Филогенетический анализ российских изолятов вируса инфекционной анемии лошадей с использованием оптимизированной двухраундовой ПЦР

Бесплатный доступ

Инфекционная анемия лошадей (ИНАН) - болезнь однокопытных, вызываемая вирусом рода Lentivirus семейства Retroviridae. Заболевание широко распространено, и его эпизоотии зарегистрированы практически на всех континентах земного шара. В Российской Федерации из года в год при плановых исследованиях на присутствие антител к вирусу ИНАН выявляются животные, серопозитивные в реакции диффузионной преципитации (РДП). В настоящее время опасность распространения вируса ИНАН признается во всем мире, а его контролю уделяется большое внимание, в связи с чем проводятся многочисленные исследования по выявлению вируса, определению его молекулярно-генетических характеристик и происхождения. В настоящей работе представлены данные по разработке тест-системы на основе ПЦР, позволяющей не только выявлять геном вируса ИНАН в различных образцах биологического материала, но и проводить дальнейшее секвенирование фрагментов генома этого инфекционного агента. Геном вируса ИНАН состоит из трех основных генов - gag, pol, env (распложены в направлении 5'→3'), из которых наиболее полезным маркером для изучения генетического разнообразия и филогенетических взаимоотношений между различными штаммами вируса ИНАН считается gag-ген, необходимый для внутриклеточной сборки и выхода вируса из клетки. С целью проведения молекулярно-генетических исследований нами была оптимизирована двухраундовая ПЦР без этапа обратной транскрипции и рассчитаны специфические олигонуклеотидные праймеры для второго раунда реакции, фланкирующие участок gag-гена провирусной ДНК вируса ИНАН размером 1018 п.н. В результате проведенных изысканий также были определены нуклеотидные последовательности и филогенетические отношения ранее выделенного отечественного штамма вируса ИНАН и двух современных изолятов, выявленных на территории нашей страны. Полученные данные позволили отнести штамм 3-К-ВНИИТИБП-ВИЭВ к группе североамериканского происхождения (гомология 98 %), а изоляты Нижний Новгород-2011 и Омск-2012 - к группе европейских (гомология 82-83 %). Таким образом, разработанная нами система идентификации вируса ИНАН с помощью ПЦР и филогенетического анализа позволяет устанавливать принадлежность выделяемых изолятов к определенной геногруппе и, следовательно, предположить их географическое происхождение. Эта информация необходима для определения источника и путей распространения возбудителя с целью прогнозирования эпизоотической ситуации и планирования мер борьбы с болезнью.

Еще

Инан, пцр, филогенетический анализ

Короткий адрес: https://sciup.org/142133644

IDR: 142133644   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2015.6.803rus

Список литературы Филогенетический анализ российских изолятов вируса инфекционной анемии лошадей с использованием оптимизированной двухраундовой ПЦР

