации была благополучна по ЗУД, однако из-за локальных конфликтов на Ближнем Востоке и изменений климата заболевание распространяется в северном направлении (масштабные вспышки LSD в Турции, странах Балканского полуострова, ЕС и в России). Широкое использование живых гомологичных вакцин против LSD в соседних странах также актуализирует разработку методов диагностики этого возбудителя, позволяющих выявлять геномы полевых изолятов и дифференцировать вакцинный вирус ЗУД КРС. Нами впервые в России разработан и валидирован комплекс методов ПЦР в режиме реального времени для однорежимного тестирования проб на наличие генома каприпоксвирусов, полевых изолятов вируса заразного узелкового дерматита и вакцинного вируса ЗУД КРС типа Neethling...

Бесплатно