Динамика провирусной нагрузки и антителообразования при экспериментальной BLV-инфекции у крыс

Автор: Красникова Е.С., Красников А.В., Светозарова А.Ю.

Журнал: Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана @uchenye-zapiski-ksavm

Статья в выпуске: 1 т.253, 2023 года.

Бесплатный доступ

Изучена динамика антителообразования и провирусной нагрузки при экспериментальной BLV-инфекции лабораторных крыс. Установлено, что при парентеральном заражении BLV у крыс линии Wistar развивается продуктивная инфекция, элиминации возбудителя не происходит, животные проявляют ответную реакцию в виде антителообразования. Следовательно, белые лабораторные крысы линии Wistar могут быть использованы в качестве лабораторной модели при изучении эффектов возбудителя лейкоза крупного рогатого скота in vivo. При этом пассаж в организме лабораторных крыс не приводит к снижению инфекционности BLV для лабораторных животных, а у потомства зараженных крыс отмечается более агрессивное развитие инфекционного процесса, чем у их родителей.

Еще

Лейкоз крупного рогатого скота, крысы линии wistar, провирусная нагрузка, антителообразование, продуктивная инфекция, инфекционность

Короткий адрес: https://sciup.org/142237098

IDR: 142237098   |   DOI: 10.31588/2413_4201_1883_1_253_147

Текст научной статьи Динамика провирусной нагрузки и антителообразования при экспериментальной BLV-инфекции у крыс

Вирус лейкоза крупного рогатого скота (BLV) является этиологическим фактором распространенной во всем мире хронической инфекции, возбудитель которой имеет склонность к расширению своего тропизма, как в отношении отдельных клеток и тканей, так и в отношении круга восприимчивых хозяев [5, 6]. При BLV-инфекции провирусная нагрузка и антителообразование являются основными диагностическими маркерами для определения прогрессирования заболевания и риска передачи инфекции, что имеет определенную корреляцию с генотипом выделенного от животных вируса [1]. Кроме того, недавно появившиеся штаммы BLV могут вызывать более раннее начало злокачественной пролиферации вирус трансформированных клеток, что сопровождается высокой провирусной нагрузкой в инфицированном организме и способствует повышенному риску передачи BLV интактным животным. При этом провирусная нагрузка коррелирует не только с инфекцией BLV, но и с прогрессированием заболевания, являясь важным показателем оценки стадии инфекции [7]. Основной иммуноген вируса, гликопротеид Gp51, индуцирующий образование вируснейтрализующих антител в зараженном организме, не только детерминирует цикл репродукции BLV, но так как служит основным фактором инфекционности вириона и прогностическим маркером динамики и стадийности заболевания [3].

Ранее проведенные исследования показали высокую восприимчивость белых крыс линии Wistar к инфекции BLV [2, 4]. Однако, несмотря на характерные для лейкозного процесса гематологические, иммунологические и цитологические изменения в организме лабораторных крыс при экспериментальной BLV -инфекции, вопрос изучения динамики инфекционного процесса у них является актуальным. Комплексное исследование антителообразования и провирусной нагрузки в зараженном организме в динамике могут охарактеризовать тип инфекции: абортивная, продуктивная, персистирующая, латентная или инаппарантная, что позволит достоверно судить о возможности использования белых лабораторных крыс в качестве лабораторной модели для изучения эффектов BLV in vivo и определения эффективности противовирусных превентивных и терапевтических препаратов, разработка которых является актуальной тенденцией современной вирусологии и лейкозологии.

В связи с выше сказанным, целью настоящих исследований стало изучение динамики провирусной нагрузки и антителообразования в организме белых лабораторных крыс линии Wistar при экспериментальной BLV -инфекции.

