Об использовании серологических и молекулярно-генетических методов при диагностике инфекционной анемии лошадей

При ИНАН формируется нестерильный иммунитет, то есть иммунитет, поддерживаемый присутствием возбудителя в организме. В ответ на действие вируса в крови лошадей появляются антитела к различным антигенным детерминантам возбудителя (3).

В настоящее время диагностика инфекционной анемии основана на выявлении специфических антител к вирусу. Разработаны наборы для реакции диффузной преципитации (РДП) и иммуноферментного анализа (ИФА). Из серологических методов диагностики ИНАН «золотым» стандартом считается РДП (тест Коггинса) (7, 11).

Однако перечисленные методы исследования при ИНАН имеют определенные недостатки. Так, с помощью серологических реакций невозможно выявить больных животных до начала сероконверсии. Описано иммунодефицитное состояние лошадей, при котором вирусоспецифические антитела образуются в количестве, недостаточном для их обнаружения. В этих случаях результаты, полученные иммунологических методами, будут интерпретированы как ложноотрицательные (12).

Кроме серологических методов, рекомендуется и прямое обнаружение генома вируса ИНАН. Для диагностики заболевания до начала сероконверсии чаще всего используется ПЦР. За рубежом описаны и с успехом применяются различные протоколы на основе ОТ-ПЦР (ПЦР с обратной транскрипцией) (2, 4, 13). Ряд авторов и официальных документов признают молекулярно-генетические методы незаменимыми при ранней диагностике ИНАН (12, 14), также они рекомендованы руководством World Organization for Animal Health (Международное эпизоотическое бюро, Париж) (14).

Особо следует отметить, что своевременная диагностика ИНАН — единственный надежный способ контроля этого заболевания, так как средств для его специфического лечения и профилактики пока не разработано (1, 3).

Целью наших исследований была сравнительная оценка различных методов диагностики инфекционной анемии лошадей при экспериментальном воспроизведении инфекции у восприимчивого животного.

Методика. Опыты проводились на базе вивария Всероссийского НИИ ветеринарной вирусологии и микробиологии (ВНИИВВиМ). Для экспериментального заражения животного (жеребенок в возрасте 9 мес) использовали 10 % суспензию селезенки от серопозитивной лошади, вынужденно убитой при вспышке ИНАН в Нижегородской области в 2011 году. Материал вводили внутривенно в объеме 10,0 см³. После контрольного заражения ежедневно проводили термометрию и клинический осмотр жеребенка для выявления отклонений от физиологической нормы.

Отбор проб крови выполняли ежедневно с 1-х по 4-е сут после заражения и далее через день по 35-е сут после заражения (срок наблюдения). Сыворотку крови отбирали на 2-е, 7-е, 14-е, 21-е, 28-е, 30-е и 35-е сут после заражения.

Обнаружение РНК вируса ИНАН в образцах биологического материала осуществляли постановкой гнездовой ОТ-ПЦР с электрофоретической детекцией и ОТ-ПЦР в режиме реального времени (15, 16). Гнездовую ОТ-ПЦР проводили на приборе Palm Cycler («Corbett Research», Австралия), ОТ-ПЦР в режиме реального времени — в ампли-фикаторе RotorGene-6000 («Corbett Research», Австралия) в соответствии с инструкцией (15, 16).

Серологические исследования проводили с использованием коммерческого «Набора для диагностики инфекционной анемии лошадей в реакции диффузионной преципитации» («Щелковский биокомбинат», Россия) и «Тест-системы для выявления антител к вирусу инфекционной анемии лошадей непрямым иммуноферментным методом в сыворотке крови лошадей» («IDvet», Франция) согласно инструкциям производителей.

Результаты. Перед началом эксперимента отобрали сыворотку крови восприимчивого животного и проверили ее на наличие антител к вирусу ИНАН. С помощью набора для диагностики инфекционной анемии лошадей в РДП сыворотка была оценена как серонегативная.

В период наблюдения у животного отмечались признаки, харак- терные для ИНАН: лихорадка, сильная жажда, угнетение, незначительная потеря живой массы. Начиная с 10-х сут после заражения, регистрировали повышение температуры тела выше физиологической нормы. К 15-м сут после контрольного заражения значение этого показателя составило 40,9 °C, после чего началось его снижение до физиологической нормы.

При определении генома вируса в пробах крови применялись тест-системы, разработанные во ВНИИВВиМ. Метод основан на амплификации фрагментов gag -гена вируса ИНАН с использованием специфических олигонуклеотидных праймеров (10, 11).

Рис. 1. Результаты амплификации специфического фрагмента генома вируса инфекционной анемии лошадей при исследовании образцов крови экспериментально зараженного жеребенка в возрасте 9 мес при использовании гнездовой ПЦР с этапом обратной транскрипции (ОТ-ПЦР): 1 — 1-е сут после заражения, 2 — 2-е сут после заражения, 3 — 35-е сут после заражения, 4 — отрицательный контроль реакции, 5 — положительный контроль реакции, 6 — отрицательный контроль амплификации.

При исследовании проб крови, взятой на 2-е сут после инфицирования, получен положительный ответ в гнездовой ОТ-ПЦР с электорофо-ретической детекцией (рис. 1) и в ОТ-ПЦР в режиме реального времени (рис. 2). Далее геном вируса ИНАН выявлялся с помощью обоих вариантов ПЦР до конца срока наблюдения, составлявшего 35 сут.

Полный цикл ПЦР

Рис. 2. Результаты амплификации специфического фрагмента генома вируса инфекционной анемии лошадей при исследовании образцов крови экспериментально зараженного жеребенка в возрасте 9 мес с помощью ОТ-ПЦР в режиме реального времени (цифры 2, 6, 14, 18, 22, 30, 35 — время после заражения, сут).

Специфические антитела к вирусу ИНАН с помощью набора для ди агностики инфекционной анемии лошадей в РДП обнаруживали, начиная с 30-х сут после заражения, при использовании тест-системы для выявле ния антител к вирусу ИНАН непрямым ИФА — с 21-х сут после заражения и до конца эксперимента. Это согласуется с данными литературы о том, что специфические антитела начинают вырабатываться и достигают концентраций, необходимых для выявления серологическими методами, лишь на 14-35-е сут (3).

Таким образом, проведенные исследования подтверждают, что ПЦР можно эффективно применять в качестве специфичного экспресс-метода для выявления генома вируса ИНАН в период до начала сероконверсии с последующей верификацией с помощью других лабораторно-диагностических методов. Полученные данные свидетельствуют об эффективности использования ПЦР при детекции вируса ИНАН, начиная уже со 2-х сут после заражения животного.