Оценка гуморального иммунитета у коров, вакцинированных вакциной «Коглавакс»
Автор: Яблоков М.А., Галиуллин А.К., Ермолина С.А.
Статья в выпуске: 3 т.259, 2024 года.
Бесплатный доступ
Целью исследования явилось изучение поствакцинального иммунитета у коров, привитых вакциной «Коглавакс». Антитела в сыворотке крови вакцинированных коров к антигену возбудителя Cl. prefringenes токсинам α, β и ε, устанавливали в ИФА. Исследованиями установлено, что антитела в сыворотке крови коров, вырабатывались на все три токсина Cl. рerfringenes на одинаковом уровне. Наиболее активны были выработаны к эпсилон токсину у 50 % животных, к бета – 40 % и к альфа – 30 %. Антитела отсутствовали или были на низком уровне у 5 коров из 16 к альфа токсину; к бета токсину отсутствовали у 2-х; к эпсилону – с низким титром отмечено у 4-х коров. К эпсилон токсину отрицательных реакций не было. Анализируя результаты ИФА можно отметить, что животные более эффективно реагируют на эпсилон токсин, и менее на альфа токсин. Между тем, среди вакцинированных животных отмечаются и толерантные животные. На все три токсина у этих животных отсутствуют антитела или отмечаются с низким титром антител. Животные, которые не реагировали на вакцину путем синтеза антител в сыворотке крови до отела, у этих животных отсутствовали антитела и в молозиве после отела.
Клостридиозы, анаэробная энтеротоксемия, сыворотка крови, коровы, антитела, экзотоксины
Короткий адрес: https://sciup.org/142242507
IDR: 142242507 | DOI: 10.31588/2413_4201_1883_3_259_308
Текст научной статьи Оценка гуморального иммунитета у коров, вакцинированных вакциной «Коглавакс»
Одним из основных задач ветеринарной науки и практики является обеспечение высокой сохранности молодняка сельскохозяйственных животных. Молодняк в ранний постнатальный период подвержен инфекционным болезням и прежде всего желудочно-кишечными [2, 5]. По мнению многих ученых в возникновении желудочно-кишечных болезней основная роль принадлежит возбудителям клостридиозной и эшерихиозной этиологии крупного рогатого скота [2, 4, 11]. Наиболее часто кишечные инфекции возникают у этих животных, вызванные возбудителем Cl. perfringenes , который имеет несколько типов А, В, С, Д и Е. У животных они имеют широкое распространение, каждый из которых вызывает тяжелые анаэробные энтеротоксемии.
Наиболее эффективным средством борьбы с клостеридиозами животных является вакцинация [3]. Для этого разработаны множество вакцин, как зарубежного, так и отечественного производства. И в этой связи, контроль результативности вакцинопрофилактики остается актуальным, т.к. низкая эффективность профилактики может привести к возникновению инфекционного процесса. Причиной этому могут быть пропуски животных при вакцинации, толерантность организма и наконец потери активности вакцины [6,7]. Поэтому при применении новых и тем более зарубежных вакцин необходимо проводить контроль за процессом иммуногенеза [9]. Одним из надежных методов контроля вакцинопрофилактики, это установление специфических антител в сыворотке крови иммунизированных животных серологическими методами.
Цель исследования – оценить поствакцинальный иммунитет у коров, привитых вакциной «Коглавакс».
Материал и методы исследования . Объектом исследований были стельные коровы черно-пестрой породы, ранее не вакцинированные. Иммунизацию проводили вакциной поливалентной инактивированной «Коглавакс», изготовленной из альфы, бета и эпсилон анатоксинов возбудителя Clostridium perfringens типов А, В, С, D, а также анатоксинов Clostridium septicum, Clostridium novyi тип B, Clostridium tetani и Clostridium chauvoei . Вакцинацию проводили согласно инструкции, путем 2-кратного введения вакцины в область шеи подкожно, в дозе 2 мл. Для создания колострального иммунитета у молодняка не вакцинированных беременных маток вакцинировали в тех же дозах дважды с интервалом 4 недели не позднее, чем за 6 и 2 недели соответственно до ожидаемых родов; ранее вакцинированных беременных маток вакцинировали в тех же дозах однократно не позднее, чем за 2 недели до ожидаемых родов.
