Экспрессия генов иммунитета и адаптации и состав микробиома у родительского поголовья кур и петухов (Gallus gallus L.) линий СМ5 и СМ9 кросса Смена 9
Автор: Лаптев Г.Ю., Йылдырым Е.А., Ильина Л.А., Филиппова В.А., Калиткина К.А., Пономарева Е.С., Дубровин А.В., Тюрина Д.Г., Фисинин В.И., Егоров И.А., Егорова Т.А., Манукян В.А., Ленкова Т.Н.
Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology
Рубрика: Генетика и геномика
Статья в выпуске: 2 т.58, 2023 года.
Бесплатный доступ
Породы корниш и плимутрок составляют основу современных специализированных мясных кроссов кур. Селекция отцовской линия породы корниш СМ5 нового российского кросса мясных кур Смена 9 ведется в основном по признакам мясной продуктивности, тогда как материнская линия породы плимутрок СМ9 - прежде всего на эффективность репродукции и жизнеспособность при более низкой, чем у линии СМ5, скорости роста живой массы. В настоящем исследовании мы впервые выявили у кур и петухов родительского поголвья линий СМ5 и СМ9 нового кросса Смена 9 различия, связанные с генотипом и полом, в экспрессии некоторых генов иммунитета и генов, связанных с адаптационным потенциалом, а также в составе и прогнозируемом функциональном потенциале микробиома. Целью работы было сравнение уровня экспрессии генов иммунитета и генов, связанных с адаптационным потенциалом, соответственно в тканях бурсы в печени, а также состава и функций микробиома слепых отростков кишечника у кур и петухов линий СМ5 и СМ9. Эксперименты проводили в виварии СГЦ «Загорское ЭПХ» (Московская обл., 2022 год) на родительском поголовье кур и петухов линий СМ5 и СМ9 39-недельного возраста, содержавшихся в идентичных условиях и получавших одинаковый рацион. От каждой линии и пола отбирали образцы тканей у 5 особей с близкой живой массой. Анализ экспрессии генов в образцах тканей проводили с помощью количественной ПЦР с обратной транскрипцией (RT-qPCR). Тотальную РНК выделяли с помощью мини-набора Aurum™ Total RNA («Bio-Rad», США). ПЦР-амплификацию проводили с использованием SsoAdvanced™ Universal SYBR® Green Supermix («Bio-Rad», США) и детектирующего амплификатора ДТлайт (НПО «ДНК-Технология», Россия). В тканях печени проводили анализ экспрессии генов, связанных с адаптационным потенциалом: гены CAT1 транспортера катионных аминокислот 1, HSF1 и HSF 2 - факторов транскрипции белков теплового шока 1 и 2, SOD - супероксиддисмутазы, Gpx1 - глутатионпероксидазы, HO-1 - гемоксигеназы-1. В тканях бурсы анализировали экспрессию генов, связанных с иммунитетом: гены IL8 - интерлейкина-8, IRF7 - регуляторного фактора интерферона 7, PTGS2 - простагландин-эндопероксидсинтазы, AvBD1 , AvBD2 , AvBD9 и AvBD10 - β-дефензины 1, 2, 9 и 10, Casp6 - каспазы 6. В качестве референсного контроля использовали праймер для гена β-актина ( ACTB ). Относительный уровень экспрессии оценивали методом 2-ΔΔCT. Тотальную ДНК для анализа состава микробиома выделяли с использованием набора Genomic DNA Purification Kit («Thermo Fisher Scientific, Inc.», США). Бактериальное сообщество слепой кишки оценивали методом NGS-секвенирования на платформе MiSeq («Illumina, Inc.», США) с праймерами для V3-V4 региона гена 16S рРНК. Реконструкцию и прогнозирование функционального содержания метагенома, семейств генов, ферментов осуществляли при помощи программного комплекса PICRUSt2 (v. 2.3.0). Математическую и статистическую обработку результатов осуществляли методом многофакторного дисперсионного анализа (ANOVA) в программах Microsoft Excel XP/2003 и R-Studio (v. 1.1.453). Полученные результаты показали увеличение экспрессии генов HSF1 и HSF2 у петухов линии СМ5 по