Динамика провирусной нагрузки и антителообразования при экспериментальной BLV-инфекции у крыс
Автор: Красникова Е.С., Красников А.В., Светозарова А.Ю.
Статья в выпуске: 1 т.253, 2023 года.
Бесплатный доступ
Изучена динамика антителообразования и провирусной нагрузки при экспериментальной BLV-инфекции лабораторных крыс. Установлено, что при парентеральном заражении BLV у крыс линии Wistar развивается продуктивная инфекция, элиминации возбудителя не происходит, животные проявляют ответную реакцию в виде антителообразования. Следовательно, белые лабораторные крысы линии Wistar могут быть использованы в качестве лабораторной модели при изучении эффектов возбудителя лейкоза крупного рогатого скота in vivo. При этом пассаж в организме лабораторных крыс не приводит к снижению инфекционности BLV для лабораторных животных, а у потомства зараженных крыс отмечается более агрессивное развитие инфекционного процесса, чем у их родителей.
Лейкоз крупного рогатого скота, крысы линии wistar, провирусная нагрузка, антителообразование, продуктивная инфекция, инфекционность
Короткий адрес: https://sciup.org/142237098
IDR: 142237098 | DOI: 10.31588/2413_4201_1883_1_253_147
Текст научной статьи Динамика провирусной нагрузки и антителообразования при экспериментальной BLV-инфекции у крыс
Вирус лейкоза крупного рогатого скота (BLV) является этиологическим фактором распространенной во всем мире хронической инфекции, возбудитель которой имеет склонность к расширению своего тропизма, как в отношении отдельных клеток и тканей, так и в отношении круга восприимчивых хозяев [5, 6]. При BLV-инфекции провирусная нагрузка и антителообразование являются основными диагностическими маркерами для определения прогрессирования заболевания и риска передачи инфекции, что имеет определенную корреляцию с генотипом выделенного от животных вируса [1]. Кроме того, недавно появившиеся штаммы BLV могут вызывать более раннее начало злокачественной пролиферации вирус трансформированных клеток, что сопровождается высокой провирусной нагрузкой в инфицированном организме и способствует повышенному риску передачи BLV интактным животным. При этом провирусная нагрузка коррелирует не только с инфекцией BLV, но и с прогрессированием заболевания, являясь важным показателем оценки стадии инфекции [7]. Основной иммуноген вируса, гликопротеид Gp51, индуцирующий образование вируснейтрализующих антител в зараженном организме, не только детерминирует цикл репродукции BLV, но так как служит основным фактором инфекционности вириона и прогностическим маркером динамики и стадийности заболевания [3].
Ранее проведенные исследования показали высокую восприимчивость белых крыс линии Wistar к инфекции BLV [2, 4]. Однако, несмотря на характерные для лейкозного процесса гематологические, иммунологические и цитологические изменения в организме лабораторных крыс при экспериментальной BLV -инфекции, вопрос изучения динамики инфекционного процесса у них является актуальным. Комплексное исследование антителообразования и провирусной нагрузки в зараженном организме в динамике могут охарактеризовать тип инфекции: абортивная, продуктивная, персистирующая, латентная или инаппарантная, что позволит достоверно судить о возможности использования белых лабораторных крыс в качестве лабораторной модели для изучения эффектов BLV in vivo и определения эффективности противовирусных превентивных и терапевтических препаратов, разработка которых является актуальной тенденцией современной вирусологии и лейкозологии.
В связи с выше сказанным, целью настоящих исследований стало изучение динамики провирусной нагрузки и антителообразования в организме белых лабораторных крыс линии Wistar при экспериментальной BLV -инфекции.
