Искусственное осеменение маралух с применением различных схем синхронизации половой охоты

Автор: Андрей Вячеславович Боранбаев

Журнал: Вестник Красноярского государственного аграрного университета @vestnik-kgau

Рубрика: Ветеринария и зоотехния

Статья в выпуске: 9, 2021 года.

Бесплатный доступ

Цель исследования – апробировать применяемые схемы синхронизации половой охоты в животноводстве на маралухах. Задачи исследования: подобрать оптимальные стимулирующие препараты и схемы синхронизации полового цикла маралух в период гона. Исследование проводили в ФГБНУ ОС «Навоталицкое» Чарышского района Алтайского края в 2018–2020 гг. Объектом исследования являлись маралухи в возрасте от 5–9 лет, размещенные на время проведения опытов в отдельный парк, без доступа маралов-рогачей. Синхронизацию полового цикла маралух проводили релизинг-гормонами и простогландином (программа Ovsynch), СИДР – Synch схема и синхронизация прогестероном, простагландином и ГСЖК. Апробацию схем осуществляли во время гона (сентябрь), перед осеменением маралух разбили на семь групп по 10 голов. Для искусственного осеменения маралух применяли маноцервикальный метод и криоконсервированную сперму, полученную от маралов-рогачей, с активностью сперматозоидов при оттаивании не ниже 3 баллов. Фиксировали клинические изменения в виде открытия шейки матки у маралух в момент проведения искусственного осеменения. Животные с открытой шейкой матки наблюдались от 20 до 70 % случаев. Результат искусственного осеменения маралух определяли УЗИ-сканированием. У маралух, синхронизированных по схемам Ovsynch и СИДР, наблюдали стельность в 40 % случаях. Контрольная группа маралух и синхронизированная по схеме ПГПГ + ГСЖК на 100 % были яловыми. Клинические признаки в виде открытия шейки матки у маралух не дают однозначных результатов по проведенному искусственному осеменению из-за ряда факторов: стресс, качество спермы и т. д. Апробированные схемы синхронизации половой охоты, применяемые в животноводстве, по наблюдаемым клиническим признакам открытия шейки матки у маралух были эффективны до 80 % случаев, что позволяет применять их в мараловодстве с корректировкой времени проведения искусственного осеменения.

Еще

Маралуха, искусственное осеменение, схема синхронизации, половой цикл, УЗИ-сканирование.

Короткий адрес: https://sciup.org/140257812

IDR: 140257812   |   DOI: 10.36718/1819-4036-2021-9-126-131

Текст научной статьи Искусственное осеменение маралух с применением различных схем синхронизации половой охоты

Введение. Искусственное осеменение – один из путей повышения продуктивности животных. В мараловодстве для проведения искусственного осеменения необходимо проводить синхронизацию половой охоты маралух. Синхронизация позволит контролировать время и количество приведенных в охоту и овуляцию маралух. По литературным данным нет информации о половом цикле маралух. В России искусственным осеменением маралух занимался М.Н. Санкевич, им апробирована схема синхронизации с групповым скармливанием ацетат мегестрола и инъекций сыворотки жеребых кобыл, позволяющая повысить выход приплода в 2 раза [1]. Зарубежные ученые проводили исследования по скармливанию меленгестрола ацетата (синтетический прогестин, вводимый перорально) на коричневом олене (Mazama gouazoubira) для синхронизации эструса. Они утверждают, что задавать препарат можно только индивидуально для контроля точной дозировки, групповой метод скармливания не дает однозначных результатов из-за нарушения эндокринной регуляции [2]. Многие зарубежные исследователи проводят фармакологический метод синхронизации эстрального цикла у оленей с помощь аналогов прогестина в форме вставки (CIDR) или губки (Chronogest) с применением инъекций хорионического гонадотропина лошадей [3, 4].

В свою очередь, развитие искусственного осеменения маралов в России обеспечит переход селекционно-племенной работы отрасли на новый уровень, что позволит создавать новые типы и группы животных с высокой продуктивностью [5].

Цель исследования: апробировать применяемые схемы синхронизации половой охоты в животноводстве на маралухах.

Задачи исследования: подобрать оптимальные стимулирующие препараты и схемы синхронизации полового цикла маралух в период гона.

Материалы и методы исследования. Для синхронизации маралух апробировали три методики, отличающиеся составом гормональных препаратов, временем введения (использования), а также временем проведения искусственного осеменения. Исследование проводили на маралухах в 2018–2020 гг. в ФГБНУ ОС «Наво-талицкое» Чарышского района, Алтайского края. Маралух перед опытом ставили в отдельный парк до осени, без доступа рогачей.