сравнению с остальными группами (р ≤ 0,05), в часности, разница с петухами линии СМ9 составляла соответственно 68 и 218 % (р ≤ 0,05). Экспрессия генов HSF1 и HSF2 внутри линии СМ5 у петухов была выше соответственно в 1,6 и 3,0 раза, чем у кур (р ≤ 0,05). Наблюдалась существенная активация экспрессии генов антимикробных пептидов и провоспалительных генов у петухов линии СМ9 по сравнению с петухами и курами линии СМ5 (р ≤ 0,05). Так, экспрессия генов AvBD2 , AvBD9 , AvBD10 , IL8 и PTGS2 у петухов линии СМ9 по сравнению с петухами линии СМ5 усиливалась соответственно в 7,6; 5,3; 2,1; 6,3 и 1,5 раза (р ≤ 0,05). NGS-секвенирование показало, что в микробиоме слепых отростков кишечника у кур и петухов линии СМ9 присутствовали бактерии суперфилума Elusimicrobiota (соответственно 0,32±0,11 и 0,49±0,19 %), при этом у петухов линии СМ5 эти микроорганизмы не были выявлены, а у кур линии СМ5 их доля составляла 0,04±0,01 %. Между группами были обнаружены достоверные (р ≤ 0,05) различия по 25 родам, у части родов - в зависимости от генотипа, у части - от пола птицы. Например, у петухов линии СМ5 обилие микроорганизмов родов Barnesiella , Clostridia_UCG-014 и Frisingicoccus было соответственно в 17,2; 2,0 и 4,9 раза выше (р ≤ 0,05), чем у петухов линии СМ9. Представители рода Desulfovibrio присутствовали в кишечнике петухов линий СМ5 и СМ9 (0,25±0,08 и 0,73±5,6 %); при этом в кишечнике кур обеих линий этих микроорганизмов мы не обнаружили. По результатам биоинформатической реконструкции и функциональной аннотации данных NGS-секвенирования в микробном сообществе кишечника выявлены 357 прогнозируемых метаболических путей, по 65 из которых наблюдались различия (р ≤ 0,05) между группами. Специфические для генотипа и пола модуляции в экспрессии генов, а также в структуре и функциях кишечного микробиома могут обеспечивать адаптацию макроорганизма в изменяющихся условиях.
Бройлерный кросс, смена 9, слепые отростки кишечника, микробиом, ngs-секвенирование, прогнозируемые метаболические пути, экспрессия генов, иммунитет, адаптации, бурса, печень
Короткий адрес: https://sciup.org/142238899
IDR: 142238899 | DOI: 10.15389/agrobiology.2023.2.313rus
Список литературы Экспрессия генов иммунитета и адаптации и состав микробиома у родительского поголовья кур и петухов (Gallus gallus L.) линий СМ5 и СМ9 кросса Смена 9
- Емануйлова Ж.В., Егорова А.В., Ефимов Д.Н., Комаров А.А. Новый высокопродуктивный отечественный кросс мясных кур Смена 9. Аграрная наука, 2021, 7-8: 33-36 (doi: 10.32634/0869-8155-2021-351-7-8-33-36).
- Dorshorst B.J., Ashwell C.M. Genetic mapping of the sex-linked barring gene in the chicken. Poultry Science, 2009, 88(9): 1811-1817 (doi: 10.3382/ps.2009-00134).
- Коноплева А.П., Ефимов Д.Н., Байковская Е.Ю., Емануйлова Ж.В. Воспроизводительные качества петухов отцовской линии СМ5 кросса Смена 9. Птицеводство, 2021, 11: 16-20 (doi: 10.33845/0033-3239-2021-70-11-16-20).
- Егорова А.В., Ефимов Д.Н., Емануйлова Ж.В., Комаров А.А. Селекция мясных кур породы плимутрок на повышение воспроизводительных качеств. Птицеводство, 2021, 3: 4-8 (doi: 10.33845/0033-3239-2021-70-3-4-8).
- Lopez G., de Lange K., Leeson S. Partitioning of retained energy in broilers and birds with intermediate growth rate. Poultry Science, 2007, 86(10): 2162-2171 (doi: 10.1093/ps/86.10.2162).
- Davis R.V., Lamont S.J., Rothschild M.F., Persia M.E., Ashwell C.M., Schmidt C.J. Transcrip-tome analysis of post-hatch breast muscle in legacy and modern broiler chickens reveals enrich-ment of several regulators of myogenic growth. PLoS ONE, 2015, 10(3): e0122525 (doi: 10.1371/journal.pone.0122525).
