Оценка гуморального иммунитета у коров, вакцинированных вакциной «Коглавакс»
Автор: Яблоков М.А., Галиуллин А.К., Ермолина С.А.
Статья в выпуске: 3 т.259, 2024 года.
Бесплатный доступ
Целью исследования явилось изучение поствакцинального иммунитета у коров, привитых вакциной «Коглавакс». Антитела в сыворотке крови вакцинированных коров к антигену возбудителя Cl. prefringenes токсинам α, β и ε, устанавливали в ИФА. Исследованиями установлено, что антитела в сыворотке крови коров, вырабатывались на все три токсина Cl. рerfringenes на одинаковом уровне. Наиболее активны были выработаны к эпсилон токсину у 50 % животных, к бета – 40 % и к альфа – 30 %. Антитела отсутствовали или были на низком уровне у 5 коров из 16 к альфа токсину; к бета токсину отсутствовали у 2-х; к эпсилону – с низким титром отмечено у 4-х коров. К эпсилон токсину отрицательных реакций не было. Анализируя результаты ИФА можно отметить, что животные более эффективно реагируют на эпсилон токсин, и менее на альфа токсин. Между тем, среди вакцинированных животных отмечаются и толерантные животные. На все три токсина у этих животных отсутствуют антитела или отмечаются с низким титром антител. Животные, которые не реагировали на вакцину путем синтеза антител в сыворотке крови до отела, у этих животных отсутствовали антитела и в молозиве после отела.
Клостридиозы, анаэробная энтеротоксемия, сыворотка крови, коровы, антитела, экзотоксины
Короткий адрес: https://sciup.org/142242507
IDR: 142242507 | УДК: 619:615.37:636.2 | DOI: 10.31588/2413_4201_1883_3_259_308
Evaluation of humoral immunity in cows vaccinated with Coglavax vaccine
The goal of the study was to investigate post-vaccinal immunity in cows vaccinated with Coglavax vaccine. Antibodies in the blood serum of vaccinated cows to the antigen of the pathogen Cl. prefringenes to α, β and ε toxins were determined by ELISA. The studies showed that antibodies in the blood serum of cows were produced to all three Cl. prefringenes toxins at the same level. The most active ones were produced to epsilon toxin in 50 % of animals, to beta – 40 % and to alpha – 30 %. Antibodies were absent or at low levels in 5 out of 16 cows to alpha toxin; to beta toxin were absent in 2; to epsilon - with low titer was noted in 4 cows. There were no negative reactions to epsilon toxin. Analyzing the results of ELISA it can be noted that animals react more effectively to epsilon toxin, and less to alpha toxin. Meanwhile, tolerant animals are also observed among the vaccinated animals. These animals have no antibodies to all three toxins or have low antibody titers. There were no antibodies in the colostrum after calving in the animals that did not respond to the vaccine by synthesizing antibodies in blood serum before calving.
Текст научной статьи Оценка гуморального иммунитета у коров, вакцинированных вакциной «Коглавакс»
Одним из основных задач ветеринарной науки и практики является обеспечение высокой сохранности молодняка сельскохозяйственных животных. Молодняк в ранний постнатальный период подвержен инфекционным болезням и прежде всего желудочно-кишечными [2, 5]. По мнению многих ученых в возникновении желудочно-кишечных болезней основная роль принадлежит возбудителям клостридиозной и эшерихиозной этиологии крупного рогатого скота [2, 4, 11]. Наиболее часто кишечные инфекции возникают у этих животных, вызванные возбудителем Cl. perfringenes , который имеет несколько типов А, В, С, Д и Е. У животных они имеют широкое распространение, каждый из которых вызывает тяжелые анаэробные энтеротоксемии.
Наиболее эффективным средством борьбы с клостеридиозами животных является вакцинация [3]. Для этого разработаны множество вакцин, как зарубежного, так и отечественного производства. И в этой связи, контроль результативности вакцинопрофилактики остается актуальным, т.к. низкая эффективность профилактики может привести к возникновению инфекционного процесса. Причиной этому могут быть пропуски животных при вакцинации, толерантность организма и наконец потери активности вакцины [6,7]. Поэтому при применении новых и тем более зарубежных вакцин необходимо проводить контроль за процессом иммуногенеза [9]. Одним из надежных методов контроля вакцинопрофилактики, это установление специфических антител в сыворотке крови иммунизированных животных серологическими методами.
Цель исследования – оценить поствакцинальный иммунитет у коров, привитых вакциной «Коглавакс».