Материал и методы исследований. В качестве объекта исследования выступили 6-и месячные белые лабораторные крысы линии Wistar (n=12), которые были парентерально инфицированы лимфоцитами BLV-положительных коров по оригинальной авторской методике (патент РФ № 2615465). Животных содержали в стандартных клетках группами по 3 самки и 1 самцу на полноценном рационе при свободном доступе к воде, в соответствии с ГОСТом 33216-2014. Кровь отбирали из сердца крыс в пробирки для гематологических исследований (ЭДТА-К3) и пробирки с активатором образования кровяного сгустка (SiO2) четырехкратно в течение года с интервалом три месяца. Исследования крови и ее сыворотки проводили в день получения. Провирус в крови экспериментальных крыс определяли методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) в реальном времени, а динамику антителообразования изучали методом иммуноферментного анализа (ИФА). Для экстракции и очистки нуклеиновых кислот из крови экспериментальных животных применяли комплект реагентов для выделения ДНК из клинического материала «ДНК-сорб-B», а динамику провирусной нагрузки определяли с использованием тест-системы «ЛЕЙКОЗ» (ИнтерЛабСервис, Россия) на амплификаторе CFX 96 (BioRad, США).

Динамику антителообразования изучали с помощью набора для выявления антител к вирусу лейкоза крупного рогатого скота производства ООО «Ветбтохим» (Москва, Россия) на биохимическом и ИФА анализаторе автоматическом Chem Well 2910 (Awareness Technology, США).

Для изучения инфекционности адаптированного в организме крыс вируса, осуществляли перезаражение интактных крыс кровью инфицированных. Затем определяли у них динамику провирусной нагрузки и антителообразования. Кроме того, проводили аналогичные исследования потомства инфицированных крыс для установления возможности передачи возбудителя от родителей потомству горизонтальным и вертикальным путями.

Результат исследований. В результате проведенных исследований были определены титры антител у экспериментальных животных и провирусная нагрузка в динамике эксперимента, характеризующие тип инфекционного процесса, индуцированного у них путем парентерального введения BLV -инфицированных лимфоцитов крови. Полученные в ходе эксперимента данные представлены в таблицах 1-4.

Таблица 1 – Результаты ПЦР-скрининга экспериментальных крыс

№ образца

Цикл выхода кривой за пороговую линию

3  месяца после

инфекции

6 месяцев после инфекции

9 месяцев после инфекции

12 месяцев после инфекции

1

30

26

25

27

2

16

16

13

12

3

11

11

17

13

4

22

20

10

9

5

15

14

19

18

6

15

18

12

7

7

15

19

30

31

8

11

17

15

5

9

33

28

24

14

10

21

11

9

6

11

21

27

32

33

12

13

16

13

8

К+

13

15

17

11

К-

-

-

-

-

Примечание: 1-12 – номер животных экспериментальной группы; К+ – положительный контроль ПЦР; К- – отрицательный контроль ПЦР

Как следует из представленных в таблице 1 данных, через 3 месяца после инфицирования по оригинальной авторской методике все крысы, в той или иной степени, были носителями провируса BLV. Крысы № 7 и 11 показали отрицательную динамику провирусной нагрузки, однако на окончание эксперимента полной элиминации возбудителя у них не было отмечено. У крысы № 1 провирусная нагрузка была не высокой и в динамике эксперимента не имела выраженной положительной тенденции. Остальные 9 экспериментальных животных проявили выраженную положительную тенденцию провирусной нагрузки в динамике эксперимента, что свидетельствует о развитии у них продуктивной BLV-инфекции.