- Huang L., Hu Y., Guo Q., Chang G., Bai H. Time-course transcriptome landscape of bursa of Fabricius development and degeneration in chickens. Agriculture, 2022, 12(8): 1194 (doi: 10.3390/agriculture12081194).
- Désert C., Duclos M.J., Blavy P., Lecerf F., Moreews F., Klopp C., Aubry M., Herault F., Le Roy P., Berri C., Douaire M., Diot C., Lagarrigue S. Transcriptome profiling of the feeding-to-fasting transition in chicken liver. BMC Genomics, 2008, 9: 611 (doi: 10.1186/1471-2164-9-611).
- Li J., Liu X., Xing L., Liu H., Li X., Bao J. Gene expression profiling of broiler liver under cold stress by high-throughput sequencing technology. Journal of Poultry Science, 2017, 54(3): 185-196 (doi: 10.2141/jpsa.0160142).
- Sheng Z., Pettersson M.E., Hu X., Luo C., Qu H., Shu D., Shen X., Carlborg O., Li N. Genetic dissection of growth traits in a Chinese indigenous x commercial broiler chicken cross. BMC Genomics, 2013, 14: 151 (doi: 10.1186/1471-2164-14-151).
- Zheng X., Zhang B., Zhang Y., Zhong H., Nie R., Li J., Zhang H., Wu C. Transcriptome analysis of feather follicles reveals candidate genes and pathways associated with pheomelanin pigmenta-tion in chickens. Scientific Reports, 2020, 10: 12088 (doi: 10.1038/s41598-020-68931-1).
- Zhao L., Wang G., Siegel P., He C., Wang H., Zhao W., Zhai Z., Tian F., Zhao J., Zhang H., Sun Z., Chen W., Zhang Y., Meng H. Quantitative genetic background of the host influences gut microbiomes in chickens. Scientific Reports, 2013, 3: 1163 (doi: 10.1038/srep01163).
- Song J.S., Woodhams D.C., Martino C., Allaband C., Mu A., Javorschi-Miller-Montgomery S., Suchodolski J.S., Knight R. Engineering the microbiome for animal health and conservation. Experimental Biology and Medicine, 2019, 244(6): 494-504 (doi: 10.1177/1535370219830075).
- Kogut M.H. The effect of microbiome modulation on the intestinal health of poultry. Animal Feed Science and Technology, 2018, 250(1): 32-40 (doi: 10.1016/j.anifeedsci.2018.10.008).
- Wankhade U.D., Zhong Y., Lazarenko O.P., Chintapalli S.V., Piccolo B.D., Chen J.-R., Shankar K. Sex-specific changes in gut microbiome composition following blueberry consumption in C57BL/6J mice. Nutrients, 2019, 11(2): 313 (doi: 10.3390/nu11020313).
- Йылдырым Е.А., Грозина А.А., Вертипрахов В.Г., Ильина Л.А., Филиппова В.А., Лап-тев Г.Ю., Бражник Е.А., Калиткина К.А., Тарлавин Н.В., Дубровин А.В., Новикова Н.И., Тюрина Д.Г. Экспрессия генов, ассоциированных с иммунитетом, в тканях слепых от-ростков кишечника и поджелудочной железы цыплят-бройлеров (Gallus gallus L.) при экс-периментальном Т-2 токсикозе. Сельскохозяйственная биология, 2021, 56(4): 664-681 (doi: 10.15389/agrobiology.2021.4.664rus).
- Егоров И.А., Ленкова Т.Н., Манукян В.А., Егорова Т.А., Никонов И.Н., Ильина Л.А., Лаптев Г.Ю. Замещение кормовых антибиотиков в рационах. сообщение I. микробиота кишечника и продуктивность мясных кур (Gallus gallus L.) на фоне энтеросорбента с фито- и пробиотическими свойствами. Сельскохозяйственная биология, 2019, 54(2): 280-290. (doi: 10.15389/agrobiology.2019.2.280rus).
- Йылдырым Е.А., Грозина А.А., Вертипрахов В.Г., Ильина Л.А., Филиппова В.А., Лаптев Г.Ю., Пономарева Е.С., Дубровин А.В., Калиткина К.А., Молотков В.В., Ахматчин Д.А., Бражник Е.А., Новикова Н.И., Тюрина Д.Г. Состав и метаболический потенциал микробиома кишечника бройлеров Gallus gallus L. под влиянием кормовых добавок при экспериментальном Т-2 токсикозе. Сельскохозяйственная биология, 2022, 57(4): 743-761 (doi: 10.15389/agrobiology.2022.4.743rus).