Материал и методы исследования . Объектом исследований были стельные коровы черно-пестрой породы, ранее не вакцинированные. Иммунизацию проводили вакциной поливалентной инактивированной «Коглавакс», изготовленной из альфы, бета и эпсилон анатоксинов возбудителя Clostridium perfringens типов А, В, С, D, а также анатоксинов Clostridium septicum, Clostridium novyi тип B, Clostridium tetani и Clostridium chauvoei . Вакцинацию проводили согласно инструкции, путем 2-кратного введения вакцины в область шеи подкожно, в дозе 2 мл. Для создания колострального иммунитета у молодняка не вакцинированных беременных маток вакцинировали в тех же дозах дважды с интервалом 4 недели не позднее, чем за 6 и 2 недели соответственно до ожидаемых родов; ранее вакцинированных беременных маток вакцинировали в тех же дозах однократно не позднее, чем за 2 недели до ожидаемых родов.
Вакцину вводят клинически здоровым животным с соблюдением правил асептики.
Животные для исследования подбирались по принципу аналогов, которые находились в одинаковых условиях кормления и содержания. Иммуногенную активность вакцины «Коглавакс» изучали на 16 коровах.
Уровень антител в сыворотке крови и в молозиве к возбудителю Clostridium perfringens α, β, ε – токсину, устанавливали в ИФА. Для этого применяли наборы ИФА для определения антител: к эпсилону, альфа и бета токсинам, изготовленный «Biox diagnostics», Франция.
Результат исследований. До вакцинации у 16 голов (10 % от опытных животных) были исследованы пробы сыворотки крови в ИФА. Все исследованные животные по результатам ИФА были негативны, т.е. антитела к антигену Cl. perfringenes не выявлены. Далее эти животные были иммунизированы вакциной поливалентной инактивированной «Коглавакс».
Наличие антитела в сыворотки крови от вакцинированных коров к антигену Cl. рrefringenes тип В к токсинам α, β и ε, устанавливали в ИФА. Для этого образцы сыворотки крови разбавляли вдвое в фосфатно-селевом буфере. Двукратно разведенную сыворотку, каждую пробу в отдельности, в трех проворностях (к антигену α, β и ε токсин) внесли непосредственно в лунки микропланшет. То же самое проделали и с контрольными сыворотками (положительный и отрицательный контроли), согласно инструкции. Подготовленные таким образом планшеты с образцами испытуемых проб инкубировали при 37 °C в течение 2-х часов. Результаты исследований представлены в таблице 1.
Таблица 1 – Антитела сыворотки крови коров к возбудителю Cl. рerfringenes
|
№ п/п |
Инд.№ коров |
токсины |
|||
|
альфа |
бета |
эпсилон |
Титр антител в log 2 |
||
|
1. |
81104 |
+ |
++ |
+ |
2,9 + 0,35 |
|
2. |
22587 |
- |
- |
+ |
1,2 + 0,07 |
|
3. |
20752 |
++ |
+++ |
++ |
2,1 + 0,8 |
|
4. |
812183 |
+++ |
++++ |
++++ |
5,0 + 2,1 |
|
5. |
22770 |
+++ |
++ |
+++ |
3,3 + 2,9 |
|
6. |
22871 |
++++ |
++ |
++++ |
5,2 +1 ,9 |
|
7. |
20926 |
+++ |
++++ |
+++ |
4,9 + 2,3 |
|
8. |
902129 |
++++ |
+++ |
++++ |
5,0 +0 ,9 |
|
9. |
22706 |
+ |
- |
+ |
0,5 +0,06 |
|
10. |
22877 |
++++ |
++++ |
++++ |
5,2 + 2,2 |
|
11. |
91303 |
- |
++ |
+ |
0,2 +0,06 |
|
12. |
61303 |
- |
+++ |
+ |
0,8 +0,1 |
|
13. |
26178 |
+++ |
++++ |
++++ |
5,2 + 2,0 |
|
14. |
26177 |
++++ |
++++ |
++++ |
5,1 +1,7 |
|
15. |
26101 |
+++ |
++++ |
++++ |
4,9 + 2,0 |
|
16. |
26099 |
+++ |
++++ |
++++ |
4,5 +1,7 |
Примечание: «-» - отрицательная проба; «+» - положительная проба
В таблице представлены результаты ИФА по степени активности антител в пробах сыворотки крови. Наиболее активные пробы выражены в 4-и креста и наименее – в 1 и 2 креста.
Как видно из таблицы, у стельных коров после вакцинации установлено наличие антител в сыворотке крови.