Вакцину вводят клинически здоровым животным с соблюдением правил асептики.
Животные для исследования подбирались по принципу аналогов, которые находились в одинаковых условиях кормления и содержания. Иммуногенную активность вакцины «Коглавакс» изучали на 16 коровах.
Уровень антител в сыворотке крови и в молозиве к возбудителю Clostridium perfringens α, β, ε – токсину, устанавливали в ИФА. Для этого применяли наборы ИФА для определения антител: к эпсилону, альфа и бета токсинам, изготовленный «Biox diagnostics», Франция.
Результат исследований. До вакцинации у 16 голов (10 % от опытных животных) были исследованы пробы сыворотки крови в ИФА. Все исследованные животные по результатам ИФА были негативны, т.е. антитела к антигену Cl. perfringenes не выявлены. Далее эти животные были иммунизированы вакциной поливалентной инактивированной «Коглавакс».
Наличие антитела в сыворотки крови от вакцинированных коров к антигену Cl. рrefringenes тип В к токсинам α, β и ε, устанавливали в ИФА. Для этого образцы сыворотки крови разбавляли вдвое в фосфатно-селевом буфере. Двукратно разведенную сыворотку, каждую пробу в отдельности, в трех проворностях (к антигену α, β и ε токсин) внесли непосредственно в лунки микропланшет. То же самое проделали и с контрольными сыворотками (положительный и отрицательный контроли), согласно инструкции. Подготовленные таким образом планшеты с образцами испытуемых проб инкубировали при 37 °C в течение 2-х часов. Результаты исследований представлены в таблице 1.
Таблица 1 – Антитела сыворотки крови коров к возбудителю Cl. рerfringenes
№ п/п |
Инд.№ коров |
токсины |
|||
альфа |
бета |
эпсилон |
Титр антител в log 2 |
||
1. |
81104 |
+ |
++ |
+ |
2,9 + 0,35 |
2. |
22587 |
- |
- |
+ |
1,2 + 0,07 |
3. |
20752 |
++ |
+++ |
++ |
2,1 + 0,8 |
4. |
812183 |
+++ |
++++ |
++++ |
5,0 + 2,1 |
5. |
22770 |
+++ |
++ |
+++ |
3,3 + 2,9 |
6. |
22871 |
++++ |
++ |
++++ |
5,2 +1 ,9 |
7. |
20926 |
+++ |
++++ |
+++ |
4,9 + 2,3 |
8. |
902129 |
++++ |
+++ |
++++ |
5,0 +0 ,9 |
9. |
22706 |
+ |
- |
+ |
0,5 +0,06 |
10. |
22877 |
++++ |
++++ |
++++ |
5,2 + 2,2 |
11. |
91303 |
- |
++ |
+ |
0,2 +0,06 |
12. |
61303 |
- |
+++ |
+ |
0,8 +0,1 |
13. |
26178 |
+++ |
++++ |
++++ |
5,2 + 2,0 |
14. |
26177 |
++++ |
++++ |
++++ |
5,1 +1,7 |
15. |
26101 |
+++ |
++++ |
++++ |
4,9 + 2,0 |
16. |
26099 |
+++ |
++++ |
++++ |
4,5 +1,7 |
Примечание: «-» - отрицательная проба; «+» - положительная проба
В таблице представлены результаты ИФА по степени активности антител в пробах сыворотки крови. Наиболее активные пробы выражены в 4-и креста и наименее – в 1 и 2 креста.
Как видно из таблицы, у стельных коров после вакцинации установлено наличие антител в сыворотке крови.
Титры антител в сыворотке крови коров вырабатывались на все три токсина Cl. рerfringenes на одном уровне. Наиболее активны антитела были выработаны к эпсилон токсину у 50 % животных, к бета – 40 % и к альфа – 30 %. Антитела отсутствовали или были на низком уровне у 5 коров из 16 к альфа токсину; к бета токсину отсутствовали у 2-х; к эпсилону – с низким титром отмечено у 4-х коров. К эпсилон токсину отрицательных реакций не было.
Анализируя результаты ИФА можно отметить, что животные более активно реагируют на эпсилон токсин, и менее к альфа токсину. Между тем, среди вакцинированных животных отмечаются и толерантные животные. На все три токсина у этих животных отсутствуют антитела или отмечаются с низким титром антител.