- Jašarević E., Morrison K.E., Bale T.L. Sex differences in the gut microbiome-brain axis across the lifespan. Philosophical Transactions of the Royal Society of London, Series B, Biological Sciences, 2016, 371(1688): 20150122 (doi: 10.1098/rstb.2015.0122).
- Yang X., Schadt E.E., Wang S., Wang H., Arnold A.P., Ingram-Drake L., Drake T.A., Lusis A.J. Tissue-specific expression and regulation of sexually dimorphic genes in mice. Genome Research, 2006, 16(8): 995-1004 (doi: 10.1101/gr.5217506).
- Niemann H., Kuhla B., Flachowsky G. Perspectives for feed-efficient animal production. Journal of Animal Science, 2011, 89(12): 4344-4363 (doi: 10.2527/jas.2011-4235).
- European Convention for the Protection of Vertebrate Animals used for Experimental and other Sci-entific Purposes (ETS № 123) (Strasburg, 18.03.1986). Режим доступа: https://norecopa.no/leg-islation/council-of-europe-convention-ets-123/. Без даты.
- Ефимов Д.Н., Егорова А.В., Емануйлова Ж.В., Иванов А.В., Коноплева А.П., Зотов А.А., Лукашенко В.С., Комаров А.А., Егорова И.А., Егорова Т.А., Байковская Е.Ю., Манукян В.А., Салеева И.П., Кавтарашвили А.Ш., Смолов С.В. Руководство по работе с птицей мясного кросса Смена 9 с аутосексной материнской родительской формой /Под ред. Д.Н Ефимова, В.И. Фисинина. Сергиев Посад, 2021.
- Zeka F., Vanderheyden K., Smet E., Cuvelier C., Mes tdagh P., Vandesompele J. Straightforward and sensitive RT qPCR based gene expression analysis of FFPE samples. Scientific Reports , 2016, 6: 21418 (doi: 10.1038/srep21418).
- Григорьева М.А., Величко О.А., Шабалдин С.В., Фисинин В.И., Сурай П.Ф. Регуляция активности витагенов как новая антистрессовая стратегия в птицеводстве: обоснование и производственный опыт. Сельскохозяйственная биология , 2017, 52(4): 716 730 (doi: 10.15389/agrobiology.2017.4.716rus).
- Meza Cerda M. I., Gray R., Higgins D.P. Cytokine RT qPCR and ddPCR for immunological investigations of the endangered Australian sea lion ( Neophoca cinerea ) and other mammals. PeerJ, 2020, 8: e10306 (doi: 10.7717/peerj.10306).
- Laptev G.Y., Filippova V.A., Kochish I.I., Yildirim E.A., Ilin a L.A., Dubrovin A. V, Bra- zhnik E.A., Novikova N.I., Novikova O.B., Dmitrieva M.E., Smol ensky V.I., Surai P.F., Grif- fin D.K., Romanov M.N. Examination of the expression of immunity genes and bacterial profiles in the caecum of growing chickens infected with Salmonella enteritidis and fed a phytobiotic. Animals , 2019, 9(9): 615 (doi: 10.3390/
- Livak K.J., Schmittgen T.D. Analysis of relative gene expression data using real time quantitative PCR and the 2 ΔΔCT metho d. Methods , 2001, 25(4): 402 408 (doi: 10.1006/meth.2001.1262).
- Rabindran S.K., Giorgi G., Clos J., Wu C. Molecular cloning and expression of a human heat shock factor, HSF1. Proceeding of the National Academy of Sciences of USA , 1991, 88(16): 6906 6910 (d oi: 10.1073/pnas.88.16.6906).
- Cedraz H., Gromboni J.G.G., Garcia A.A.P. Junior, Farias F ilho R.V., Souza T.M., Oliveira E.R., Oliveira E.B., Nascimento C.S.D., Meneghetti C., Wenceslau A.A. Heat stress induces expression of HSP genes in genetically divergent chickens. PLoS ONE , 2017, 12(10): e0186083 (doi: 10.1371/journal.pone.0186083).
