Чувствительность к инсектицидам и активность ферментов детоксикации у Musca domestica L. (Diptera: Muscidae) природной популяции
Автор: Силиванова Елена Анатольевна, Шумилова Полина Андреевна, Левченко Михаил Алексеевич
Журнал: Вестник Красноярского государственного аграрного университета @vestnik-kgau
Рубрика: Ветеринария и зоотехния
Статья в выпуске: 12, 2020 года.
Бесплатный доступ
Цель данной работы заключалась в изучении чувствительности к инсектицидам и активности ферментов детоксикации комнатных мух Musca domestica L. природной популяции из помещений животноводческого хозяйства Тюменской области. Объектами исследования были личинки и 3-5-суточные имаго M. domestica лабораторной культуры и первого поколения природной популяции. Полулетальные дозы инсектицидов ацетамиприда, фипронила, ивермектина и хлорфенапира для имаго были рассчитаны методом пробит-анализа на основе результатов оценки кишечного инсектицидного действия веществ, которую проводили методом группового скармливания. Результаты токсикологических опытов по оценке чувствительности имаго M. domestica к инсектицидам показали, что особи природной популяции были толерантны к ацетамиприду. Полулетальная доза ацетамиприда для имаго природной популяции была больше, чем для особей лабораторной культуры, а показатель резистентности к ацетамиприду был равен 2,5-3,4. Лабораторная культура и природная популяция M. domestica не отличались по показателю средней массы одной особи на стадии личинки и имаго. Между особями M. domestica лабораторной культуры и природной популяции выявлены статистически значимые отличия в отношении монооксигеназ личинок и имаго, глутатион-S-трансферазы и гидролаз имаго. У имаго (без разделения по полу) M. domestica природной популяции монооксигеназная активность была в 2,6 раза, глутатион-S-трансферазная - в 1,5 раза, карбоксилэстеразная - в 2 раза и фосфатазной - в 2,9 раза ниже, чем у особей лабораторной культуры. Активность исследованных ферментов у имаго природной популяции не имела статистически значимых отличий в зависимости от пола.
Микросомальные р450-монооксигеназы, карбоксилэстераза, ацетилхолинэстераза, щелочная фосфатаза, глутатион-s-трансфераза, детоксикация ксенобиотиков, насекомые
Короткий адрес: https://sciup.org/140250575
IDR: 140250575 | УДК: 619:615.285 | DOI: 10.36718/1819-4036-2020-12-102-109
Insecticide susceptibility and detoxification enzyme activity in Musca domestica L. (Diptera: Muscidae) of field population
The purpose of the study consisted in susceptibility to insecticides and the activity of detoxification enzymes in houseflies of Musca domestica L. natural population from premises of livestock farm of Tyumen Region. The objects of the study were larva and 3-5-days old imagoes of M. domestica of the laboratory strain and the first generation obtained from specimens of the field population. The half-lethal doses of acetamiprid, fipronil, ivermectin, and chlorfenapyr for imagoes were calculated by probit analysis method based on the results of the assessment of intestinal insecticidal activities of these substances by the feeding tests. The results of toxicological experiments on the assessment of the sensitivity of the imagoes of M. domestica to insecticides shower that they were tolerant to acetamiprid. The half-lethal dose of acetamiprid for an imago of natural population was more, than for the individuals of laboratory culture, and the resistance indicator to acetamiprid was equal to 2.5-3.4. Laboratory culture and natural population of M. domestica did not differ on the indicator of average mass of one individual of the stage of larva and imago. There were statistically significant differences between enzyme activities of M. domestica specimens of the laboratory strain and the field population concerning monooxygenases in larvae and adults, glutathione-S-transferase, and hydrolases in adults. In the adults of M. domestica (without sex differentiation) monooxygenase activity was 2.6 times lower, glutathione-S-transferase activity was 1.5 times lower, carboxylesterase activity was 2 times lower, and phosphatase activity was 2.9 times lower of the field population than that in the imagoes of laboratory strain. The activity of the studied enzymes in imagoes of field population did not have statistically significant differences depending on sex.
Список литературы Чувствительность к инсектицидам и активность ферментов детоксикации у Musca domestica L. (Diptera: Muscidae) природной популяции
- Домацкий А.Н., Веселкин Г.А. Экологофаунистические особенности зоофильных мух в промышленном кролиководстве // Проблемы энтомологии и арахнологии: сб. науч. тр. Тюмень, 1989. С. 103-108.