  • Архипов Н.И., Бакулов И.А., Соковых Л.И. Медленные инфекции животных. М., 1987.
  • Юров К.П., Заблоцкий В.Т., Косминков Н.Е. Вирусные болезни лошадей. М., 2010.
  • Nagarajan M.M., Simard C. Detection of horses infected naturally with equine infectious anemia virus by nested polymerase chain reaction. J. Virol. Methods, 2001, 94: 97-109 ( ) DOI: 10.1016/S0166-0934(01)00283-X
  • Leroux C., Cadoré J.L., Montelaro R.C. Equine Infectious Anemia Virus (EIAV): what has HIV's country cousin got to tell us? Vet. Res., 2004, 35(4): 485-512 ( ) DOI: 10.1051/vetres:2004020
  • Sellon D.C., Fuller F.J., McGuire T.C. The immunopathogenesis of equine infectious anemia virus. Virus Res., 1994, 32(2): 111-138 ( ) DOI: 10.1016/0168-1702(94)90038-8
  • Инфекционная патология животных (в 2 т.)/Под ред. А.Я. Самуйленко, Б.В. Соловьева, Е.А. Непоклонова, Е.С. Воронина. М., 2006.
  • Сергеев B.A., Непоклонов Е.А., Алипер T.И. Вирусы и вирусные вакцины. М., 2007.
  • Cook R.F., Leroux C., Issel C.J. Equine infectious anemia and equine infectious anemia virus in 2013: а review. Vet. Microbiol., 2013, 167(1-2): 181-204 ( ) DOI: 10.1016/j.vetmic.2013.09.031
  • Dong J.B., Zhu W., Cook F.R., Goto Y., Horii Y., Haga T. Identification of a novel equine infectious anemia virus field strain isolated from feral horses in southern Japan. J. Gen. Virol., 2013, 94: 360-365 ( ) DOI: 10.1099/vir.0.047498-0
  • Fagerness A.J., Flaherty M.T., Perry S.T., Jia B., Payne S.L., Fuller F.J. The S2 accessory gene of equine infectious anemia virus is essential for expression of disease in ponies. Virology, 2006, 349(1): 220-230 ( ) DOI: 10.1016/j.virol.2005.12.041
  • Payne S.L., La Celle K., Pei X.F., Qi X.M., Shao H., Steagall W.K., Perry S., Fuller F. Long terminal repeat sequences of equine infectious anaemia virus are a major determinant of cell tropism. J. Gen. Virol., 1999, 80: 755-759 ( ) DOI: 10.1099/0022-1317-80-3-755
  • Ataseven V.S., Arslan H.H. Equine infectious anemia in mules, donkeys, and horses: Epidemiologic studies in the different geographic regions of Turkey. Journal of Equine Veterinary Science, 2005, 25(10): 439-441 ( ) DOI: 10.1016/j.jevs.2005.09.007
  • Capomaccio S., Willand Z.A., Cook S.J., Issel C.J., Santos E.M., Reis J.K., Cook R.F. Detection, molecular characterization and phylogenetic analysis of full-length equine infectious anemia (EIAV) gag genes isolated from Shackleford Banks wild horses. Vet. Microbiol., 2012, 157: 320-332 ( ) DOI: 10.1016/j.vetmic.2012.01.015
  • Cappelli K., Capomaccio S., Cook F.R., Felicetti M., Marenzoni M.L., Coppola G., Verini-Supplizi A., Coletti M., Passamonti F. Molecular detection, epidemiology, and genetic characterization of novel European field isolates of equine infectious anemia virus. J. Clin. Microbiol., 2011, 4(1): 27-33 ( ) DOI: 10.1128/JCM.01311-10
  • Cook S.J., Cook R.F., Montelaro R.C., Issel C.J. Differential responses of Equus caballus and Equus asinus to infection with two pathogenic strains of equine infectious anemia virus. Vet. Microbiol., 2001, 79(2): 93-109 ( ) DOI: 10.1016/S0378-1135(00)00348-5
  • Manual of diagnostic tests and vaccines for terrestrial animals. Chapter 2. 5. 6. Equine infectious anaemia, 2013 (http://www.oie.int/international-standard-setting/terrestrial-manual/access-online).
  • Capomaccio S., Cappelli K., Cook R.F., Nardi F., Gifford R., Maren-zoni M.L., Passamonti F. Geographic structuring of global EIAV isolates: a single origin for New World strains? Virus Res., 2012, 163(2): 656-659 ( ) DOI: 10.1016/j.virusres.2011.11.011
  • List of countries by disease situation, 2015 (http://www.oie.int/wahis_2/pu-blic/wahid.php/Diseaseinformation/statuslist).
  • Bicout D.J., Carvalho R., Chalvet-Monfray K., Sabatier P. Distribution of equine infectious anemia in horses in the north of Minas Gerais State, Brazil. Journal of Veterinary Diagnostic Investigation, 2006, 18(5): 479-482 ( ) DOI: 10.1177/104063870601800511
  • Pagamjav O., Kobayashi K., Murakami H., Tabata Y., Miura Y., Boldbaatar B., Sentsui H. Serological survey of equine viral diseases in Mongolia. Microbiol. Immunol., 2011, 55(4): 289-292 ( ) DOI: 10.1111/j.1348-0421.2011.00312.x
  • В Омской области среди лошадей началась инфекционная анемия. Россельхознадзор, 2015 (http://www.fsvps.ru/fsvps/press/4175.html).
  • Усикова Т.Н., Сергеева М.И. Инфекционная анемия лошадей в Республике Хакасия. В сб.: Проблемы развития АПК Саяно-Алтая. Абакан, 2008: 101-102.
  • Detailed country(ies) disease incidence, 2015 (http://www.oie.int/wa-his_2/public/wahid.php/Diseaseinformation/statusdetail).
  • Tamura K., Peterson D., Peterson N., Stecher G., Nei M., Kumar S. MEGA5: Molecular evolutionary genetics analysis using maximum likelihood, evolutionary distance, and maximum parsimony methods. Mol. Biol. Evol., 2011, 28(3): 2731-2739 ( ) DOI: 10.1093/molbev/msr121
  • Герасимова Н.Н., Колбасова О.Л., Янжиева Д.В., Конвисарева Т.С., Еремец В.И. Использование серологических и молекулярно-генетических методов при исследовании на ИНАН проб от однокопытных животных Российской Федерации. В сб.: Научные основы производства и обеспечения качества биологических препаратов для АПК. Щелково, 2014: 96-100.
Еще
Статья научная