- McManus C.J., Coolon J.D., Duff M.O., Eipper Mains J., Graveley B.R., Wittkopp P.J. Regu- latory divergence in Drosophila revealed by mRNA seq. Ge nome Research , 2010, 20(6): 816 825 (doi: 10.1101/gr.
- Zuidhof M.J., Schneider B.L., Carney V.L., Karver D.R., Robinson F.E. Growth, efficiency, and yield of commercial broilers from 1957, 1978, and 2005. Poultry Science , 2014, 93(12): 2970 2982 (doi: 10.3382/ps.2014 04291).
- Oliver F., Christians J.K., Liu X., Rhind S., Verma V., Davison C., Brown S.D.M., Denny P., Keightley P.D. Regulatory variation at glypican 3 underlies a major growth QTL in mice. PLoS Biology , 2005, 3(5): e135 (doi: journal.pbio.0030135).
- Rodriguez K.A., Valentine J.M., Kramer D.A., Gelfond J.A., Kri stan D.M., Nevo E., Buffen-
- stein R. Determinants of rodent longevity in the chaperone protein degradation network. Cell Stress & Chaperones , 2016, 21(3): 453 466 (doi: 10.1 007/s12192 016 0672 x).
- Li Y., Ma Q.G., Zhao L.H., Wei H., Duan G.X., Zhang J.Y., Ji C. Effects of lipoic acid on immune function, the antioxidant defense system, and inflammation related genes expression of broiler chickens fed aflatoxin contaminated diet s. International Journal of Molecular Sciences , 2014 15(4): 5649 5662 (doi: 10.3390/ijms15045649).
- Otterbein L.E., Foresti R., Motterlini R. Heme oxygenase 1 and carbon monoxide in the heart: the balancing act between danger signaling and pro survival. Circulation Research , 2016, 118(12): 1940 1959 (doi: 10.1161/CIRCRESAHA.116.306588).
- Surai P.F., Fisinin V.I., Karadas F. Antioxidant systems in chick embryo development. Pt. 1. Vitamin E, carotenoids and selenium. Animal Nutrition , 2016, 2(1): 1 11 (doi: 10.1016/j.aninu.2016.01.001).
- Johnsson M., Henriksen R., Höglund A., Fogelholm J., Jensen P., Wright D. Genetical genomics of growth in a chicken model. BMC Genomics, 2018, 19(1): 72 (doi: 10.1186/s12864-018-4441-3).
- Ganz T. Defensins: antimicrobial peptid es of innate immunity. Nature Reviews Immunology , 2003, 3(9): 710 720 (doi: 10.1038/nri1180).
- Lynn D.J., Higgs R., Lloyd A.T., O'Farrelly C., Herv Hervé GrGrépine t V., Nys Y., Brinkman F.S., Yu P.L., Soulier A., Kaiser P., Zhang G., Lehrer R.I. Avian beta defensin nomenclature: a community pro- posed update. Immunology Letters , 2007, 110(1): 86 89 (doi: 10.1016/j.imlet.2007.03.007).
- Lee M.O., Jang H.J., Rengaraj D., Yang S.Y., Han J.Y., Lamont S.J., Womack J.E. Tissue expression and antibacterial activity of host defense peptides in chicken. BMC Veterinary Research , 2016, 12(1): 231 (doi: 10.1186/s12917 016 0866 6).
- Antonopoulos A.S., Papanikolaou E., Vogiatzi G., Oikonomou E., Tousoulis D. Anti inflammatory agents in peripheral arterial disease. Current Opin ion in Pharmacology , 2017, 39(1): 1 8 (doi: 10.1016/j.coph.2017.11.001).
- Rychlik I., Elsheimer Matulova M., Kyrova K. Gene expression in the chicken caecum in response to infections with nontyphoid Salmonella. Veterinary Research , 2014, 45(1): 119 (doi: 10 .1186/s13567 014 0119 2).
- Prescott S.M., Fitzpatrick F.A. Cyclooxygenase 2 and carcinogenesis. Biochimica et Biophysica Acta , 2000, 1470(2): M69 M78 (doi: 10.1016/s0304 419x(00)00006 8).
- Thuresson E.D., Lakkides K.M., Rieke C.J., Sun Y., Wingerd B.A., Mici elli R., Mulichak A.M., Malkowski M.G., Garavito R.M., Smith W.L. Prostaglandin endoperoxide H synthase 1: the functions of cyclooxygenase active site residues in the binding, positioning, and oxygenation of arachidonic acid. Journal of Biological Chemistr y , 2001, 276(13): 10347 10357 (doi: 10.1074/jbc.M009377200).
