Физиолого-биохимические характеристики клеточной культуры Saussurea orgaadayi V. Khan. and Krasnob. при воздействии мета-хлорбензгидрилмочевины

Автор: Головацкая И.Ф., Резниченко А.Е., Лаптев Н.И.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Культуры in vitro

Статья в выпуске: 3 т.56, 2021 года.

Бесплатный доступ

Мета-хлорбензгидрилмочевина (МХБМ) - индуктор монооксигеназной системы человека, ключевые ферменты которой относятся к суперсемейству цитохромов Р-450 (CYP). В настоящее время отсутствуют сведения о роли МХБМ в регуляции жизнедеятельности растений, однако показано участие CYP в превращении вторичных метаболитов, например флавоноидов (Фл), и большинства фитогормонов. Горькуша оргадаай ( Saussurea orgaadayi V. Khan. and Krasnob.) - малоизученный вид растений. Ее клеточная культура, в соответствии с нашими данными, 2-кратно увеличивает суммарное количество эндогенных Фл при переходе от экспоненциального роста в стационарную фазу. В настоящем исследовании впервые показаны статистически значимые (p £ 0,05) различия в ответных ростовых реакциях каллусной культуры S. orgaadayi на действие МХБМ в разных концентрациях. Выявлено, что изменение ростового индекса по сырой и сухой массе обусловлено изменением объема и формы клеток, а также частоты встречаемости разных групп клеток. Впервые исследована динамика содержания флавоноидов, сопровождающая изменения роста культуры под влиянием МХБМ. Целью работы было определение роли мета-хлорбензгидрилмочевины в накоплении флавоноидов и изменчивости цитоморфологических характеристик (линейных размеров, объема и формы клеток, частоты встречаемости разных групп клеток, ростового индекса по сырой и сухой биомассе каллуса) каллусной культуры горькуши оргадаай. Каллусную культуру, полученную на основе семядольных эксплантов из стерильных проростков, многократно пассировали на модифицированной агаризованной питательной среде Мурасиге-Скуга (МС) с добавлением сахарозы, витаминов и регуляторов роста (0,8 мг/л 2,4-дихлорфеноксиуксусной кислоты и 0,5 мг/л 6-бензинаминопурина). Культуру выращивали в темноте при температуре 22-24 °С на среде МС с добавлением регуляторов роста и МХБМ (ООО «Синтегал», Россия) в концентрациях 0,01; 0,1; 1; 10; 100 мкМ. В контроле МХБМ не вносили. Продолжительность субкультивирования составила 30 сут, 2/3 растительного материала использовали для определения сырой и сухой биомассы с последующим выделением флавоноидов, 1/3 материала фиксировали в растворе Кларка в течение 2 сут. Для приготовления микропрепаратов каллусную культуру мацерировали в 3 н. растворе соляной кислоты при постоянном встряхивании до получения однородной суспензии клеток. Цитофотометрический анализ осуществляли с помощью световой микроскопии (видеокамера Moticam 2300, «Motic», Испания) с программным обеспечением. Определяли размеры 100 клеток для каждого варианта, оценивали их форму, вычисляли объем. Для расчета ростового индекса (РИ) определяли начальную (начало субкультивирования, М0) и конечную сырую или сухую массу каллусов (на 30-е сут субкультивирования, М30) и выражали в процентах к контролю: РИ = (М30 - М0)/М0. Количественное определение содержания суммы Фл в каллусной культуре осуществляли на основе их комплексообразования с хлоридом алюминия и последующего измерения оптической плотности окрашенных растворов (спектрофотометр UV-1650, «Shimadzu Corp.», Япония). В результате исследований установлено дозозависимое действие МХБМ на рост клеток за счет их деления (при 0,1 мкМ) и растяжения (1-100 мкМ), которое сопровождалось увеличением РИсыр и РИсух каллусной культуры соответственно в 2,1-3,5 и 1,5-2,9 раза (р сыр, отмеченное на среде с 1 мкМ МХБМ, происходило на фоне снижения суммы Фл на 83 %. Препарат МХБМ можно использовать в растительной биотехнологии в качестве модулятора роста клеток каллусных культур за счет снижения содержания ингибирующих рост метаболитов. Для активации клеточного деления наиболее предпочтительна доза 0,1 мкм МХБМ, тогда как для изменения содержания Фл, 2-кратно увеличивающих биомассу культуры, следует применять 100 мкМ МХБМ.