Во время гона (сентябрь) перед осеменением маралух разбили на семь групп:

I опытной группе маралух (n = 10), синхронизируемой по программе Ovsynch, в первый день в 9:00 ч ввели в/м 2 мл Фертагил, на седьмой день в 9:00 ч – в/м 5 мл Динолитик, на девятый день в 17:00 – в/м 2 мл Фертагил, искусственное осеменение провели на десятый день в 9:00 и повторное искусственное осеменение – на одиннадцатый день в 9:00 ч.

II опытной группе маралух (n = 10), апробирующейся по схеме синхронизации СИДР – Synch: в первый день в 9:00 ч – в/м Ацегон 2 мл + установили СИДР; на седьмой день в 9:00 – в/м Динолитик 5 мл и извлекли СИДР; на девятый день в 17:00 ставили Ацегон 2 мл; искусственное осеменение осуществляли на десятый день в 9:00 ч.

На III опытной группе (n = 10) апробировали схему с прогестероном, простагландином и ГСЖК: в первый день в 9:00 ч установили СИДР; на восьмой день в 9:00 – в/м Динолитик 5 мл; на десятый день в 9:00 – в/м Фоллимаг (ГСЖК) 2 мл (200 ЕД) + удалили СИДР; искусственное осеменение осуществили на двенадцатый день в 17:00 ч.

IV опытная группа маралух (n = 10), схема с прогестероном, простагландином и ГСЖК: в первый день установили СИДР и ввели в/м Ацегон 2 мл; на восьмой день удалили СИДР и ввели в/м Динолитик 5 мл, Фоллимаг 3 мл (300 ЕД); искусственное осеменение осуществляли через 46 ч.

V опытная группа (n = 10), схема с прогестероном, простагландином и ГСЖК: в первый день установили СИДР; на восьмой день удалили СИДР и ввели в/м Динолитик 5 мл, Фоллимаг 2 мл (200 ЕД); искусственное осеменение осуществляли через 48 ч.

VI опытная группа маралух (n = 10), схема с прогестероном, простагландином и ГСЖК: в первый день установили СИДР; на восьмой день удалили СИДР и ввели в/м Динолитик 5 мл, Фоллимаг 2 мл (200 ЕД); искусственное осеменение осуществляли через 50 ч.

Искусственное осеменение осуществляли маноцервикальным методом с применением криоконсервированной спермы маралов-рогачей и активностью сперматозоидов при оттаивании не ниже 3 баллов (рис. 1, 2) [6].

Оценку качества проведенного осеменения осуществляли через 45 дней, используя УЗИ (рис. 3, 4).

Схемы синхронизации полового цикла с использованием гормональных препаратов у ма-ралух в опытных группах представлены в таблице 1.

Рис. 1. Искусственное осеменение маралух

Рис. 2. Сперма маралов-рогачей в соломинках перед криоконсервацией

Рис. 3. УЗИ-сканирование маралух

Рис. 4. Эмбрион

Таблица 1

Группа (n = 10)

Инъекция препаратов, дни обработок

1

7

8

9

10

11

12

I опытная, Оvsynch

Фертагил, 2 мл, в/м

Динолитик, 5 мл, в/м

Фертагил, 2 мл, в/м

ИО

ИО

II опытная, СИДР-synch

Ацегон, 2 мл, в/м + СИДР

СИДР извлекли + Динолитик, 5 мл, в/м

Ацегон, 2 мл, в/м

ИО

III опытная, ПГПГ+ГСЖК

СИДР

Динолитик, 5мл, в/м

ГСЖК 2 мл, в/м СИДР извлекли

ИО

IV опытная, ПГПГ+ГСЖК

Ацегон, 2 мл, в/м + СИДР

Извлекаем СИДР

Динолитик, 5 мл, в/м Фоллимаг 3 мл, в/м

ИО на 46 ч

V опытная, ПГПГ+ГСЖК

СИДР

Извлекаем СИДР

Динолитик, 5 мл, в/м Фоллимаг 2 мл, в/м

ИО на 48 ч

VI опытная, ПГПГ+ГСЖК

СИДР

Извлекаем СИДР

Динолитик, 5 мл, в/м Фоллимаг 2 мл, в/м

ИО на 50 ч

Примечание : ИО – искусственное осеменение.

Схемы фармакологической синхронизации эстрального цикла маралух

Контрольная группа маралух (n = 10) не подвергалась воздействию гормональных препаратов, их искусственное осеменение провели на 12-й день вместе с III опытной группой.

Статистическую обработку полученных результатов проводили в лаборатории биотехнологии пантовых оленей отдела ВНИИПО (ФГБНУ ФАНЦА). Полученный в ходе работы материал был обработан методами вариационной статистики с помощью программы MS Excel [7].