Таблица 2 – Динамика антителообразования экспериментальных крыс

№ образца

Титр АТ в динамике эксперимента, EU

3 месяца после инфекции

6 месяцев после инфекции

9 месяцев после инфекции

12 месяцев после инфекции

1

51,9

42,2

49,2

30,4

2

95,4

64,1

52,7

89,2

3

86,1

80,9

87,6

92,4

4

65,1

70,4

55,2

78,5

5

62,9

64,1

78,5

90,3

6

74,7

66,2

72,9

81,3

7

45,9

57,2

60,8

72,2

8

71,1

57,9

81,1

85,4

9

44,4

38,1

54,6

74,4

10

91,7

73,7

94,4

89,5

11

57,2

73,5

84,1

91,7

12

49,7

36,7

63,6

71,4

Примечание: 1-12 – порядковый номер животных экспериментальной группы

Как следует из данных, представленных в таблице 2, титр АТ в сыворотке крови экспериментальных крыс варьировал в значительных пределах. При этом у большинства животных была отмечена волнообразная тенденция: на 6 месяц после заражения титр АТ несколько снижался, затем отмечалась положительная динамика антителообразования. Отрицательная динамика антителообразования была отмечена только у крысы №1, что, вероятно, обусловлено невысокой провирусной нагрузкой у данной особи в течение эксперимента.

Исследование инфекционности адаптированного в организме лабораторных животных возбудителя энзоотического лейкоза крупного рогатого скота осуществляли по двум направлениям. Во-первых, воспроизводя перезаражение интактных крыс кровью инфицированных, а, во-вторых, исследовали потомство инфицированных крыс с последующим определением у них динамики провирусной нагрузки и антителообразования. Как следует из данных таблицы 3, перезаражение интактных крыс кровью инфицированных животных имело положительный результат. В 50 % случаев динамика инфекции при этом имела выраженную положительную тенденцию. За 6 месяцев наблюдения в данной группе животных элиминации возбудителя не произошло, что является свидетельством инфекционности адаптированного в организме крыс BLV для животных этого вида. Динамика антителообразования интактных крыс при перезаражении их кровью инфицированных BLV животных в 50 % случаев была резко положительной, однако находилась в обратной корреляции с динамикой провирусной нагрузки у данных животных, что объясняется снижением титра АТ при высокой провирусной нагрузке, а также в силу того, что иммунная реакция, по данным ряда исследователей, при   BLV-инфекции развивается по типу торможения.

Таблица 3 – Динамика инфекционного процесса крыс при внутривидовой передаче BLV путем парентерального заражения

№ образца

Титр АТ в динамике эксперимента, EU

Цикл выхода кривой за пороговую линию

3 месяца после инфекции

6 месяцев после инфекции

3 месяца после инфекции

6 месяцев после инфекции

1*

49,2

71,6

28

15

2*

95,1

79,2

5

15

3*

35,1

66,4

30

19

4*

83,6

69,1

8

21

К+

х

х

17

11

К-

х

х

-

-

Примечание: 1*-4* – интактные крысы, перезараженные кровью инфицированных животных; К+ – положительный контроль ПЦР; К- – отрицательный контроль ПЦР; х – исследования не проводились

Таблица 4 – Динамика инфекционного процесса крыс при внутривидовой передаче BLV от матерей потомству

№ образца

Титр АТ в динамике эксперимента, EU

Цикл выхода кривой за пороговую линию

3 месяца после инфекции

6 месяцев после инфекции

3 месяца после инфекции

6 месяцев после инфекции

М1

37,1

59,9

32

12

М2

35,2

65,1

24

19

М3

35,1

39,9

6

6

М4

43,6

63,4

22

16

Д1

47,2

59,8

23

14

Д2

35,6

55,3

20

8

Д3

39,4

51,2

30

21

Д4

33,8

56,7

27

17

К+

х

х

17

11

К-

х

х

-

-

Примечание: М1-4 – потомство экспериментальных крыс (самцы); Д1-4 – потомство экспериментальных крыс (самки); К+ – положительный контроль ПЦР; К- – отрицательный контроль ПЦР; х – исследования не проводились

Как свидетельствуют представленные в таблице 4 данные, рандомно выбранное потомство экспериментальных животных, содержавшееся совместно с родителями, также было инфицировано BLV, что может свидетельствовать, как о возможной трансплацентарной передаче вируса, так и о постнатальной инфекции молоком. Причем у всех без исключения животных динамика провирусной нагрузки была положительной в той или иной мере, что можно аргументировать снижением иммунного статуса потомства BLV-инфицированных животных, провоцирующим более злокачественное течение инфекционного процесса у них по сравнению с родительским поголовьем. Динамика антителообразования у потомства инфицированных крыс также была положительной. Только у одной особи, М3, она оставалась фактически на одном уровне, что коррелировало с высокой провирусной нагрузкой, вероятно, и послужившей тому причиной.