Еще

Saussurea orgaadayi, клеточная культура, мета-хлорбензгидрилмочевина, морфогенез, флавоноиды

Короткий адрес: https://sciup.org/142231373

IDR: 142231373   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2021.3.602rus

Список литературы Физиолого-биохимические характеристики клеточной культуры Saussurea orgaadayi V. Khan. and Krasnob. при воздействии мета-хлорбензгидрилмочевины

  • Nakayama T., Takahashi S., Waki T. Formation of flavonoid metabolons: functional significance of protein-protein interactions and impact on flavonoid chemodiversity. Frontiers in Plant Science, 2019, 10: 821 (doi: 10.3389/fpls.2019.00821).
  • Ayabe S., Akashi T. Cytochrome P450s in flavonoid metabolism. Phytochemistry Reviews, 2006, 5: 271-282 (doi: 10.1007/s11101-006-9007-3).
  • Falcone-Ferreyra M.L., Rius S.P., Casati P. Flavonoids: biosynthesis, biological functions, and biotechnological applications. Frontiers in Plant Science, 2012, 3: 222 (doi: 10.3389/fpls.2012.00222).
  • Mouradov A., Spangenberg G. Flavonoids: a metabolic network mediating plants adaptation to their real estate. Frontiers in Plant Science, 2014, 5: 620 (doi: 10.3389/fpls.2014.00620).
  • Головацкая И.Ф., Бойко Е.В., Видершпан А.Н., Лаптев Н.И. Возрастные морфофизиологические и биохимические изменения у растений Lactuca sativa L. под влиянием селена и света разной интенсивности. Сельскохозяйственная биология, 2018, 53(5): 1025-1036 (doi: 10.15389/agrobiology.2018.5.1025rus).
  • Kumar V., Suman U., Rubal, Yadav S.K. Flavonoid secondary metabolite: biosynthesis and role in growth and development in plants. In: Recent trends and techniques in plant metabolic engineering /S. Yadav, V. Kumar, S. Singh (eds.). Springer, Singapore, 2018: 19-45 (doi: 10.1007/978-981-13-2251-8_2).
  • Kuhn B.M., Errafi S., Bucher R., Dobrev P., Geisler M., Bigler L., Zažímalová E., Ringli C. 7-rhamnosylated flavonols modulate homeostasis of the plant hormone auxin and affect plant development. The Journal of Biological Chemistry, 2016, 291(10): 5385-5395 (doi: 10.1074/jbc.M115.701565).
  • Белицкий Г.А., Кирсанов К.И., Лесовая Е.А., Якубовская М.Г. Механизмы антиканцерогенного действия флавоноидов. Успехи молекулярной онкологии, 2014, 1(1): 56-68.
  • Ionkova I. Optimization of flavonoid production in cell cultures of Astragalus missouriensis Nutt. (Fabaceae). Pharmacognosy Magazine, 2009, 5(18): 92-97.
  • Indu S., Vijaya L., Meeta B., Jossy V., Naresh C. Production of flavonoids in callus culture of Anthocephalus indicus A. Rich. Asian Journal of Plant Sciences, 2013, 12(1): 40-45 (doi: 10.3923/ajps.2013.40.45).
  • Березина Е.В., Брилкина А.А., Щурова А.В., Веселов А.П. Накопление биомассы и фенольных соединений каллусами Oxycoccus palustris Pers. и O. macrocarpus (Ait.) Pers. в присутствии разных цитокининов. Физиология растений, 2019, 66(1): 35-45 (doi: 10.1134/S0015330318050032).
  • Wang J., Qian J., Yao L., Lu Y. Enhanced production of flavonoids by methyl jasmonate elicitation in cell suspension culture of Hypericum perforatum. Bioresources and Bioprocessing, 2015, 2: 5 (doi: 10.1186/s40643-014-0033-5).
  • Xu J., Wang X., Guo W. The cytochrome P450 superfamily: key players in plant development and defense. Journal of Integrative Agriculture, 2015, 14(9): 1673-1686 (doi: 10.1016/s2095-3119(14)60980-1).
  • Новожеева Т.П., Чурсина И.Э., Новожеева А.В., Саратиков А.С. Влияние бензонала, галонала и галодифа на систему микросомального окисления гепатоцитов в онтогенезе. Химико-фармацевтический журнал, 2004, 38(2): 7-9.