Материал и методы исследований. В качестве объекта исследования выступили 6-и месячные белые лабораторные крысы линии Wistar (n=12), которые были парентерально инфицированы лимфоцитами BLV-положительных коров по оригинальной авторской методике (патент РФ № 2615465). Животных содержали в стандартных клетках группами по 3 самки и 1 самцу на полноценном рационе при свободном доступе к воде, в соответствии с ГОСТом 33216-2014. Кровь отбирали из сердца крыс в пробирки для гематологических исследований (ЭДТА-К3) и пробирки с активатором образования кровяного сгустка (SiO2) четырехкратно в течение года с интервалом три месяца. Исследования крови и ее сыворотки проводили в день получения. Провирус в крови экспериментальных крыс определяли методом полимеразной цепной реакции (ПЦР) в реальном времени, а динамику антителообразования изучали методом иммуноферментного анализа (ИФА). Для экстракции и очистки нуклеиновых кислот из крови экспериментальных животных применяли комплект реагентов для выделения ДНК из клинического материала «ДНК-сорб-B», а динамику провирусной нагрузки определяли с использованием тест-системы «ЛЕЙКОЗ» (ИнтерЛабСервис, Россия) на амплификаторе CFX 96 (BioRad, США).
Динамику антителообразования изучали с помощью набора для выявления антител к вирусу лейкоза крупного рогатого скота производства ООО «Ветбтохим» (Москва, Россия) на биохимическом и ИФА анализаторе автоматическом Chem Well 2910 (Awareness Technology, США).
Для изучения инфекционности адаптированного в организме крыс вируса, осуществляли перезаражение интактных крыс кровью инфицированных. Затем определяли у них динамику провирусной нагрузки и антителообразования. Кроме того, проводили аналогичные исследования потомства инфицированных крыс для установления возможности передачи возбудителя от родителей потомству горизонтальным и вертикальным путями.
Результат исследований. В результате проведенных исследований были определены титры антител у экспериментальных животных и провирусная нагрузка в динамике эксперимента, характеризующие тип инфекционного процесса, индуцированного у них путем парентерального введения BLV -инфицированных лимфоцитов крови. Полученные в ходе эксперимента данные представлены в таблицах 1-4.
Таблица 1 – Результаты ПЦР-скрининга экспериментальных крыс
№ образца |
Цикл выхода кривой за пороговую линию |
|||
3 месяца после инфекции |
6 месяцев после инфекции |
9 месяцев после инфекции |
12 месяцев после инфекции |
|
1 |
30 |
26 |
25 |
27 |
2 |
16 |
16 |
13 |
12 |
3 |
11 |
11 |
17 |
13 |
4 |
22 |
20 |
10 |
9 |
5 |
15 |
14 |
19 |
18 |
6 |
15 |
18 |
12 |
7 |
7 |
15 |
19 |
30 |
31 |
8 |
11 |
17 |
15 |
5 |
9 |
33 |
28 |
24 |
14 |
10 |
21 |
11 |
9 |
6 |
11 |
21 |
27 |
32 |
33 |
12 |
13 |
16 |
13 |
8 |
К+ |
13 |
15 |
17 |
11 |
К- |
- |
- |
- |
- |
Примечание: 1-12 – номер животных экспериментальной группы; К+ – положительный контроль ПЦР; К- – отрицательный контроль ПЦР
Как следует из представленных в таблице 1 данных, через 3 месяца после инфицирования по оригинальной авторской методике все крысы, в той или иной степени, были носителями провируса BLV. Крысы № 7 и 11 показали отрицательную динамику провирусной нагрузки, однако на окончание эксперимента полной элиминации возбудителя у них не было отмечено. У крысы № 1 провирусная нагрузка была не высокой и в динамике эксперимента не имела выраженной положительной тенденции. Остальные 9 экспериментальных животных проявили выраженную положительную тенденцию провирусной нагрузки в динамике эксперимента, что свидетельствует о развитии у них продуктивной BLV-инфекции.