Заключение. Таким образом, результаты проведенных исследований выявили, что BLV-инфекция крыс характеризуется выраженной прогрессивной динамикой, элиминации возбудителя не происходит, животные проявляют ответную реакцию в виде антителообразования, что характеризует продуктивную BLV инфекцию у них. Следовательно, белые лабораторные крысы линии Wistar могут быть использованы в качестве лабораторной модели при изучении эффектов возбудителя лейкоза крупного рогатого скота in vivo. При этом пассаж в организме лабораторных крыс не приводит к снижению инфекционности BLV для лабораторных животных, а у потомства зараженных крыс отмечается более агрессивное развитие инфекционного процесса, чем у их родителей.

Резюме

Изучена динамика антителообразования и провирусной нагрузки при экспериментальной BLV -инфекции лабораторных крыс. Установлено, что при парентеральном заражении BLV у крыс линии Wistar развивается продуктивная инфекция, элиминации возбудителя не происходит, животные проявляют ответную реакцию в виде антителообразования. Следовательно, белые лабораторные крысы линии Wistar могут быть использованы в качестве лабораторной модели при изучении эффектов возбудителя лейкоза крупного рогатого скота in vivo. При этом пассаж в организме лабораторных крыс не приводит к снижению инфекционности BLV для лабораторных животных, а у потомства зараженных крыс отмечается более агрессивное развитие инфекционного процесса, чем у их родителей.

Список литературы Динамика провирусной нагрузки и антителообразования при экспериментальной BLV-инфекции у крыс

  • Батенёва, Н. В. Особенности течения лейкозного процесса у носителей 4-го и 7-го генотипов BLV / Н. В. Батенёва // Инновации и продовольственная безопасность. - 2015. - № 4 (10). - С. 5-8.
  • Гематологические показатели крыс линии Wistar при экспериментальной BLV-инфекции / Е. С. Красникова, А. В. Красников, Р. В. Радионов [и др.] // Инновации и продовольственная безопасность. - 2018. - № 4 (22). - С. 138145.
  • Донник, И. М. Характеристика молекулярно-генетической структуры вируса лейкоза, циркулирующего в популяции крупного рогатого скота в разных регионах российской федерации / И. М. Донник // Таврический вестник аграрной науки. - 2013. - № 1. - С. 97-101.
  • Красников, А. В. Цитоморфологическая характеристика клеточных элементов селезенки лабораторных крыс при экспериментальной BLV-инфекции / А. В. Красников, Е. С. Красникова, А. С. Рыхлов // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. - 2021. - № 2 (196). - С. 84-91.
  • Межвидовая передача вируса лейкоза крупного рогатого скота в эксперименте / М. И. Гулюкин, Н. Г. Козырева, Л. А. Иванова [и др.] // Вопросы вирусологии. - 2015. - № 60 (5). - С. 32-37.
  • Bovine leukemia virus discovered in human blood / G. C. Buehring, A. DeLaney, H. M. Shen [et al.] // BMC Infect. Dis. - 2019. - № 19. - Р. 297.
  • Kinetic Study of BLV Infectivity in BLV Susceptible and Resistant Cattle in Japan from 2017 to 2019 / L. Bai, L. Borjigin, H. Sato [et al.] // Pathogens. - 2021. - № 10(10). - Р. 1281.
Еще
Статья научная