На втором этапе опытов провели определение специфических антител в молозиве от отелившихся коров. Результаты исследований представлены в таблице 2.
Таблица 2 – Титр Ат в молозиве к Cl. рerfringenes в ИФА
№ п/п |
Инд. № коров |
Титры Ат, log2 + m, экзотоксины |
||
α |
β |
ε |
||
1. |
81104 |
2,8 + 0,35 |
3,1 + 0,21 |
2,9 + 1,1 |
2. |
22587 |
0,2 + 0,9 |
0,2 + 0,1 |
0,9 +1 ,2 |
3. |
20752 |
1,9 + 0,4 |
2,0 + 0,8 |
2,5 +1 ,2 |
4. |
812183 |
3,5 + 1,2 |
5,6 + 2,1 |
6,1 +2 ,9 |
5. |
22770 |
3,7 +1 ,9 |
3,1 + 2,9 |
3,2 + 2,1 |
6. |
22871 |
4,6 +1 ,2 |
4,4 +1 ,7 |
6,7 +2 ,7 |
7. |
20926 |
3,9 + 1,6 |
5,5 +1 ,8 |
5,4 +1 ,2 |
8. |
902129 |
4,3 +2 ,3 |
3,9 +2 ,1 |
6,8 +2 ,1 |
9. |
22706 |
0,2 +1 ,1 |
0,4 + 0,2 |
0,8 +1 ,7 |
10. |
22877 |
3,7 +1 ,8 |
5,2 +1 ,8 |
6,7 +2 ,2 |
11. |
91303 |
0,3 +1,0 |
0,2 + 0,1 |
0,2 + 0,1 |
12. |
61303 |
0,2 + 0,1 |
2,1 + 0,7 |
0,3 + 0,2 |
13. |
26178 |
3,6 + 0,7 |
5,1 + 0,9 |
6,9 +1 ,9 |
14. |
26177 |
4,2 + 0,8 |
5,2 +1 ,7 |
6,1 + 2,0 |
15. |
26101 |
3,2 + 0,7 |
5,3 +1 ,8 |
6,2 +2 ,0 |
16. |
26099 |
2,2 + 0,7 |
5,4 + 2,0 |
6,1 +1 ,9 |
Средний титр |
2,6 + 0,54 |
3,5 + 0,35 |
4,2 +1,4 |
Экспериментальные исследования показали, что антитела в молозиве у коров сохранялись и после отела. Средние титры секреторных антител молозива к альфа токсину составили 2,6 + 0,54 log2; к бета токсину – 3,5 + 0,35 log2; к эпсилон токсину – 4,2 +1,4 log2. Животные, которые не реагировали на вакцину путем синтеза антител в сыворотке крови до отела, у этих животных отсутствовали титры антител в молозиве и после отела. Коровы с порядковыми номерами 2, 9, 11, и 12 показали отрицательные результаты в ИФА, у этих животных в молозиве отсутствовали антитела.
Заключение. Результаты проведенных исследований позволяют заключить, что вакцина поливалентная инактивированная, изготовленная из альфа, бета и эпсилон анатоксинов возбудителя Clostridium perfringens типов А, В С, D, а также анатоксинов Clostridium septicum, Clostridium novyi тип B, Clostridium tetani и Clostridium chauvoei веденная стельным коровам создает гуморальный поствакцинальный иммунитет. Исследованиями установлено, что синтез антител идет на все токсины возбудителя Clostridium perfringens. Однако наиболее активны в ИФА антитела к эпсилону и бета токсину. В молозиве антитела в этой же последовательности в серологической реакции сохраняются. Между тем, среди вакцинированных животных отмечаются и толерантные животные. На все три токсина у этих животных отсутствуют антитела или отмечаются с низким титром. У этих животных антитела отсутствуют и в молозиве после отела. Причинный фактор феномена иммунологической толерантности крупного рогатого скота в данном случае можно объяснить введением сверхбольших или сверхмалых доз вакцины. Возможно, так же частые или многократные иммунизация взрослых животных. Механизм иммунологической толерантности сводится в том, что вакцина, веденная в организм плохо, или не захватывается фагоцитами и следствие чего не успевает фагоцитироваться и информация об антигене не передается к Т и В – лимфоцитам, так как в развитии иммунологической толерантности участвуют макрофаги и лимфоциты. Толерантность может быть адаптировано и в постнатальном периоде у молодняка животных. Повысить иммунологическую резистентность таких животных возможно с применением иммуностимулирующих препаратов.