  • Штрыкова В.В., Куксёнок В.Ю., Филимонов В.Д., Галанов А.И. Способ получения мета-хлорбензгидрилмочевины (галодифа) с использованием магнитных наночастиц, модифицированных сульфогруппами. А.с. 2569684 (РФ). МПК С07С 275/24, С07С 273/18. ФГАО УВО ТПУ (РФ). № 2014154126/06. Заявл. 29.12.2014. Опубл. 27.11.2015. Бюл. № 33.
  • Карначук Р.А., Лихачева А.В. Питательная среда для культивирования клеточной культуры SaussureaorgaadayiV. Khan. EtKrasnov. А.с. 2428472 (РФ). МПК C12N 005/02, C12N 005/04. ГОУ ВПО ТГУ (РФ). № 2010118803.Заявл. 05.11.2010.Опубл. 09.10. 2011. Бюл. № 25.
  • Барыкина Р.П., Веселова Т.Д., Девятов А.Г, Джалилова X.X., Ильина Г.М., Чубатова Н.В. Основы микротехнических исследований в ботанике. Справочное руководство. М., 2000.
  • Цельникер Ю.Л. Физиологические основы теневыносливости древесных растений. М., 1978.
  • Государственная фармакопея СССР: Вып. 2. Общие методы анализа. Лекарственное растительное сырье. 11-е изд. М., 1989.
  • Головацкая И.Ф., Бойко Е.В., Резниченко А.Е., Плюснин И.Н. Мелатонин и селен регулируют рост и окислительный статус клеточных культур Saussurea orgaadayi in vitro, полученных от разных эксплантов. Физиология растений, 2020, 67(6): 625-635 (doi: 10.31857/S001533032005005X).
  • Гончарук Е.А., Николаева Т.Н., Назаренко Л.В., Калашникова Е.А., Загоскина Н.В. Ответная реакция культивируемых in vitro клеток Linumgrandiflorum Desf. на действие кадмия и глифосата. Сельскохозяйственная биология, 2018, 53(5): 938-946 (doi: 10.15389/agrobiology.2018.5.938rus).
  • Galati G., Sabzevari O., Wilson J.X., O'Brien P.J. Prooxidant activity and cellular effects of the phenoxyl radicals of dietary flavonoids and other polyphenolics. Toxicology, 2002, 177(1): 91-104 (doi: 10.1016/s0300-483x(02)00198-1).
  • Brunetti C., Di Ferdinando M., Fini A., Pollastri S., Tattini M. Flavonoids as antioxidants and developmental regulators: relative significance in plants and humans. International Journal of Molecular Sciences, 2013, 14(2): 3540-3555 (doi: 10.3390/ijms14023540).
  • Pařízková B., Pernisová M., Novák O. What has been seen cannot be unseen-detecting auxin in vivo. International Journal of Molecular Sciences, 2017, 18(12): 2736 (doi: 10.3390/ijms18122736).
  • Sotelo-Silveira M., Cucinotta M., Chauvin A.-L., Chávez Montes R.A., Colombo L., Marsch-Martínez N., de Folter S. Cytochrome P450 CYP78A9 is involved in Arabidopsis reproductive development. Plant Physiology, 2013, 162(2): 779-799 (doi: 10.1104/pp.113.218214).
  • Макаренко О.А., Левицкий А.П. Физиологические функции флавоноидов в растениях. Физиология и биохимия культурных растений, 2013, 45(2): 108-112.
  • Pourcel L., Routaboul J., Cheynier V., Lepiniec L., Debeaujon I. Flavonoid oxidation in plants: from biochemical properties to physiological functions. Trends in Plant Science, 2007, 12(1): 29-36 (doi: 10.1016/j.tplants.2006.11.006).
  • Червяковский Е.М., Курченко В.П., Костюк В.А. Роль флавоноидов в биологических реакциях с переносом электронов. Труды Белорусского Государственного Университета. Серия: Физиологические, биохимические и молекулярные основы функционирования биосистем, 2009, 1: 9-26.
  • Kim Y.-H., Kim Y., Cho E., Kwak S., Kwon S., Bae J., Lee B., Meen B., Huh G.-H. Alterations in intracellular and extracellular activities of antioxidant enzymes during suspension culture of sweetpotato. Phytochemistry, 2004, 65(17): 2471-2476 (doi: 10.1016/j.phytochem.2004.08.001).
  • Lam P.Y., Zhu F.-Y., Chan W.L., Liu H., Lo C. Cytochrome P450 93G1 is a flavone synthase II that channels flavanones to the biosynthesis of tricin o-linked conjugates in rice. Physiology, 2014, 165(3): 1315-1327 (doi: 10.1104/pp.114.239723).
Еще
Статья научная