Титры антител в сыворотке крови коров вырабатывались на все три токсина Cl. рerfringenes на одном уровне. Наиболее активны антитела были выработаны к эпсилон токсину у 50 % животных, к бета – 40 % и к альфа – 30 %. Антитела отсутствовали или были на низком уровне у 5 коров из 16 к альфа токсину; к бета токсину отсутствовали у 2-х; к эпсилону – с низким титром отмечено у 4-х коров. К эпсилон токсину отрицательных реакций не было.
Анализируя результаты ИФА можно отметить, что животные более активно реагируют на эпсилон токсин, и менее к альфа токсину. Между тем, среди вакцинированных животных отмечаются и толерантные животные. На все три токсина у этих животных отсутствуют антитела или отмечаются с низким титром антител.
На втором этапе опытов провели определение специфических антител в молозиве от отелившихся коров. Результаты исследований представлены в таблице 2.
Таблица 2 – Титр Ат в молозиве к Cl. рerfringenes в ИФА
|
№ п/п |
Инд. № коров |
Титры Ат, log2 + m, экзотоксины |
||
|
α |
β |
ε |
||
|
1. |
81104 |
2,8 + 0,35 |
3,1 + 0,21 |
2,9 + 1,1 |
|
2. |
22587 |
0,2 + 0,9 |
0,2 + 0,1 |
0,9 +1 ,2 |
|
3. |
20752 |
1,9 + 0,4 |
2,0 + 0,8 |
2,5 +1 ,2 |
|
4. |
812183 |
3,5 + 1,2 |
5,6 + 2,1 |
6,1 +2 ,9 |
|
5. |
22770 |
3,7 +1 ,9 |
3,1 + 2,9 |
3,2 + 2,1 |
|
6. |
22871 |
4,6 +1 ,2 |
4,4 +1 ,7 |
6,7 +2 ,7 |
|
7. |
20926 |
3,9 + 1,6 |
5,5 +1 ,8 |
5,4 +1 ,2 |
|
8. |
902129 |
4,3 +2 ,3 |
3,9 +2 ,1 |
6,8 +2 ,1 |
|
9. |
22706 |
0,2 +1 ,1 |
0,4 + 0,2 |
0,8 +1 ,7 |
|
10. |
22877 |
3,7 +1 ,8 |
5,2 +1 ,8 |
6,7 +2 ,2 |
|
11. |
91303 |
0,3 +1,0 |
0,2 + 0,1 |
0,2 + 0,1 |
|
12. |
61303 |
0,2 + 0,1 |
2,1 + 0,7 |
0,3 + 0,2 |
|
13. |
26178 |
3,6 + 0,7 |
5,1 + 0,9 |
6,9 +1 ,9 |
|
14. |
26177 |
4,2 + 0,8 |
5,2 +1 ,7 |
6,1 + 2,0 |
|
15. |
26101 |
3,2 + 0,7 |
5,3 +1 ,8 |
6,2 +2 ,0 |
|
16. |
26099 |
2,2 + 0,7 |
5,4 + 2,0 |
6,1 +1 ,9 |
|
Средний титр |
2,6 + 0,54 |
3,5 + 0,35 |
4,2 +1,4 |
|
Экспериментальные исследования показали, что антитела в молозиве у коров сохранялись и после отела. Средние титры секреторных антител молозива к альфа токсину составили 2,6 + 0,54 log2; к бета токсину – 3,5 + 0,35 log2; к эпсилон токсину – 4,2 +1,4 log2. Животные, которые не реагировали на вакцину путем синтеза антител в сыворотке крови до отела, у этих животных отсутствовали титры антител в молозиве и после отела. Коровы с порядковыми номерами 2, 9, 11, и 12 показали отрицательные результаты в ИФА, у этих животных в молозиве отсутствовали антитела.
Заключение. Результаты проведенных исследований позволяют заключить, что вакцина поливалентная инактивированная, изготовленная из альфа, бета и эпсилон анатоксинов возбудителя Clostridium perfringens типов А, В С, D, а также анатоксинов Clostridium septicum, Clostridium novyi тип B, Clostridium tetani и Clostridium chauvoei веденная стельным коровам создает гуморальный поствакцинальный иммунитет. Исследованиями установлено, что синтез антител идет на все токсины возбудителя Clostridium perfringens. Однако наиболее активны в ИФА антитела к эпсилону и бета токсину. В молозиве антитела в этой же последовательности в серологической реакции сохраняются. Между тем, среди вакцинированных животных отмечаются и толерантные животные. На все три токсина у этих животных отсутствуют антитела или отмечаются с низким титром. У этих животных антитела отсутствуют и в молозиве после отела. Причинный фактор феномена иммунологической толерантности крупного рогатого скота в данном случае можно объяснить введением сверхбольших или сверхмалых доз вакцины. Возможно, так же частые или многократные иммунизация взрослых животных. Механизм иммунологической толерантности сводится в том, что вакцина, веденная в организм плохо, или не захватывается фагоцитами и следствие чего не успевает фагоцитироваться и информация об антигене не передается к Т и В – лимфоцитам, так как в развитии иммунологической толерантности участвуют макрофаги и лимфоциты. Толерантность может быть адаптировано и в постнатальном периоде у молодняка животных. Повысить иммунологическую резистентность таких животных возможно с применением иммуностимулирующих препаратов.
