Биология продуктивности. Рубрика в журнале - Сельскохозяйственная биология
Статья научная
Оценка гормонального статуса при беспривязной технологии содержания крупного рогатого скота требует особого внимания к маркерам социального стресса и его кумулятивному эффекту. Для решения этой задачи необходима как разработка новых, так и совершенствование существующих методов мониторинга гормонального статуса КРС, в том числе поиск информативных биосубстратов для его оценки. Волосы — это один из перспективных и малоизученных биологически активных материалов для оценки гормонального статуса КРС. В настоящей работе впервые показано, что хронический стресс при беспривязном зимнем содержании бычков (повышение количества кортизола и адреналина в волосах, снижение тестостерона, соматотропина, инсулина) негативно влияет на продуктивность, аминокислотный, жирнокислотный и минеральный состав мяса, что подтверждает диагностическую ценность волос как биосубстрата для оценки долгосрочного гормонального статуса. Целью настоящего исследования была оценка влияния хронического стресса при привязном и беспривязном содержании на показатели продуктивности и качества мяса бычков герефордской породы. Работу проводили в 2024-2025 годах в ООО «Оренбив» (Оренбургская обл.) на 18-месячных герефордских бычках (Bos taurus) (n = 30). Животные были разделены на две группы (n = 15) в зависимости от технологии содержания в период заключительного откорма (I группа — привязная, II группа — беспривязная). Исследование проводилось в ноябре-январе при характерных для региона низких температурах (среднесуточные от -5 до -20 °C). При привязном содержание животных размещали в неотапливаемом помещении со стенами и крышей, выполненными из железобетонных конструкций, с фиксацией на привязи. Беспривязная технология предусматривала содержание животных в железобетонных помещениях со свободным выходом на выгульно-кормовую площадку. Пробы волос отбирались однократно перед отправкой на бойню с верхней части холки (минимум 0,4 г). Волосы состригали близко к коже; пробы хранили в сухих бумажных конвертах в темном месте при комнатной температуре до начала подготовки к анализу. После очистки волосы измельчали с помощью вибрационной мельницы IMC vMILL05 со стальным размольным комплектом. Размер частиц полученного порошка, выраженный как медиана распределения (d50), составлял 20 мкм. Экстракцию гормонов из волос проводили по методу, ранее описанному для человека и обезьян. Содержание гормонов в пробах волос определяли методом иммуноферментного анализа (ИФА) с использованием автоматического микропланшетного ридера Tecan Infinite 200 PRO («Tecan Group, Ltd.», Швейцария). Возраст убоя бычков 18 мес. Живую массу перед убоем измеряли индивидуально с точностью до 1 кг, после 24-часовой голодной выдержки. После убоя регистрировали массу туши в горячем и охлажденном виде и массу внутреннего жира. Затем рассчитывали выход туши и убойный выход по стандартным формулам. pH M. longissimus dorsi измеряли через 24 ч после убоя с помощью портативного pH-метра с проникающим электродом. После охлаждения мясо (мякоть) отделяли от костей, сухожилий и связок; все части туши взвешивали и рассчитывали их выход. Мякоть левых полутуш была обработана с помощью промышленной мясорубки. Качественные характеристики пробы m. longissimus dorsi и объединенной пробы фарша изучали в соответствии со стандартными методическими рекомендациями. В m. longissimus dorsi определяли содержание оксипролина и триптофана, лизина, тирозина, фенилаланина, гистидина, лейцин + изолейцина, метионина, валина, пролина, треонина, серина, аланина, глицина. Жирнокислотный состав мяса определяли методом газовой хроматографии. Анализ содержания эссенциальных и токсичных металлов (Na, Mg, P, K, Ca, Mn, Co, Cu, Cr, Fe, Zn, Se, B, Ni, Ga, Ag, In, Ba, Tl, Bi, Al, Sr, Cd, Hg, Pb, As) проводили методом масс-спектрометрии с индуктивно-связанной плазмой с использованием технологии динамической реакционной ячейки на приборе NexION 300D («PerkinElmer, Inc.», США), оснащенном автоматическим дозатором ESI SC-2 DX4 («Elemental Scientific, Inc.», США). Анализ волос выявил значимые различия в гормональном профиле. При беспривязном содержании зафиксирован хронический стресс: концентрации кортизола (+28 %, p ≤ 0,05) и адреналина (+19%, p ≤ 0,05) были достоверно выше, а анаболических гормонов — ниже (тестостерон -11 %, соматотропин -12 %, инсулин -12 %, p ≤ 0,05). Это объясняется совокупным действием низких температур (до -20 °C), необходимостью терморегуляции и конкуренцией за ресурсы на выгуле. Хронический стресс и гормональный дисбаланс негативно отразились на продуктивности. Бычки при беспривязном содержании имели достоверно меньшую конечную живую массу (504,6±5,84 кг против 521,3±5,43 кг, p ≤ 0,05), абсолютный (-15 %, p ≤ 0,001) и среднесуточный прирост (-15 %, p ≤ 0,001). Это привело к снижению массы туши (-3 %, p ≤ 0,05) и массы внутреннего жира-сырца (-15 %, p ≤ 0,001). Выход туши и убойный выход значимо не различались.
