Оптимальные питательные среды для выращивания штамма Хk-1-4 Chaetomium olivaceum Cooke et Ellis антагониста возбудителя белой гнили
Автор: Маслиенко Л.В., Курилова Д.А., Шипиевская Е.Ю.
Рубрика: Защита растений и иммунология
Статья в выпуске: 2 (148-149), 2011 года.
Бесплатный доступ
В целях разработки элементов технологического регламента производства биопрепарата на основе пер-спективного штамма гриба-антагониста Xk-1-4 Chaetomium olivaceum Cooke et Ellis определяли оптимальные пи-тательные среды для штамма продуцента в условиях стационарного и глубинного культивирования. Наиболее благоприятными естественными субстратами для штамма продуцента микробиопрепарата являлись среды на основе семянок и лузги подсолнечника с различными добавками, отходы от очистки се-мян подсолнечника и кукурузная мезга. На жидких питательных средах штамм-антагонист рос гораздо хуже, чем на естественных субстра-тах и за десять суток стационарного культивирования ни на одной из испытанных сред плодовые тела не об-разовывались. Выращивание штамма при глубинном культивировании не вызывало массового образования плодо-вых тел и спороношения, титр даже на лучшей питательной среде (Рудакова) не превышал 107 КОЕ/мл, тогда как на средах из естественных субстратов он составлял 109 КОЕ/г.
Белая гниль, штамм, антаго-нист, питательные среды, стационарное куль-тивирование, глубинное культивирование
Короткий адрес: https://sciup.org/142151009
IDR: 142151009 | УДК: 576.8:632
Optimal nutrient medium for the growth of strain-antagonist, pathogen of white rot Chaetomium olivaceum Cooke et Ellis
In order to develop the elements of technological procedure of biopreparation production, based on promis-ing strain pest-antagonist Xk-1-4 Chaetomium olivaceum Cook et Ellis, the optimal nutrient medium for the strain-producer in conditions of stationary and submerged cultivation was worked out. The most favourable natural substrate for strain-producer of microbiopreparation were mediums, based on kernels and husks of sunflower with various supplements, waste products of sunflower seed cleaning and corn pulp. In liquid nutrient medium the strain-antagonist grew much worse, than on natural substrate and during 10 days of stationary cultivation no carposomes were formed in any of the trialed nutrient medium. The growing of the strain in submerged cultivation hadn’t cause mass formation of carposomes and sporula-tion; even in better nutrient medium the titre didn’t exceed 107 CFU/ml, though in mediums of natural substrate it made up 109 CFU/ml.
Текст научной статьи Оптимальные питательные среды для выращивания штамма Хk-1-4 Chaetomium olivaceum Cooke et Ellis антагониста возбудителя белой гнили
Введение. Вредоносной болезнью многих сельскохозяйственных культур, в т. ч. и масличных (подсолнечника, сои и озимого рапса), является белая гниль ( Sclerotinia sclerotiorum (Lib.) de Bary). Основной запас инфекционного начала возбудителя белой гнили сохраняется на растительных остатках и в почве в виде склероциев.
Использование организмов-интродуцентов – один из наиболее известных и широко распространенных путей применения биологического метода защиты растений от болезней, вызываемых грибами. Микроорганизм, пригодный для получения эффективного биопрепарата, должен проявлять антагонистическую активность против патогенов в широко варьируемых условиях. Во многих странах ведутся поиски таких микроорганизмов, проводятся испытания их в полевых условиях, результаты которых показывают перспективность подобных исследований [1; 2; 3; 4; 5; 6; 7; 8; 9].
Микробиологических препаратов для снижения запаса инфекционного начала возбудителей болезней в почве и на растительных остатках чрезвычайно мало. Поэтому создание новых высокоэффективных эколо- гически безопасных микробиопрепаратов на основе штаммов, снижающих жизнеспособность склероциев белой гнили, является актуальной задачей.
В результате ступенчатого скрининга грибов и бактерий из коллекции антагонистов возбудителей болезней масличных культур лаборатории биометода ВНИИМК к возбудителю белой гнили озимого рапса отобран от-селектированный штамм Xk-1-4 Chaetomium olivaceum Cooke et Ellis, наиболее активно разлагающий склероции возбудителя болезни.