- Stearns S.C. The evolution of life histories . NY, Oxford University Press, 1992.
- Chao C.H., Lee Y.P. Relationship between reproductive performance and immunity in Taiwan country chickens. Poultry Science , 2001, 80(5): 535 540 (doi: 10.1093/ps/80.5.535).
- Langille M.G., Zaneveld J., Caporaso J.G., McDonald D., K nights D., Reyes J.A., Clemente J.C., Burkepile D.E., Vega Thurber R.L., Knight R., Beiko R.G., Huttenhower C. Predictive functional profili ng of microbial communities using 16S rRNA marker gene sequences. Nature Biotechnology , 2013, 31(9): 814 821 (doi: 10.1038/nbt.2676).
- Dibner J.J., Richards J.D. Antibiotic growth promoters in agriculture history and mode of action. Poultry Science, 2005, 84(4): 634-643 (doi: 10.1093/ps/84.4.634).
- Xiao Y., Xiang Y., Zhou W., Chen J., Li K., Yang H. Microbial community mapping in intestinal tract of broiler chicken. Poultry Science, 2017, 96(5): 1387-1393 (doi: 10.3382/ps/pew372).
- Andert J., Geissinger O., Brune A. Peptidic soil components are a major dietary resource for the humivorous larvae of Pachnoda spp. (Coleoptera: Scarabaeidae). Journal of Insect Physiology, 2008, 54(1): 105-113 (doi: 10.1016/j.jinsphys.2007.08.006).
- Lemke T., Stingl U., Egert M., Friedrich M.W., Brune A. Physicochemical conditions and mi-crobial activities in the highly alkaline gut of the humus-feeding larva of Pachnoda ephippiata (Coleoptera: Scarabaeidae). Applied and Environmental Microbiology, 2003, 69(11): 6650-6658 (doi: 10.1128/AEM.69.11.6650-6658.2003).
- Macfarlane S., Macfarlane G.T. Regulation of short-chain fatty acid production. Proceedings of the Nutrition Society, 2003, 62(1): 67-72 (doi: 10.1079/PNS2002207).
- Silva Y.P., Bernardi A., Frozza R.L. The role of short-chain fatty acids from gut microbiota in gut-brain communication. Frontiers in Endocrinology, 2020, 11: 25 (doi: 10.3389/fendo.2020.00025).
- Ubeda C., Bucci V., Caballero S., Djukovic A., Toussaint N.C., Equinda M., Lipuma L., Ling L., Gobourne A., No D., Taur Y., Jenq R.R., van den Brink M.R., Xavier J.B., Pamer E.G. Intestinal microbiota containing Barnesiella species cures vancomycin-resistant Enterococcus faecium colo-nization. Infection and Immunity, 2013, 81(3): 965-973 (doi: 10.1128/IAI.01197-12).
- Lee K.C., Kil D.Y., Sul W.J. Cecal microbiome divergence of broiler chickens by sex and body weight. Journal of Microbiology, 2017, 55(12): 939-945 (doi: 10.1007/s12275-017-7202-0).
- Yurkovetskiy L., Burrows M., Khan A.A., Graham L., Volchkov P., Becker L., Antonopoulos D., Umesaki Y., Chervonsky A.V. Gender bias in autoimmunity is influenced by microbiota. Immunity, 2013, 39(2): 400-412 (doi: 10.1016/j.immuni.2013.08.013).
- Halle I., Henning M., Koehler P. Influence of vitamin B 12 and cobalt on growth of broiler chickens and Pekin ducks. Landbauforschung Volkenrode, 2011, 61(4): 299-306.
- Schoenhofen I.C., McNally D.J., Brisson J.-R., Logan S.M. Elucidation of the CMP-pseudaminic acid pathway in Helicobacter pylori: synthesis from UDP-N-acetylglucosamine by a single enzymatic reaction. Glycobiology, 2006, 16(9): 8C-14C (doi: 10.1093/glycob/cwl010).
- Godon J.J., Moriniere J., Moletta M., Gaillac M., Bru V., Delgenes J.P. Rarity associated with specific ecological niches in the bacterial world: the 'Synergistes' example. Environmental Microbiology, 2005. 7(2):213-224 (doi: 10.1111/j.1462-2920.2004.00693.x).