Изучение ферментов малат-аспартатной челночной системы у генотипов пшеницы

Изучение ферментов малат-аспартатной челночной системы у генотипов пшеницы

Автор: Гурбанова Улдуза Ахмед, Мирзалиева Минара Адиль

Журнал: Бюллетень науки и практики @bulletennauki

Рубрика: Биологические науки

Статья в выпуске: 5 т.9, 2023 года.

Бесплатный доступ

Одной из важных проблем сельского хозяйства является снижение продуктивности сортов мягкой пшеницы, выращиваемых на территории Азербайджана, в условиях водного дефицита вызванного климатическими изменениями. В связи с этим засуха, являющийся одним из абиотических стрессовых факторов, способных прямо или косвенно влиять на метаболизм растений, остается активной темой дискуссий в исследованиях, проводимых в этой области в последние десятилетия. Изучена активность ферментов малат-аспартатной челночной системы у растений пшеницы, выращенной в условиях водного дефицита. Установлено, что активность ферментов аспартатаминотрансферазы и НАД-малатдегидрогеназы выше у засухоустойчивых генотипов.

Еще

Пшеница, стресс вызванный засухой

Короткий адрес: https://sciup.org/14127965

IDR: 14127965   |   DOI: 10.33619/2414-2948/90/04

Список литературы Изучение ферментов малат-аспартатной челночной системы у генотипов пшеницы

  • Ghatak A., Schindler F., Bachmann G., Engelmeier D., Bajaj P., Brenner M., Weckwerth W. Root exudation of contrasting drought-stressed pearl millet genotypes conveys varying biological nitrification inhibition (BNI) activity // Biology and Fertility of Soils. 2021. P. 1-16. https://doi .org/10.1007/s00374-021 -01578-w
  • Chen Q., Wang B., Ding H., Zhang J., Li S. The role of NADP-malic enzyme in plants under stress // Plant science. 2019. V. 281. P. 206-212. https://doi.org/10.1016/j.plantsci.2019.01.010
  • Kapoor D., Bhardwaj S., Landi M., Sharma A., Ramakrishnan M., Sharma A. The impact of drought in plant metabolism: How to exploit tolerance mechanisms to increase crop production // Applied Sciences. 2020. V. 10. №16. P. 5692. https://doi.org/10.3390/app10165692
  • Liszka A., Schimpf R., Cartuche Zaruma K. I., Buhr A., Seidel T., Walter S., Selinski J. Three cytosolic NAD-malate dehydrogenase isoforms of Arabidopsis thaliana: on the crossroad between energy fluxes and redox signaling // Biochemical Journal. 2020. V. 477. №19. P. 36733693. https://doi .org/10.1042/B CJ20200240
  • Han M., Zhang C., Suglo P., Sun S., Wang M., Su T. L-Aspartate: An essential metabolite for plant growth and stress acclimation // Molecules. 2021. V. 26. №7. P. 1887. https://doi.org/10.3390/molecules26071887
  • Jia X., Sun C., Zuo Y., Li G., Li G., Ren L., Chen G. Integrating transcriptomics and metabolomics to characterise the response of Astragalus membranaceus Bge. var. mongolicus (Bge.) to progressive drought stress // Bmc Genomics. 2016. V. 17. P. 1-16. https://doi.org/10.1186/s12864-016-2554-0
  • Ullah N., Yuce M., Neslihan Ozturk Gok9e Z., Budak H. Comparative metabolite profiling of drought stress in roots and leaves of seven Triticeae species // BMC genomics. 2017. V. 18. P. 112. https://doi.org/10.1186/s12864-017-4321-2
  • Gargallo-Garriga A., Preece C., Sardans J., Oravec M., Urban O., Penuelas J. Root exudate metabolomes change under drought and show limited capacity for recovery // Scientific reports. 2018. V. 8. №1.P. 1-15. https://doi.org/10.1038/s41598-018-30150-0
  • Khan N., Bano A., Rahman M. A., Guo J., Kang Z., Babar M. Comparative physiological and metabolic analysis reveals a complex mechanism involved in drought tolerance in chickpea (Cicer arietinum L.) induced by PGPR and PGRs // Scientific reports. 2019. V. 9. №1. P. 1-19. https://doi.org/10.1038/s41598-019-38702-8
  • Barickman T. C., Ku K. M., Sams C. E. Differing precision irrigation thresholds for kale (Brassica oleracea L. var. acephala) induces changes in physiological performance, metabolites, and yield // Environmental and Experimental Botany. 2020. V. 180. P. 104253. https://doi.org/10.1016/j. envexpbot.2020.104253
  • Zhang J., Chen G., Zhao P., Zhou Q., Zhao X. The abundance of certain metabolites responds to drought stress in the highly drought tolerant plant Caragana korshinskii // Acta Physiologiae Plantarum. 2017. V. 39. P. 1-11. https://doi.org/10.1007/s11738-017-2412-y
  • Borst P. The malate-aspartate shuttle (Borst cycle): How it started and developed into a major metabolic pathway // IUBMB life. 2020. V. 72. №11. P. 2241-2259. https://doi .org/10.1002/iub.2367
  • Easlon E., Tsang F., Skinner C., Wang C., Lin S. J. The malate-aspartate NADH shuttle components are novel metabolic longevity regulators required for calorie restriction-mediated life span extension in yeast // Genes & development. 2008. V. 22. №7. P. 931-944. https://doi.org/10.1101/gad.1648308
  • Padhan B. K., Sathee L., Meena H. S., Adavi S. B., Jha S. K., Chinnusamy V. CO2 Elevation accelerates phenology and alters carbon/nitrogen metabolism vis-à-vis ROS abundance in bread wheat // Frontiers in Plant Science. 2020. P. 1061. https://doi.org/10.3389/fpls.2020.01061
  • Singh J., Garai S., Das S., Thakur J. K., Tripathy B. C. Role of C4 photosynthetic enzyme isoforms in C3 plants and their potential applications in improving agronomic traits in crops // Photosynthesis Research. 2022. P. 1-26. https://doi.org/10.1007/s11120-022-00978-9
  • Scheibe R., Stitt M. Comparison of NADP-malate dehydrogenase activation, QA reduction and 02 evolution in spinach leaves // Plant Physiol Biochem. 1988. V. 26. №4. P. 473-481.
  • Alfonso S. U., Bruggemann W. Photosynthetic responses of a C3 and three C4 species of the genus Panicum (s.l.) with different metabolic subtypes to drought stress // Photosynthesis research. 2012. V. 112. P. 175-191. https://doi.org/10.1007/s11120-012-9763-4
  • Sedmak J. J., Grossberg S. E. A rapid, sensitive, and versatile assay for protein using Coomassie brilliant blue G250 // Analytical biochemistry. 1977. V. 79. №1-2. P. 544-552. https://doi .org/10.1016/0003 -2697(77)90428-6
Еще
Статья научная
QR-код для установки приложения SciUp Наведите камеру и скачайте бесплатное приложение SciUp