Список литературы Оценка гуморального иммунитета у коров, вакцинированных вакциной «Коглавакс»
- Антонов, Б. И. Лабораторные исследования в ветеринарии. Бактериальные инфекции: справочник / Б. И. Антонова. – Москва: Αгропромиздат, 1986. – 352 с.
- Галиуллин, А. К. Обнаружение ботулинического токсина в консервированных продуктах / А. К. Галиуллин, Ю. В. Красовская, Э. А. Магдеева // Научная жизнь. – 2022. – Т. 17. – № 1. – С. 136-146.
- Галиуллин, А. К. Ботулизм: биология возбудителя, лабораторная диагностика и меры борьбы: монография / А. К. Галиуллин, Ю. В. Красовская, Р. А. Волков [и др.] // Издательство «Отечество», Казань. – 2022. – 121с.
- Капустин, А. В. Эффективность применения вакцины «Клостбовак-8» против клостридиозов крупного рогатого скота, вызванных различными видами Clostridium spp. / А. В. Капустин, О. Д. Скляров, А. И. Лаишевцев // Ветеринарии, зоотехния и биотехнология. – 2016. – № 9. – 2016. – С. 6-11.
- Капустин, А. В. Способ контроля иммуногенной активности ассоциированной вакцины против инфекционых болезней крупного рогатого скота, вызванных различными видами бактерий рода Clostridium spp. / А. В. Капустин // Ветеринария и кормление. – 2017. – № 3. – С. 47-49.
- Лобзин, Ю. В. Современные представления об этиопатогенетических и генетических особенностях токсинов Сlostridium perfringens / Ю. В. Лобзин, А. С. Кветная, Н. В. Скрипченко, Л. И. Железова // Журнал микробиологии, эпидемиологии и иммунологии. – 2021. – Т. 98. – № 1. – С. 91-97.
- Методические указания по бактериологической диагностике колибактериоза (эшерихиоза) животных: утверждены Министерством сельского хозяйства Российской Федерации от 27 июля 2000 г. № 13-7-2/2117: введены в действие 2001-01-01. – Москва: Россельхозиздат, 2000. – 17 с.
- Методическими указаниями по лабораторной диагностике инфекционной энтеротоксемии животных и анаэробной дизентерии ягнят: утверждены Главным управлением ветеринарии Министерства сельского хозяйства СССР 15 февраля 1984 г.: введены в действие 1984-15-02. – Москва: Россельхозиздат, 1984 – 11 с.
- Позов, С. А. Влияние качества молозива на развитие диспепсии у телят / С. А. Позов, В. А. Порублев, Н. Е. Орлов // Ветеринарный врач. – 2018. – № 1. – С. 34-37.
- Скляров О. Д. Изучение иммуногенной активности столбнячного компонента в составе ассоциированной вакцины против клостридиозов крупного рогатого скота // Ветеринария Кубани. – 2016. – № 4. – С. 15-17.
- Спиридонов, А. Г. Изыскание оптимальной питательной среды для получения анатоксинов бактерий Сlostridium perfringens / А. Г. Спиридонов, Х. Н. Макаев, Г. Н. Спиридонов, А. Ф. Махмутов, М. Т. Хурамшина // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. – 2020. – Т. 244. – № 4. – С. 188-191.
- Спиридонов, А. Г. Биологические свойства бактерий Clostridium perfringens, выделенных в регионе Среднего Поволжья от больных анаэробной энтеротоксемией телят / А. Г. Спиридонов, А. Ф. Махмутов, Г. Н. Спиридонов [и др.] // Ветеринарный врач. – 2022. – № 1. – С. 41-46.
- Kapustin, A. V. Pasteurellosis of cattle caused by Mannheimia Haemolytica / A. V. Kapustin, A. I. Laishevtcev // Russian Journal of Agricultural and Socio-Economic Sciences. – 2016. Т. 52. – № 4. – P. 3-1.