Определение консенсусных генотипов по микросателлитам у музейных краниологических образцов крупного рогатого скота (Вos taurus)
Автор: Абдельманова А.С., Волкова В.В., Харзинова В.Р., Форнара М.С., Чинаров Р.Ю., Боронецкая О.И., Трухачев В.И., Brem G., Зиновьева Н.А.
Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology
Рубрика: Генетика и геномика
Статья в выпуске: 6 т.58, 2023 года.
Бесплатный доступ
Анализ ДНК древних и исторических образцов, в том числе экземпляров из музейных и краниологических коллекций, неоценим как способ получения генетической информации для реконструкции происхождения локальных пород животных. Принимая во внимание высокую степень деградации ДНК в большинстве таких образцов, исследования проводят, как правило, на митохондриальном геноме, поскольку он присутствует в сотнях или даже тысячах копий в одной клетке. Однако в некоторых случаях исследование митохондриальной ДНК (мтДНК) не позволяет в полной мере проследить демографическую историю видов и пород, особенно при вовлечении в скрещивания производителей, представляющих улучшающие породы. Информативным инструментом для анализа такого рода демографических событий служат микросателлиты, или короткие тандемные повторы (STR). Однако генотипирование микросателлитов при использовании ДНК, выделенной из музейных образцов, сопряжено с повышенным риском ошибок амплификации. Цель нашей работы - усовершенствование алгоритма определения консенсусных генотипов STR-маркеров для проб, содержащих сильно деградированную ДНК, и оценка его эффективности на музейных образцах костной ткани крупного рогатого скота. Материалом для исследования служили музейные экспонаты черепов крупного рогатого скота, датированные концом XIX-первой половиной XX века, хранящиеся в краниологической коллекции Музея животноводства им. Е.Ф. Лискуна (РГАУ - МСХА им. К.А. Тимирязева, г. Москва). Образцы генотипировали с помощью мультиплексной панели, включавшей 11 микросателлитных локусов, рекомендованных Международным обществом генетики животных (ISAG), по протоколам, принятым в ФГБНУ ФИЦ ВИЖ им. академика Л.К. Эрнста. Успешность амплификации для каждого локуса в образце оценивали на основании расчета индексов качества генотипирования (quality indices, QI). Наиболее часто встречающийся генотип кодировали как 1, а отличающиеся от него за счет выпадения аллелей (allelic drop-out, ADO) или ложных аллелей (false alleles, FA) генотипы - как 0. Далее рассчитывали долю генотипов со значением 1 по отношению к общему числу повторов. Пороговое значение для QI было установлено на уровне 0,75. В консенсусный генотип включали генотипы, показавшие частоту встречаемости выше порогового значения для каждого локуса. Тестирование алгоритма выполнено на 144 музейных образцах черно-пестрого, турано-монгольского, палево-пестрого и бурого крупного рогатого скота. Полный профиль (11 микросателлитных локусов) удалось получить для 60,42 % случаев. Качество генотипирования в большинстве локусов (9 из 11 исследованных) было выше 0,950, варьируя от 0,951±0,011 в локусе TGLA122 до 0,995±0,003 в локусе BM2113. По результативности наименее успешным оказалось генотипирование локусов TGLA53 и BM1818 (соответственно 74,86 % и 61,45 %). Выявлена положительная корреляция на уровне тенденции ( r 2 = 0,53; p = 0.09) между размером аллелей в локусе и долей ошибок генотипирования. Поскольку изучение аллелофонда популяций невозможно без получения корректных генотипов, предложенный нами алгоритм, обеспечивающий вероятность корректного генотипирования p function show_abstract() { $('#abstract1').hide(); $('#abstract2').show(); $('#abstract_expand').hide(); }
Микросателлиты, ошибки генотипирования, консенсусный генотип, крупный рогатый скот, музейные образцы
Короткий адрес: https://sciup.org/142240675
IDR: 142240675 | DOI: 10.15389/agrobiology.2023.6.1035rus
Список литературы Определение консенсусных генотипов по микросателлитам у музейных краниологических образцов крупного рогатого скота (Вos taurus)
- McHugo G.P., Dover M.J., MacHugh D.E. Unlocking the origins and biology of domestic ani-mals using ancient DNA and paleogenomics. BMC Biol., 2019, 17(1): 98 (doi: 10.1186/s12915-019-0724-7).