Бесплатно
Статья научная
Анализ активности ферментов сыворотки крови позволяет получать уникальную информацию о физиологическом состоянии сельскохозяйственной птицы при различных режимах кормления и содержания. Вместе с тем сравнительные исследования ферментативных профилей разных мясных кроссов в связи с их продуктивностью пока носят единичный характер. В настоящей работе впервые показано, что более высокие показатели продуктивности цыплят-бройлеров кросса Arbor Acres в сравнении с кроссом Смена 8 могут быть обусловлены высокой активностью ферментов энергетического и пластического метаболизма при минимальной значимости ферментов антиоксидантной защиты, в то время как различия внутри кроссов ассоциированы с активностью некоторых метаболических и пищеварительных ферментов. Нашей целью стал анализ основных метаболических, пищеварительных и антиоксидантных ферментов сыворотки крови, а также морфологических характеристик цыплят-бройлеров кроссов Смена 8 и Arbor Acres с определением наиболее значимых ассоциаций между биохимическими и производственными параметрами. Работа была выполнена в формате мета-анализа, интегрирующего результаты нескольких серий однотипных экспериментов. В мета-анализ были включены эксперименты, проведенные в 2016-2024 годах на базе вивария и Центра коллективного пользования БСТ РАН (https://ckp-rf.ru/cat-alog/ckp/77384/). Объектами изучения были цыплята-бройлеры (Gallus gallus domesticus) мясных кроссов Смена 8 и Arbor Acres, выращенные до возраста 42 сут. Для мета-анализа использовали данные, полученные для 12 групп кросса Смена 8 и 28 групп кросса Arbor Acres численностью 15-30 гол. каждая. Птицы 8 контрольных групп получали только двухфазный базовый рацион, рекомендуемый Всероссийским научно-исследовательским и технологическим институтом птицеводства. Рационы птицы 9 экспериментальных групп кросса Смена 8 и 23 групп кросса Arbor Acres включали пробиотические добавки на основе Bacillus cereus IP 5832 («Laboratoires AVENTIS», Франция) или Bifidobacterium adolescentis/Lactobacillus acidophilus (ООО Биотехнологическая фирма «Компонент», Россия), антибиотик хлортетрациклин (ООО ПО «Сиббиофарм», Россия), цельный растительный экстракт коры дуба Quercus cortex, а также химически синтезированные аналоги малых молекул растительного происхождения: гамма-лактон, производное кумарина, ванилин/ванилиновую кислоту, гексилрезорцинол и кверцетин с чистотой 95-98 % («Acros Organics B.V.B.A.», Бельгия). По окончании экспериментов из каждой группы случайным образом были отобраны по 10 птиц, у которых прижизненно из подкрыльцовой вены получали образцы крови для биохимического анализа. Активность метаболических и пищеварительных ферментов определяли на автоматическом анализаторе CS-T240 («DIRUI Industrial Co., Ltd», Китай). Активность аланинаминотрансферазы (АлАТ), аспартатаминотрансферазы (АсАТ), гамма-глутамилтрансферазы (ГГТ), лактатдегидрогеназы (ЛДГ), щелочной фосфатазы (ЩФ), альфа-амилазы, панкреатической амилазы и липазы исследовали с использованием коммерческих наборов для ветеринарии ДиаВетТест (ООО «ДИАКОН-ДС», Россия). Активность супероксиддисмутазы (СОД) количественно оценивали на биохимическом анализаторе Stat Fax 1904 Plus («Awareness Technology, Inc.», США) с помощью наборов реагентов производства «Randox Laboratories Ltd.» (Великобритания), активность каталазы определяли в тесте с молибдатом аммония. После забора крови птицу взвешивали на прецизионных электронных весах и гуманно забивали с последующей анатомической разделкой тушек. Определяли массу полупотрошеной и потрошеной тушки; массу грудных, бедренных и других мышц; массу внутренних органов (печень, селезенка, почки); массу костей. Дополнительно рассчитывали убойный выход, массу съедобной и несъедобной частей тушки, а также их соотношение. Установлено, что активность АлАТ, ЛДГ и ГГТ в сыворотке крови цыплят-бройлеров кросса Arbor Acres стабильно и выраженно превосходила таковую у кросса Смена 8 соответственно в 3,92; 1,53 и 1,26 раза. По результатам факторного анализа с позиционированием исследуемых групп в координатном пространстве Ф1 (фактор метаболических ферментов) х Ф2 (фактор пищеварительных ферментов) было зафиксировано принципиальное различие ферментативных профилей крови у исследованных кроссов. Сравнение морфологических параметров тушек цыплят-бройлеров также свидетельствовало о множественности различий, включающих повышенные абсолютные значения мясной продуктивности кросса Arbor Acres относительно кросса Смена 8. Последующий корреляционный анализ показал выраженные взаимосвязи (p < 0,001) в парах ЛДГ—предубойная живая масса (r = 0,699), АлАТ—масса съедобной части тушки» (r = 0,588) и ГГТ—масса печени (r = 0,586), однозначно объясняющие причины повышенной продуктивности кросса Arbor Acres высокой активностью генетически детерминированных ферментов энергетического и пластического метаболизма.
Бесплатно