Результаты исследования. Результаты искусственного осеменения опытных маралух с применением различных схем синхронизации полового цикла и наблюдаемыми у них в момент осеменения клиническими изменениями охоты представлены в таблице 2.

Таблица 2

Группа маралух (n = 10)

Клинические изменения у маралух

Результат ИО по УЗИ, голов

Открытие ш/м, см

Кол-во голов, ш/м (откр./ закрытая)

Контроль

0,55±0,7

2/8

0

I

1,05±0,5

5/5

4

II

1,5±0,7

6/4

4

III

0,8±0,8

4/6

0

IV

1,28±0,5

8/2

1

V

1,33±0,7

7/3

4

VI

2,5±0,2*

8/2

3

Примечание : ш/м – шейка матки. *Р ≤ 0,05 (разница достоверна в сравнении с контрольной группой).

Клинические изменения у маралух в момент искусственного осеменения и результат УЗИ-сканирования

Контрольная группа маралух не подвергалась воздействию препаратами. Клинические изменения в виде открытия шейки матки наблюдали у 2 маралух. Искусственное осеменение провели в срок с опытными группами, по результату УЗИ-сканирования маралух эмбрионы не наблюдались.

В VI группе маралух использовали схему синхронизации с прогестероном, простагландином и ГСЖК, наблюдали клинические признаки в виде открытия шейки матки у 8 голов на 2,5±0,2 см, что является достоверной разницей в сравнении с контрольной группой животных.

В остальных пяти группах маралух клинические признаки в виде открытия шейки матки фиксировали от 0,8±0,8 до 1,5±0,7 см, что недостоверно по сравнению с контрольной группой.

Клинические изменения в виде открытия шейки матки, наблюдаемые у маралух в момент проведения искусственного осеменения, колебались от 20 до 80 % случаев, при этом покры-ваемость животных составляла до 40 %. Изменения в виде слабого открытия или полностью закрытой шейки матки свидетельствуют о не- подготовленности (отсутствии явных признаков охоты) маралух к искусственному осеменению.

Неоднозначные результаты покрытия мара-лух по отношению к клиническим изменениям, наблюдаемым в момент проведения искусственного осеменения, объясняется рядом факторов: время его проведения после последней инъекции препаратов (16–50 ч); неэффективное срабатывание препаратов в схеме; стресс-фактор у маралух при проведении манипуляций по искусственному осеменению.

Выводы. В результате УЗИ установлено, что маралухи, синхронизированные по схеме Ovsynch, оказались стельными на 40,0 %; по схеме СИДР – на 40,0 %. Контрольные животные и синхронизированные по схеме ПГПГ+ ГСЖК на 100,0 % оказались яловыми.

Апробированные схемы синхронизации половой охоты, применяемые в животноводстве, по наблюдаемым клиническим признакам открытия шейки матки у маралух были эффективны до 80 % случаев, что позволяет применять их в мараловодстве с корректировкой времени проведения искусственного осеменения.

Список литературы Искусственное осеменение маралух с применением различных схем синхронизации половой охоты

  • Организация селекционно-племенной ра-боты в мараловодстве Российской Федера-ции: наставление / РАСХН, Сиб. отд-ние ВНИИПО. Барнаул, 2005. 35 с.
  • Tanaka Yiki, Americano Alice Pereira, Galindo David Javier, Duarte Jose Mauricio Barbanti. Low invasive estrous synchronization protocol for wild animals: an example with melengestrol acetate in brown brocket deer (Mazama goua-zoubira). Animal Reproduction 2020, 17 (4).
  • Korzekwa Anna J, Kordan Wladyslaw, Kotlarczyk Angelikam, Kozdrowski Roland. The Effectiveness of Pharmacological Syn-chronization of the Estrous Cycle in Hinds (Cervus elaphus L.): A Pilot Field Trial. Ani-mals 2020, 10 (11), 2148.
  • Abdulheem Eljarah, Mohammad Abdullah, Mohammed Ababneh, Khaleel Jawasreh. CIDR Estrous Synchronization in the Arabian Oryx (Oryx Leucoryx) April 2019, Therioge-nology, 132(2).
  • Боранбаев А.В. Взятие, оценка и криокон-сервация эпидидимального семени мара-лов в зависимости от сезона года // Вестник Бурятской государственной сельскохозяй-ственной академии им В.Р. Филиппова. 2019. № 2 (55). С. 140–146.
  • Боранбаев А.В. Взятие, качественная оцен-ка и криоконсервация нативного семени маралов // Вестник Алтайского государст-венного аграрного университета. 2018. № 7 (165). С. 133–136.
  • Биометрия в животноводстве / сост. Н.И. Коростелёва, И.С. Кондрашкова, Н.М. Рудишина [и др.]. Барнаул: Изд-во АГАУ, 2009. 210 с.
Еще
Статья научная