- Edwards C.J., Connellan J., Wallace P.F., Park S.D.E., McCormick F.M., Olsaker I., Eythórsdót-tir E., MacHugh D.E., Bailey J.F., Bradley D.G. Feasibility and utility of microsatellite markers in archaeological cattle remains from a Viking Age settlement in Dublin. Animal Genetics, 2003, 34: 410-416 (doi: 10.1046/j.0268-9146.2003.01043.x).
- Chen N., Cai Y., Chen Q., Li R., Wang K., Huang Y., Hu S., Huang S., Zhang H., Zheng Z., Song W., Ma Z., Ma Y., Dang R., Zhang Z., Xu L., Jia Y., Liu S., Yue X., Deng W., Zhang X., Sun Z., Lan X., Han J., Chen H., Bradley D.G., Jiang Y., Lei C. Whole-genome resequencing reveals world-wide ancestry and adaptive introgression events of domesticated cattle in East Asia. Nature Communications, 2018, 9(1): 2337 (doi: 10.1038/s41467-018-04737-0).
- Rowe K.C., Singhal S., Macmanes M.D., Ayroles J.F., Morelli T.L., Rubidge E.M., Bi K., Moritz C.C. Museum genomics: low-cost and high-accuracy genetic data from historical specimens. Molecular Ecology Resources, 2011, 11(6):1082-1092 (doi: 10.1111/j.1755-0998.2011.03052.x).
- Billerman S.M., Walsh J. Historical DNA as a tool to address key questions in avian biology and evolution: A review of methods, challenges, applications, and future directions. Molecular Ecology Resources, 2019, 19(5): 1115-1130 (doi: 10.1111/1755-0998.13066).
- Зиновьева Н.А., Сермягин А.А., Доцев А.В., Боронецкая О.И., Петрикеева Л.В., Абдель-манова А.С., Brem G. Генетические ресурсы животных: развитие исследований аллело-фонда российских пород крупного рогатого скота — мини-обзор. Сельскохозяйственная биология, 2019, 54(4): 631-641 (doi: 10.15389/agrobiology.2019.4.631rus).
- Lari M., Rizzi E., Mona S., Corti G., Catalano G., Chen K., Vernesi C., Larson G., Boscato P., De Bellis G., Cooper A., Caramelli D., Bertorelle G. The complete mitochondrial genome of an 11,450-year-old Aurochsen (Bos primigenius) from Central Italy. BMC Evol. Biol., 2011, 11: 32 (doi: 10.1186/1471-2148-11-32).
- Scheu A., Powell A., Bollongino R., Vigne J.D., Tresset A., Çakırlar C., Benecke N., Burger J. The genetic prehistory of domesticated cattle from their origin to the spread across Europe. BMC Genet., 2015, 16: 54 (doi: 10.1186/s12863-015-0203-2).
- Zhang X., Yang L., Zhao X., Xiang H. The complete mitochondrial genome of an ancient cattle (Bos taurus) from Taosi site, China, and its phylogenetic assessment. Mitochondrial DNA B Re-sources, 2022, 7(5): 804-806 (doi: 10.1080/23802359.2022.2073834).
- Gargani M., Pariset L., Lenstra J.A., De Minicis E., European Cattle Genetic Diversity Consortium, Valentini A. Microsatellite genotyping of medieval cattle from central Italy suggests an old origin of Chianina and Romagnola cattle. Front. Genet., 2015, 6: 68 (doi: 10.3389/fgene.2015.00068).
- Ballard J.W., Whitlock M.C. The incomplete natural history of mitochondria. Mol. Ecol., 2004, 13(4): 729-744 (doi: 10.1046/j.1365-294x.2003.02063.x).
- Глазко В.И., Косовский Г.Ю., Глазко Т.Т., Федорова Л.М. ДНК маркеры и «микро-сателлитный код» (обзор). Сельскохозяйственная биология, 2023, 58(2): 223-248 (doi: 10.15389/agrobiology.2023.2.223rus).
- Brenig B., Schütz E. Recent development of allele frequencies and exclusion probabilities of microsatellites used for parentage control in the German Holstein Friesian cattle population. BMC Genet., 2016, 17: 18 (doi: 10.1186/s12863-016-0327-z).
