Холестерин не повышает криозащитную эффективность среды на основе растительных фосфолипидов, используемой для замораживания спермы быка

Автор: Шишова Н.В., Комбарова Н.А., Тараховский Ю.С., Давыдова Г.А., Заломова Л.В., Серая О.Ю., Абилов А.И.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Криопротекторы

Статья в выпуске: 2 т.52, 2017 года.

Бесплатный доступ

В настоящее время для криоконсервации семени сельскохозяйственных животных актуальной задачей остается разработка сред на основе растительных фосфолипидов, не содержащих компонентов животного происхождения. Однако в комплексе растительных липидов, в отличие от желточных, отсутствует холестерин, который играет важную роль в обеспечении криорезистентности. Известно, что обогащение клеточных мембран холестерином усиливает толерантность сперматозоидов быка к охлаждению и замораживанию (E. Mocé с соавт., 2010; E. Mocé с соавт., 2014; M.H. Fayyaz с соавт., 2016). Можно предположить, что включение холестерина в состав безжелточных сред на основе растительных лецитинов способно повысить их криозащитную эффективность. Нами впервые одновременно оценено влияние холестерина на свойства липосом или липидных частиц на основе смеси соевых фосфолипидов и на их криозащитное действие при добавлении в растворы для криоконсервации спермы быка. Цель исследования - определить, как введение холестерина в комплекс растительных липидов повлияет на физические характристики и криопротекторную функцию липидной суспензии. Для этого мы изучили динамический размер липосом и липидных частиц из обработанной ультразвуком смеси холестерина с соевым лецитином (диапазон массовой доли холестерина - 0; 8; 18; 33 и 50 %) и определили выживаемость сперматозоидов быка при замораживании и оттаивании в среде, содержащей такие липидные смеси. О жизнеспособности половых клеток судили по доле сперматозоидов с прямолинейно-поступательным движением (при скорости более 25 мкм/с) сразу после оттаивания и через 5 ч инкубации при 38 °С. Для приготовления суспензии использовали коммерческий лецитин марки LeciPRO 90 («Unitechem Co., Ltd», КНР) и очищенный холестерин, полученный из ланолина («Sigma-Aldrich Co.», США), для озвучивания - ультразвуковой дезинтегратор УЗДН-2Т («НПП Академприбор», Россия; 22 кГц, 60 Вт/см2, 5 мин). Показано, что введение холестерина в состав липосом из коммерческого соевого лецитина LeciPRO 90 в концентрации 18 и 33 % по массе липидов увеличивало размер липосом после ультразвукового дробления. Такие смеси формировали монодисперсную суспензию со средним размером частиц соответственно 66±6 нм и 62±11 нм. Введение холестерина в концентрации 50 % приводило к полному изменению состояния липидной суспензии с образованием сложных структур из фосфолипидно-холестериновых ламелл и кристаллов монгидрата холестерина. В концентрации 8 % холестерин не повышал криозащитную эффективность лецитина, а при 18-50 % она снижалась. При увеличении концентрации холестерина в липидной смеси до 50 % (» 66 моль%) отмечалось некоторое повышение подвижности сперматозоидов относительно минимального значения в варианте с 33 % холестерина. Наиболее вероятная причина негативного воздействия холестерина на криозащитную эффективность липидной суспензии - ухудшение взаимодействия липосом с цитоплазматической мембраной сперматозоида за счет уплотнения упаковки фосфолипидов в липидном бислое.

Еще

Крупный рогатый скот, сперматозоиды, криоконсервация, холестерин, фосфолипиды, липосомы

Короткий адрес: https://sciup.org/142214029

IDR: 142214029   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2017.2.306rus

Список литературы Холестерин не повышает криозащитную эффективность среды на основе растительных фосфолипидов, используемой для замораживания спермы быка

