Характеристика микромицетного комплекса в подстилке экспериментальных культур сосны скрученной (Pinus contorta dougl.)

Характеристика микромицетного комплекса в подстилке экспериментальных культур сосны скрученной (Pinus contorta dougl.)

Автор: Ковалева В.А., Виноградова Ю.А., Пристова Т.А., Федорков А.Л.

Журнал: Принципы экологии @ecopri

Рубрика: Оригинальные исследования

Статья в выпуске: 2 (48), 2023 года.

Бесплатный доступ

Проведены исследования видового разнообразия культивируемых микромицетов в подстилке 20-летних экспериментальных культур сосны скрученной (Pinus contorta Dougl.). Культуры созданы на землях, вышедших из-под сельскохозяйственного использования. Выделено 17 видов микроскопических грибов из 9 родов. В видовом составе микромицетов выделены характерные для таежных лесов и широко распространенные в лесных экосистемах Севера виды: Penicillium camemberti, Penicillium lanosum, Pseudogymnoascus pannorum, Trichoderma koningii, Umbelopsis vinacea и светлоокрашенный стерильный мицелий. Установлено, что биомасса микроскопических грибов в исследуемых подстилках небольшая и составляет 0.75 мг/г а.с.п., при этом 96 % биомассы приходится на мицелий, 4 % - на споры грибов. Мицелий грибов представлен функционально активными гифами беспряжкового «живого» мицелия длиной 568 м/г а.с.п. В подстилке, формирующейся под культурами сосны скрученной, микромицетный комплекс представлен невысоким видовым разнообразием с высокой долей случайных и редких видов. Отличается функциональной незрелостью, что связано с маломощностью подстилки, заторможенностью процессов минерализации и гумификации.

Еще

Экспериментальные культуры, pinus contorta dougl, лесная подстилка, микромицеты, биологическое разнообразие, микробная биомасса

Короткий адрес: https://sciup.org/147242313

IDR: 147242313   |   DOI: 10.15393/j1.art.2023.13642

Список литературы Характеристика микромицетного комплекса в подстилке экспериментальных культур сосны скрученной (Pinus contorta dougl.)