- Taberlet P., Waits L.P., Luikart G. Noninvasive genetic sampling: look before you leap. Trends in Ecology & Evolution, 1999, 14(8): 323-327 (doi: 10.1016/s0169-5347(99)01637-7).
- Taberlet P., Griffin S., Goossens B., Questiau S., Manceau V., Escaravage N., Waits L.P., Bou-vet J. Reliable genotyping of samples with very low DNA quantities using PCR. Nucleic Acids Research, 1996, 24(16): 3189-3194 (doi: 10.1093/nar/24.16.3189).
- Schlötterer C., Tautz D. Slippage synthesis of simple sequence DNA. Nucleic Acids Research, 1992, 20(2): 211-215 (doi: 10.1093/nar/20.2.211).
- Navidi W., Arnheim N., Waterman M.S. A multiple-tubes approach for accurate genotyping of very small DNA samples by using PCR: statistical considerations. American Journal of Human Genetics, 1992, 50(2): 347-359.
- Abdelmanova A.S., Kharzinova V.R., Volkova V.V., Dotsev A.V., Sermyagin A.A., Boro-netskaya O.I., Chinarov R.Y., Lutshikhina E.M., Sölkner J., Brem G., Zinovieva N.A. Compar-ative study of the genetic diversity of local steppe cattle breeds from Russia, Kazakhstan and Kyrgyzstan by microsatellite analysis of museum and modern samples. Diversity, 2021, 13(8): 351 (doi: 10.3390/d13080351).
- Arandjelovic M., Guschanski K., Schubert G., Harris T.R., Thalmann O., Siedel H., Vigilant L. Two-step multiplex polymerase chain reaction improves the speed and accuracy of genotyping using DNA from noninvasive and museum samples. Molecular Ecology Resources, 2009, 9(1): 28-36 (doi: 10.1111/j.1755-0998.2008.02387.x).
- FAO. Molecular genetic characterization of animal genetic resources: FAO animal production and health guidelines. Rome, Italy, 2011: 68-69. Режим доступа: http://www.fao.org/3/i2413e/i2413e00.pdf. Дата обращения 15.09.2023.
- Абдельманова А.С., Мишина А.И., Волкова В.В., Чинаров Р.Ю., Сермягин А.А., До-цев А.В., Боронецкая О.И., Петрикеева Л.В., Костюнина О.В., Brem G., Зиновьева Н.А. Методы экстракции ДНК из костных образцов крупного рогатого скота, сохраняемых в краниологической коллекции. Сельскохозяйственная биология, 2019, 54(6): 1110-1121 (doi: 10.15389/agrobiology.2019.6.1110rus).
- Mondol S., Karant K.U., Kumar N.S., Gopalaswamy A.M., Andheria A., Ramakrishnan U. Evaluation of non-invasive genetic sampling methods for estimating tiger population size. Biolog-ical Conservation, 2009, 142: 2350-2360 (doi: 10.1016/j.biocon.2009.05.014).
- Modi S., Habib B., Ghaskadbi P., Nigam P., Mondol S. Standardization and validation of a panel of cross-species microsatellites to individually identify the Asiatic wild dog (Cuon alpinus). PeerJ., 2019, 7: e7453 (doi: 10.7717/peerj.7453).
- Miquel C., Bellemain E., Poillot C., Bessière J., Durand A., Taberlet P. Quality indexes to assess the reliability of genotypes in studies using noninvasive sampling and multiple-tube approach. Molecular Ecology Notes, 2006, 6: 985-988 (doi: 10.1111/j.1471-8286.2006.01413.x).
- Broquet T., Petit E. Quantifying genotyping errors in noninvasive population genetics. Molecular Ecology, 2004, 13(11): 3601-3608 (doi: 10.1111/j.1365-294X.2004.02352.x).
- Valière N., Bonenfant C., Toïgo C., Luikart G., Gaillard J.M., Klein F. Importance of a pilot study for non-invasive genetic sampling: genotyping errors and population size estimation in red deer. Conservation Genetics, 2007, 8(1): 69-78 (doi: 10.1007/s10592-006-9149-2).