  • Layek S.S., Mohanty T.K., Kumaresan A., Parks J.E. Cryopreservation of bull semen: Evolution from egg yolk based to soybean based extenders. Anim. Reprod. Sci., 2016, 172: 1-9 ( ) DOI: 10.1016/j.anireprosci.2016.04.013
  • Foulkes J.A. The separation of lipoproteins from egg yolk and their effect on the motility and integrity of bovine spermatozoa. J. Reprod. Fert. 1977, 49: 277-284 ( ) DOI: 10.1530/jrf.0.0490277
  • Милованов В.К., Семенова В.А. Криопротекторное действие липопротеинов яичного желтка на устойчивость спермиев сельскохозяйственных животных. Доклады ВАСХНИЛ, 1985, 11: 25-26.
  • Ерохин А.С., Добровольский Г.И. Замораживание семени быков с сухим соевым лецитином. Молочное и мясное скотоводство, 2009, 5: 16-17.
  • Шишова Н.В., Комбарова Н.А., Давыдова Г.А., Серая О.Ю., Миронова Е.А., Абилов А.И., Пашовкин Т.Н., Гахова Э.Н. Исследование криозащитного действия лецитинов растительного происхождения ЛециПРО-С и ЛециПРО-90. Биологические мембраны, 2017, 34(3): 223-230.
  • Darin-Bennett A., White I.G. Influence of the cholesterol content of mammalian spermatozoa on susceptibility to cold-shock. Cryobiology, 1977, 14(4): 466-470 ( ) DOI: 10.1016/0011-2240(77)90008-6
  • Наук В.А. Структура и функции спермиев сельскохозяйственных животных при криоконсервации. Кишинев, 1991.
  • Parks J.E., Lynch D.V. Lipid composition and thermotropic phase behavior of boar, bull, stallion, and rooster sperm membranes. Cryobiology, 1992, 29(2): 255-266 ( ) DOI: 10.1016/0011-2240(92)90024-V
  • Blesbois E., Grasseau I., Seigneurin F. Membrane fluidity and the ability of domestic bird spermatozoa to survive cryopreservation. Reproduction, 2005, 129(3): 371-378 ( ) DOI: 10.1530/rep.1.00454
  • Drokin S.I. Phospholipid distribution and fatty acid composition of phosphatidylcholine and phosphatidylethanolamine in sperm of some freshwater and marine species of fish. Aquatic Living Resources, 1993, 6: 49-56 ( ) DOI: 10.1051/alr:1993005
  • Zidovetzki R., Levitan I. Use of cyclodextrins to manipulate plasma membrane cholesterol content: evidence, misconceptions and control strategies. Biochim. Biophys. Acta, 2007, 1768(6): 1311-1324 ( ) DOI: 10.1016/j.bbamem.2007.03.026
  • Mocé E., Tomás C., Blanch E., Graham J.K. Effect of cholesterol-loaded cyclodextrins on bull and goat sperm processed with fast or slow cryopreservation protocols. Animal, 2014, 8(5): 771-776 ( ) DOI: 10.1017/S1751731114000226
  • Rajoriya J.S., Prasad J.K., Ramteke S.S., Perumal P., Ghosh S.K., Singh M., Pande M., Srivastava N. Enriching membrane cholesterol improves stability and cryosurvival of buffalo spermatozoa. Anim. Reprod. Sci., 2016, 164: 72-81 ( ) DOI: 10.1016/j.anireprosci.2015.11.014
  • Mocé E., Blanch E., Tomás C., Graham J.K. Use of cholesterol in sperm cryopreservation: present moment and perspectives to future. Reprod. Domest. Anim., 2010, 45(Suppl 2): 57-66 ( ) DOI: 10.1111/j.1439-0531.2010.01635.x
  • Fayyaz M.H., Ahmad M., Ahmad N. Survival of buffalo bull spermatozoa: effect on structure and function due to alpha-lipoic acid and cholesterol-loaded cyclodextrin. Andrologia, 2016 ( ) DOI: 10.1111/and.12652
  • Yang S.T., Kreutzberger A.J., Lee J., Kiessling V., Tamm L.K. The role of cholesterol in membrane fusion. Chem. Phys. Lipids, 2016, 199: 136-143 ( ) DOI: 10.1111/j.1439-0531.2010.01635.x
  • Wang Z., Ma Y., Khalil H., Wang R., Lu T., Zhao W., Zhang Y., Chen J., Chen T. Fusion between fluid liposomes and intact bacteria: study of driving parameters and in vitro bactericidal efficacy. Int. J. Nanomed., 2016, 11: 4025-4036 ( ) DOI: 10.2147/IJN.S55807
  • Falck E., Patra M., Karttunen M., Hyvonen M.T., Vattulainen I. Lessons of slicing membranes: Interplay of packing, free area, and lateral diffusion in phospholipid/cholesterol bilayers. Biophys. J., 2004, 87: 1076-1091. ( ) DOI: 10.1529/biophysj.104.041368
  • Национальная технология замораживания и использования спермы племенных быков-производителей/Под ред. Н.М. Решетниковой. М., 2008.
  • Scholfield C.R. Composition of soybean lecithin. J. Am. Oil Chem. Soc., 1981, 58: 889-892 ( ) DOI: 10.1007/BF02659652
  • Овчинников Ю.А. Биоорганическая химия. М, 1987.
  • Huang J., Buboltz J.T., Feigenson G.W. Maximum solubility of cholesterol in phosphatidylcholine and phosphatidylethanolamine bilayers. Biochim. Biophys. Acta, 1999, 1417: 89-100 ( ) DOI: 10.1016/S0005-2736(98)00260-0
  • Feigenson G.W., Buboltz J.T. Ternary phase diagram of dipalmitoyl-PC/dilauroyl-PC/cholesterol: nanoscopic domain formation driven by cholesterol. Biophys. J., 2001, 80: 2775-2788 ( ) DOI: 10.1016/S0006-3495(01)76245-5
  • Ma Y., Wang Z., Zhao W., Lu T., Wang R., Mei Q., Chen T. Enhanced bactericidal potency of nanoliposomes by modification of the fusion activity between liposomes and bacterium. Int. J. Nanomed., 2013, 8(1): 2351-2360 ( ) DOI: 10.2147/IJN.S42617
  • Huang J., Feigenson G.W. A microscopic interaction model of maximum solubility of cholesterol in lipid bilayers. Biophys. J., 1999, 76: 2142-2157 ( ) DOI: 10.1016/S0006-3495(99)77369-8
Еще
Статья научная