  • Александрова А. В., Великанов Л. Л., Сидорова И. И. Ключ для определения видов рода Trichoderma // Микология и фитопатология. 2006. Т. 40, вып. 6. С. 457–468.
  • Базы данных CBS . URL: http://www.indexfungorum.org (дата обращения: 18.01.2023).
  • Богатырев Л. Г. Образование подстилок – один из важнейших процессов в лесных экосистемах // Почвоведение. 1996. № 4. С. 501–511.
  • Виноградова Ю. А., Лаптева Е. М., Ковалева В. А., Перминова Е. М. Разнообразие почвенных микромицетов в торфяных мерзлотных почвах южной тундры // Микология и фитопатология. 2022. Т. 56, № 3. С. 155–169.
  • Виноградова Ю. А., Лаптева Е. М., Шергина Н. Н. Функционирование и разнообразие микробных сообществ в почвах сосновых лесов таежной зоны // Сохранение лесных экосистем: проблемы и пути их решения (материалы конференции). Киров, 2017. С. 200–204.
  • Добровольская Т. Г., Звягинцев Д. Г., Чернов И. Ю., Головченко А. В., Зенова Г. М., Лысак Л. В., Манчурова Н. А., Марфенина О. Е., Полянская Л. М., Степанов А. Л., Умаров М. М. Роль микроорганизмов в экологических функциях почв // Почвоведение. 2015. № 9. С. 1087.
  • Егорова Л. Н. Почвенные грибы Дальнего Востока: Гифомицеты . Л.: Наука, 1986. 191 с.
  • Кураков А. В. Методы выделения и характеристика комплексов микроскопических грибов наземных экосистем: Учебное пособие . М.: Макс Пресс, 2001. 92 с.
  • Лиханова И. А., Хабибуллина Ф. М., Кураков А. В. Характеристика растительности и почв, рекультивируемых песчанных пустошей нефтяного месторождения (Коми) // Почвоведение. 2008. № 9. С. 1101–1112.
  • Мальцев Е. И., Дидович С. В., Мальцева И. А. Сезонные изменения сообществ микроорганизмов и водорослей лесных подстилок древесных насаждений в степной зоне // Почвоведение. 2017. № 8. С. 965–972.
  • Мелехов И. С. Интродукция хвойных в лесном хозяйстве // Лесоведение. 1984. № 6. С. 72–78.
  • Мэгарран Э. Экологическое разнообразие и его измерение . М.: Мир, 1992. 161 с.
  • Методы почвенной микробиологии и биохимии / Под ред. Д. Г. Звягинцева. М.: МГУ, 1991. 304 с.
  • Полянская Л. М. Микробиологическая сукцессия в почве : Автореф. дис. ... д-ра биол. наук. M., 1996. 96 с.
  • Раевский Б. В., Пеккоев А. Н. Перспективы выращивания сосны скрученной в Южной Карелии // Инновации и технологии в лесном хозяйстве – 2013: Материалы III Междунар. научно-практ. конф. СПб., 2013. Ч. 2. C. 182–193.
  • Терехова В. А., Семенова Т. А. Структура сообществ микромицетов и их синэкологические взаимодействия с базидиальными грибами в ходе разложения растительных остатков // Микробиология. 2005. Т. 74, № 1. С. 104–110.
  • Феклистов П. А., Бирюков С. Ю., Федяев А. Л. Сравнительные эколого-биологические особенности сосны скрученной и обыкновенной в северной подзоне европейской тайги . Архангельск: Арханг. гос. техн. ун-т, 2008. 118 с.
  • Хабибуллина Ф. М. Почвенная микобиота естественных и антропогенно нарушенных экосистем северо-востока Европейской части России : Дис. ... д-ра биол. наук. Сыктывкар, 2009. 364 с.
  • Хабибуллина Ф. М., Кузнецова Е. Г., Панюков А. Н., Кураков А. В. Почвенная микобиота на начальных этапах посттехногенной сукцессии в подзоне средней тайги // Микология и фитопатология. 2018. № 52 (5). С. 356–364.
  • Хабибуллина Ф. М., Творожникова Т. А. Роль микромицетов в трансформации растительных остатков в ельнике чернично-зеленомошном средней подзоны тайги // Известия высших учебных заведений. Лесной журнал. 2007. № 4. С. 40–47.
  • Элайс Т. С. Североамериканские деревья: Определитель / Под ред. И. Ю. Коропачинского. Новосибирск: Гео, 2014. 959 с.
  • Banning N. C., Gleeson D. B., Grigg A. H., Grant C. D., Andersen G. L., Brodie E. L., Murphy D. V. Soil microbial community successional patterns during forest ecosystem restoration // Applied and environmental microbiology. 2011. No 77 (17). Р. 6158–6164.
  • Domsh K. H., Gams W., Anderson T. H. Compendium of soil fungi. IHW-Verlag, Eshing, 2007. 672 p.
  • Elfving B., Ericsson T., Rosvall O. The introduction of lodgepole pine for wood production in Sweden – a review // Forest Ecology and Management. 2001. No 141 (1–2). P. 15–29.
  • Ellis M. B. Dematiaceous Hyphomycetes. UK. Kew, 1971. 608 p.
  • Fedorkov A., Gutiy L. Performance of lodgepole pine and Scots pine in field trials located in north-west Russia // Silva Fennica. 2017. Vol. 51, No 1. P. 1692. DOI: 10.14214/af. 1692
  • Gaspar M. L., Cabello M. N., Pollero R. et al. Fluorescein diacetete hydrolysis as a measure of fungal biomass in soil // Current Microbiol. 2001. Vol. 42. P. 339–344. URL: https://doi.org/10.1007/s002840010226 (дата обращения: 18.01.2023).
  • Index Fungorum, 2023. URL: https://www.indexfungorum.org/ (дата обращения: 26.06.2023).
  • Kitikidou K. Forest floor nutrient dynamics in chestnut plantation ecosystems // Journal Agricultural Science. 2012. Vol. 4 (4). P. 51–54.
  • Kornejkova M. V. Comparative analysis of number and structure of the complexes of microscopic fungi in tundra and taiga soils in the north of the Кola peninsula // Eurasian Soil Sci. 2018. Vol. 51 (1). P. 86–92. URL: https://doi.org/10.1134/S10 6 4229318010106 (дата обращения: 18.01.2023).
  • Looby C. I., Treseder K. K. Shifts in soil fungi and extracellular enzyme activity with simulated climate change in a tropical montane cloud forest // Soil Biology and Biochemistry. 2018. Vol. 117. Р. 87–96.
  • McIntosh A. C. S., Macdonald S. E., Gundale M. J. Tree species versus regional controls on ecosystem properties and processes: an example using introduced Pinus contorta in Swedesh boreal forests // Can. J. Forest. Res. 2012. No 42. P. 1228–1238.
  • MYCOBANK Database. 2023. URL: https://www.mycobank.org/ (дата обращения: 26.06.2023).
  • Mukhortova L. V., Evgrafova S. Y. Dynamics of organic matter decomposition and microflora composition of forest litter in artificial biogeocenoses // Biology Bulletin. 2005. Vol. 32. P. 609–614.
  • Pitt J. A laboratory guide to common Penicillium species. Commonwealth scientific and industrial research organization. N.S.W., Australia, 1991. 47 p.
  • Ramirez C. Manual and atlas of the Penicillia. Amsterdam; N.-Y.; Oxford: Elsevier Biomedical Press, 1982. 874 p.
  • Thormann M. N. The role of fungi in boreal peatlands // Ecological Studies. 2006. Vol. 188. P. 101–123.
  • Yang B., Qi K., Bhusal D. R., Huang J., Chen W., Wu Q., Pang X. Soil microbial community and enzymatic activity in soil particle-size fractions of spruce plantation and secondary birch forest // European Journal of Soil Biology. 2020. No 99. P. 103–196.
  • Varmola M., Salminen H., Rikala R., Kerkela M. Survival and early development of Lodgepole pine // Scandinavian Journal of Forest Research. 2000. No 15. P. 410–423.
Еще
Статья научная
QR-код для установки приложения SciUp Наведите камеру и скачайте бесплатное приложение SciUp