- Rehnus M., Bollmann K. Non-invasive genetic population density estimation of mountain hares (Lepus timidus) in the Alps: systematic or opportunistic sampling? European Journal of Wildlife Research, 2016, 62: 737-747 (doi: 10.1007/s10344-016-1053-6).
- He G., Huang K., Guo S., Ji W., Qi X., Ren Y., Jin X., Li B. Evaluating the reliability of microsatellite genotyping from low-quality DNA templates with a polynomial distribution model. Chin. Sci. Bull., 2011, 56: 2523-2530 (doi: 10.1007/s11434-011-4634-5).
- Hansen H., Ben-David M., McDonald D.B. Technical advances: Effects of genotyping protocols on success and errors in identifying individual river otters (Lontra canadensis) from their faeces. Molecular Ecology Resources, 2008, 8(2): 282-289 (doi: 10.1111/j.1471-8286.2007.01992.x).
- Zhan X., Zheng X., Bruford M.W., Wei F., Tao Y. A new method for quantifying genotyping errors for noninvasive genetic studies. Conservation Genetics, 2010, 11: 1567-1571 (doi: 10.1007/s10592-009-9950-9).
- Ebert C., Sandrini J., Welter B., Thiele B., Hohmann U. Estimating red deer (Cervus elaphus) population size based on non-invasive genetic sampling. European Journal of Wildlife Research, 2021, 67: 27 (doi: 10.1007/s10344-021-01456-8).
- Sefc K.M., Payne R.B., Sorenson M.D. Microsatellite amplification from museum feather sam-ples: Effects of fragment size and template concentration on genotyping errors. Auk, 2003, 120: 982-989 (doi: 10.1093/auk/120.4.982).
- Polanc P., Sindičić M., Jelenčič M., Gomerčič T., Kos I., Huber Đ. Genotyping success of his-torical Eurasian lynx (Lynx lynx L.) samples. Molecular Ecology Resources, 2012, 2: 293-298 (doi: 10.1111/j.1755-0998.2011.03084.x).
- Jamieson A., Carmagnini A., Howard-McCombe J., Doherty S., Hirons A., Dimopoulos E., Lin A.T., Allen R., Anderson-Whymark H., Barnett R., Batey C., Beglane F., Bowden W., Brat-ten J., De Cupere B., Drew E., Foley N.M., Fowler T., Fox A., Geigl E.M., Gotfredsen A.B., Grange T., Griffiths D., Groß D., Haruda A., Hjermind J., Knapp Z., Lebrasseur O., Librado P., Lyons L.A., Mainland I., McDonnell C., Muñoz-Fuentes V., Nowak C., O'Connor T., Peters J., Russo I.M., Ryan H., Sheridan A., Sinding M.S., Skoglund P., Swali P., Symmons R., Thomas G., Trolle Jensen T.Z., Kitchener A.C., Senn H., Lawson D., Driscoll C., Murphy W.J., Beaumont M., Ottoni C., Sykes N., Larson G., Frantz L. Limited historical admixture between European wildcats and domestic cats. Current Biology, 2023, 33(21): 4751-4760.e14 (doi: 10.1016/j.cub.2023.08.031).
- Uricoechea Patiño D., Collins A., Romero García O.J., Santos Vecino G., Aristizábal Espi-nosa P., Bernal Villegas J.E., Benavides Benitez E., Vergara Muñoz S., Briceño Balcázar I. Unraveling the genetic threads of history: mtDNA HVS-I analysis reveals the ancient past of the Aburra Valley. Genes (Basel), 2023, 14(11): 2036 (doi: 10.3390/genes14112036).
- Chen N., Zhang Z., Hou J., Chen J., Gao X., Tang L., Wangdue S., Zhang X., Sinding M.S., Liu X., Han J., Lü H., Lei C., Marshall F., Liu X. Evidence for early domestic yak, taurine cattle, and their hybrids on the Tibetan Plateau. Science Advances, 2023, 9(50): eadi6857 (doi: 10.1126/sciadv.adi6857).
- Zupanič Pajnič I., Geršak Ž.M., Leskovar T., Črešnar M. Kinship analysis of 5th- to 6th-century skeletons of Romanized indigenous people from the Bled-Pristava archaeological site. Forensic Science International Genetics, 2023, 65: 102886 (doi: 10.1016/j.fsigen.2023.102886).