Список литературы Оценка гуморального иммунитета у коров, вакцинированных вакциной «Коглавакс»
- Антонов, Б. И. Лабораторные исследования в ветеринарии. Бактериальные инфекции: справочник / Б. И. Антонова. – Москва: Αгропромиздат, 1986. – 352 с.
- Галиуллин, А. К. Обнаружение ботулинического токсина в консервированных продуктах / А. К. Галиуллин, Ю. В. Красовская, Э. А. Магдеева // Научная жизнь. – 2022. – Т. 17. – № 1. – С. 136-146.
- Галиуллин, А. К. Ботулизм: биология возбудителя, лабораторная диагностика и меры борьбы: монография / А. К. Галиуллин, Ю. В. Красовская, Р. А. Волков [и др.] // Издательство «Отечество», Казань. – 2022. – 121с.
- Капустин, А. В. Эффективность применения вакцины «Клостбовак-8» против клостридиозов крупного рогатого скота, вызванных различными видами Clostridium spp. / А. В. Капустин, О. Д. Скляров, А. И. Лаишевцев // Ветеринарии, зоотехния и биотехнология. – 2016. – № 9. – 2016. – С. 6-11.
- Капустин, А. В. Способ контроля иммуногенной активности ассоциированной вакцины против инфекционых болезней крупного рогатого скота, вызванных различными видами бактерий рода Clostridium spp. / А. В. Капустин // Ветеринария и кормление. – 2017. – № 3. – С. 47-49.
- Лобзин, Ю. В. Современные представления об этиопатогенетических и генетических особенностях токсинов Сlostridium perfringens / Ю. В. Лобзин, А. С. Кветная, Н. В. Скрипченко, Л. И. Железова // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунологии. – 2021. – Т. 98. – № 1. – С. 91-97.
- Методические указания по бактериологической диагностике колибактериоза (эшерихиоза) животных: утверждены Министерством сельского хозяйства Российской Федерации от 27 июля 2000 г. № 13-7-2/2117: введены в действие 2001-01-01. – Москва: Россельхозиздат, 2000. – 17 с.
- Методическими указаниями по лабораторной диагностике инфекционной энтеротоксемии животных и анаэробной дизентерии ягнят: утверждены Главным управлением ветеринарии Министерства сельского хозяйства СССР 15 февраля 1984 г.: введены в действие 1984-15-02. – Москва: Россельхозиздат, 1984 – 11 с.
- Позов, С. А. Влияние качества молозива на развитие диспепсии у телят / С. А. Позов, В. А. Порублев, Н. Е. Орлов // Ветеринарный врач. – 2018. – № 1. – С. 34-37.
- Скляров О. Д. Изучение иммуногенной активности столбнячного компонента в составе ассоциированной вакцины против клостридиозов крупного рогатого скота // Ветеринария Кубани. – 2016. – № 4. – С. 15-17.
- Спиридонов, А. Г. Изыскание оптимальной питательной среды для получения анатоксинов бактерий Сlostridium perfringens / А. Г. Спиридонов, Х. Н. Макаев, Г. Н. Спиридонов, А. Ф. Махмутов, М. Т. Хурамшина // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. – 2020. – Т. 244. – № 4. – С. 188-191.
- Спиридонов, А. Г. Биологические свойства бактерий Clostridium perfringens, выделенных в регионе Среднего Поволжья от больных анаэробной энтеротоксемией телят / А. Г. Спиридонов, А. Ф. Махмутов, Г. Н. Спиридонов [и др.] // Ветеринарный врач. – 2022. – № 1. – С. 41-46.
- Kapustin, A. V. Pasteurellosis of cattle caused by Mannheimia Haemolytica / A. V. Kapustin, A. I. Laishevtcev // Russian Journal of Agricultural and Socio-Economic Sciences. – 2016. Т. 52. – № 4. – P. 3-1.