- Романенко П.В. Фауна и экология зоофильных мух в промышленном секторе птицеводства Ивановской области // Теория и практика борьбы с паразитарными болезнями. 2014. № 15. С. 242-244.
- Birkemoe T., Sverdrup-Thygeson A. Stable fly (Stomoxys calcitrans) and house fly (Musca domestica) densities: a comparison of three monitoring methods on pig farms // J Pest Sci. 2011. V. 84. P.273-280.
- Tummeleht L., Jurison M., Kurina O., Kirik H., Jeremejeva J., Viltrop A. Diversity of Diptera Species in Estonian Pig Farms // Vet. Sci. 2020. V7(13). DOI: 10.3390/vetsci7010013
- Byford R.L., Craig M.E., Crosby B.L. A review of ectoparasites and their effect on cattle production. // J Anim Sci. 1992. V.70(2). P. 597-602.
- Förster M., Klimpel S., Mehlhorn H., Sievert K., Messler S., Pfeffer K. Pilot study on synanthropic flies (e.g. Musca, Sarcophaga, Calliphora, Fannia, Lucilia, Stomoxys) as vectors of pathogenic microorganisms // Parasitol. Res. 2007. V.101. P. 243-246.
- Abbas N., Shad S.A., Ismail M. Resistance to Conventional and New Insecticides in House Flies (Diptera: Muscidae) From Poultry Facilities in Punjab, Pakistan // J. Econ. Entomol. 2015. V.108 (2). P.826-833.
- Khan H.A., Akram W., Shad S.A. Resistance to conventional insecticides in Pakistani populations of Musca domestica L. (Diptera: Muscidae): a potential ectoparasite of dairy animals // Ecotoxicology. 2013. V. 22. P. 522-527
- Li Q., Huang J., Yuan J. Status and preliminary mechanism of resistance to insecticides in a field strain of housefly (Musca domestica, L) // Revista Brasileira de Entomologia. 2018. Vol. 62. P.311-314.
- Соколянская М.П. Токсикологическая и биохимическая характеристика процесса формирования резистентности у комнатной мухи (Musca domestica L.) к современным инсектицидам: автореф. дис.. канд. биол. наук / Всероссийский научно-исследовательский институт защиты растений Российской академии сельскохозяйственных наук. СПб., 2007.
- Li X., Schuler M.A., Berenbaum M.R. Molecular mechanisms of metabolic resistance to synthetic and natural xenobiotics // Ann. Rev. Entomol. 2007. V. 52. P. 231-253.
- Ибрагимхалилова И.В., Еремина О.Ю. Разработка метода оценки отравленных приманок и сравнение контактного и кишечного действия инсектицидов на примере комнатной мухи Musca domestica L. к инсектицидам // Агрохимия. 2007. № 12. С. 56-62.
- Силиванова Е.А., Левченко М.А., Шумилова П.А. [и др.]. Активность фосфатаз и ацетилхолинэстеразы у комнатной мухи Musca domestica L. на разных стадиях жизненного цикла // Евразиатский энтомологический журнал. 2020. Т. 19. № 3. С. 124-130.
- Lowry O.H. Protein measurement with Folin phenol reagent / Rosebrough, N.J., Farr, A.L., Randall, R.J. // J. Biol. Chem. 1951. V. 193(1). P. 265-275.
- Serebrov V.V., Gerber O.N., Malyarchuk A.A., Martemyanov V.V., Alekseev A.A., Glupov V.V. Effect of Entomopathogenic Fungi on Detoxification Enzyme Activity in Greater Wax Moth Galleria mellonella L. (Lepidoptera, Pyralidae) and Role of Detoxification Enzymes in Development of Insect Resistance to Entomopathogenic Fungi // Biology Bulletin. 2006. V. 33(6). P. 581-586.
- Quantification methodology for enzyme activity related to insecticide resistance in Aedes aegypti / Ministry of Health of Brazil, Fundação Oswaldo Cruz. Brasília: Ministério da Saúde, 2006. 128 p.
- Лакин Г.Ф. Биометрия. М.: Высшая школа, 1990. С. 255-274
- Kim J.H., Moreau, J.A., Ali Y., Razo P., Yoon K.S., Clark J.M. RNA interference validation of detoxification genes involved in ivermectin tolerance in Drosophila melanogaster // Insect Molecular Biology. 2018. V. 27(5). P. 651-660.