Таблица 2 – Динамика антителообразования экспериментальных крыс
№ образца |
Титр АТ в динамике эксперимента, EU |
|||
3 месяца после инфекции |
6 месяцев после инфекции |
9 месяцев после инфекции |
12 месяцев после инфекции |
|
1 |
51,9 |
42,2 |
49,2 |
30,4 |
2 |
95,4 |
64,1 |
52,7 |
89,2 |
3 |
86,1 |
80,9 |
87,6 |
92,4 |
4 |
65,1 |
70,4 |
55,2 |
78,5 |
5 |
62,9 |
64,1 |
78,5 |
90,3 |
6 |
74,7 |
66,2 |
72,9 |
81,3 |
7 |
45,9 |
57,2 |
60,8 |
72,2 |
8 |
71,1 |
57,9 |
81,1 |
85,4 |
9 |
44,4 |
38,1 |
54,6 |
74,4 |
10 |
91,7 |
73,7 |
94,4 |
89,5 |
11 |
57,2 |
73,5 |
84,1 |
91,7 |
12 |
49,7 |
36,7 |
63,6 |
71,4 |
Примечание: 1-12 – порядковый номер животных экспериментальной группы
Как следует из данных, представленных в таблице 2, титр АТ в сыворотке крови экспериментальных крыс варьировал в значительных пределах. При этом у большинства животных была отмечена волнообразная тенденция: на 6 месяц после заражения титр АТ несколько снижался, затем отмечалась положительная динамика антителообразования. Отрицательная динамика антителообразования была отмечена только у крысы №1, что, вероятно, обусловлено невысокой провирусной нагрузкой у данной особи в течение эксперимента.
Исследование инфекционности адаптированного в организме лабораторных животных возбудителя энзоотического лейкоза крупного рогатого скота осуществляли по двум направлениям. Во-первых, воспроизводя перезаражение интактных крыс кровью инфицированных, а, во-вторых, исследовали потомство инфицированных крыс с последующим определением у них динамики провирусной нагрузки и антителообразования. Как следует из данных таблицы 3, перезаражение интактных крыс кровью инфицированных животных имело положительный результат. В 50 % случаев динамика инфекции при этом имела выраженную положительную тенденцию. За 6 месяцев наблюдения в данной группе животных элиминации возбудителя не произошло, что является свидетельством инфекционности адаптированного в организме крыс BLV для животных этого вида. Динамика антителообразования интактных крыс при перезаражении их кровью инфицированных BLV животных в 50 % случаев была резко положительной, однако находилась в обратной корреляции с динамикой провирусной нагрузки у данных животных, что объясняется снижением титра АТ при высокой провирусной нагрузке, а также в силу того, что иммунная реакция, по данным ряда исследователей, при BLV-инфекции развивается по типу торможения.
Таблица 3 – Динамика инфекционного процесса крыс при внутривидовой передаче BLV путем парентерального заражения
№ образца |
Титр АТ в динамике эксперимента, EU |
Цикл выхода кривой за пороговую линию |
||
3 месяца после инфекции |
6 месяцев после инфекции |
3 месяца после инфекции |
6 месяцев после инфекции |
|
1* |
49,2 |
71,6 |
28 |
15 |
2* |
95,1 |
79,2 |
5 |
15 |
3* |
35,1 |
66,4 |
30 |
19 |
4* |
83,6 |
69,1 |
8 |
21 |
К+ |
х |
х |
17 |
11 |
К- |
х |
х |
- |
- |
Примечание: 1*-4* – интактные крысы, перезараженные кровью инфицированных животных; К+ – положительный контроль ПЦР; К- – отрицательный контроль ПЦР; х – исследования не проводились
Таблица 4 – Динамика инфекционного процесса крыс при внутривидовой передаче BLV от матерей потомству
№ образца |
Титр АТ в динамике эксперимента, EU |
Цикл выхода кривой за пороговую линию |
||
3 месяца после инфекции |
6 месяцев после инфекции |
3 месяца после инфекции |
6 месяцев после инфекции |
|
М1 |
37,1 |
59,9 |
32 |
12 |
М2 |
35,2 |
65,1 |
24 |
19 |
М3 |
35,1 |
39,9 |
6 |
6 |
М4 |
43,6 |
63,4 |
22 |
16 |
Д1 |
47,2 |
59,8 |
23 |
14 |
Д2 |
35,6 |
55,3 |
20 |
8 |
Д3 |
39,4 |
51,2 |
30 |
21 |
Д4 |
33,8 |
56,7 |
27 |
17 |
К+ |
х |
х |
17 |
11 |
К- |
х |
х |
- |
- |
Примечание: М1-4 – потомство экспериментальных крыс (самцы); Д1-4 – потомство экспериментальных крыс (самки); К+ – положительный контроль ПЦР; К- – отрицательный контроль ПЦР; х – исследования не проводились
Как свидетельствуют представленные в таблице 4 данные, рандомно выбранное потомство экспериментальных животных, содержавшееся совместно с родителями, также было инфицировано BLV, что может свидетельствовать, как о возможной трансплацентарной передаче вируса, так и о постнатальной инфекции молоком. Причем у всех без исключения животных динамика провирусной нагрузки была положительной в той или иной мере, что можно аргументировать снижением иммунного статуса потомства BLV-инфицированных животных, провоцирующим более злокачественное течение инфекционного процесса у них по сравнению с родительским поголовьем. Динамика антителообразования у потомства инфицированных крыс также была положительной. Только у одной особи, М3, она оставалась фактически на одном уровне, что коррелировало с высокой провирусной нагрузкой, вероятно, и послужившей тому причиной.
Заключение. Таким образом, результаты проведенных исследований выявили, что BLV-инфекция крыс характеризуется выраженной прогрессивной динамикой, элиминации возбудителя не происходит, животные проявляют ответную реакцию в виде антителообразования, что характеризует продуктивную BLV инфекцию у них. Следовательно, белые лабораторные крысы линии Wistar могут быть использованы в качестве лабораторной модели при изучении эффектов возбудителя лейкоза крупного рогатого скота in vivo. При этом пассаж в организме лабораторных крыс не приводит к снижению инфекционности BLV для лабораторных животных, а у потомства зараженных крыс отмечается более агрессивное развитие инфекционного процесса, чем у их родителей.
Резюме
Изучена динамика антителообразования и провирусной нагрузки при экспериментальной BLV -инфекции лабораторных крыс. Установлено, что при парентеральном заражении BLV у крыс линии Wistar развивается продуктивная инфекция, элиминации возбудителя не происходит, животные проявляют ответную реакцию в виде антителообразования. Следовательно, белые лабораторные крысы линии Wistar могут быть использованы в качестве лабораторной модели при изучении эффектов возбудителя лейкоза крупного рогатого скота in vivo. При этом пассаж в организме лабораторных крыс не приводит к снижению инфекционности BLV для лабораторных животных, а у потомства зараженных крыс отмечается более агрессивное развитие инфекционного процесса, чем у их родителей.
Список литературы Динамика провирусной нагрузки и антителообразования при экспериментальной BLV-инфекции у крыс
- Батенёва, Н. В. Особенности течения лейкозного процесса у носителей 4-го и 7-го генотипов BLV / Н. В. Батенёва // Инновации и продовольственная безопасность. - 2015. - № 4 (10). - С. 5-8.
- Гематологические показатели крыс линии Wistar при экспериментальной BLV-инфекции / Е. С. Красникова, А. В. Красников, Р. В. Радионов [и др.] // Инновации и продовольственная безопасность. - 2018. - № 4 (22). - С. 138145.
- Донник, И. М. Характеристика молекулярно-генетической структуры вируса лейкоза, циркулирующего в популяции крупного рогатого скота в разных регионах российской федерации / И. М. Донник // Таврический вестник аграрной науки. - 2013. - № 1. - С. 97-101.
- Красников, А. В. Цитоморфологическая характеристика клеточных элементов селезенки лабораторных крыс при экспериментальной BLV-инфекции / А. В. Красников, Е. С. Красникова, А. С. Рыхлов // Вестник Алтайского государственного аграрного университета. - 2021. - № 2 (196). - С. 84-91.
- Межвидовая передача вируса лейкоза крупного рогатого скота в эксперименте / М. И. Гулюкин, Н. Г. Козырева, Л. А. Иванова [и др.] // Вопросы вирусологии. - 2015. - № 60 (5). - С. 32-37.
- Bovine leukemia virus discovered in human blood / G. C. Buehring, A. DeLaney, H. M. Shen [et al.] // BMC Infect. Dis. - 2019. - № 19. - Р. 297.
- Kinetic Study of BLV Infectivity in BLV Susceptible and Resistant Cattle in Japan from 2017 to 2019 / L. Bai, L. Borjigin, H. Sato [et al.] // Pathogens. - 2021. - № 10(10). - Р. 1281.