В целях разработки элементов технологического регламента производства биопрепарата на основе перспективного штамма гриба-антагониста Xk-1-4 Chaetomium oliva-ceum определяли оптимальные питательные среды для штамма продуцента в условиях стационарного и глубинного культивирования.
Материалы и методы. Для определения оптимальных питательных сред из естественных субстратов для выращивания штамма Хk-1-4 Chaetomium olivaceum субстрат промывали, размельчали, помещали в колбы Эрленмейера объёмом 750 мл, заполняя 70 % объёма, стерилизовали в автоклаве в течение часа при давлении 1,5 атм., засевали спорами и мицелием гриба и помещали в термостат с температурой 25 оС. Учёт проводили через 10 суток культивирования. Учитывали рост мицелия, интенсивность спорообразования, образование плодовых тел. Субстрат с выращенным грибом вытряхивали из колб, просушивали при температуре 30-35 оС в течение 4 суток, размалывали на шаровой мельнице до величины частиц 60 мкм и определяли титр лабораторного образца микробиопрепарата. Для этого готовили ряд последовательных разведений. 1,0 г препарата помещали в колбу со стерильной дистиллированной водой (90 мл), тщательно перемешивали, доводили объем до 100 мл и ставили на качалку на 10 минут. Разведение препарата, или его концентрация в приготовленной суспензии, составляло 10-2. Предварительно стерильную дистиллированную воду разливали по 9,0 мл в стерильные сухие пробирки. Затем отбирали 1,0 мл суспензии и переносили в пробирку с 9,0 мл стерильной воды. Полученное разведение 10-3 тщательно перемешивали. Таким же образом готовили все последующие разведения до 10-8. При приготовлении использовали каждый раз отдельные стерильные мерные колбы, пипетки и пробирки.
Для определения титра использовали разведения 10-7 и 10-8. Для этого суспензию по
1,0 мл из соответствующего разведения переносили в три стерильные чашки Петри. Затем в эти чашки заливали по 15-20 мл агаризиро-ванной среды, остуженной до 45-50 °С, и смешивали питательную среду с посевным материалом легкими вращательными движениями, после чего чашки оставляли на горизонтальной поверхности до застывания среды. Чашки Петри ставили в термостат с оптимальной температурой и через 3-5 суток инкубации подсчитывали среднее число колоний в трёх повторностях.
Титр (количество колониеобразующих единиц в 1,0 г препарата) вычисляли по формуле:
Т = a х 10n , V где Т – количество колониеобразующих единиц (КОЕ) в 1,0 г;
-
а – среднее число колоний, выросших после посева из данного разведения;
-
V – объем суспензии, взятый для посева; 10n – коэффициент разведения.
Подбор оптимальных искусственных сред и условий культивирования на них перспективного штамма антагониста проводили на жидких питательных средах Чапека, Тайло-на-3 и Рудакова при стационарном и глубинном культивировании. Предварительно посевной материал выращивали на агаризо-ванной питательной среде – картофельно-сахарозном агаре (КСА). Учитывали накопление биомассы, образование спор, плодовых тел . Выращивание проводили при оптимальной температуре 25 °С. Учёты роста мицелия и образования плодовых тел проводили через 3, 5 и 10 суток культивирования.
Глубинное культивирование штамма Хk-1-4 Chaetomium olivaceum осуществляли на круговой качалке с оборотом двигателя 200 об./мин в колбах Эрленмейера объёмом 750 мл при объёмах среды 150 мл при температуре 25 оС в течение 4 суток.
Результаты и обсуждение. Грибы рода Chaetomium обычно встречаются в почве и в органическом компосте, способны разлагать целлюлозу и другие органические вещества, проявляют антагонистические свойства к различным микроорганизмам почвы [10; 6].
Гриб относится к классу Ascomycetes, порядку Sphaeriales, семейству Chaetomiaceae.
Гриб – аэроб. Ранее установлено, что наиболее благоприятным для роста мицелия и образования плодовых тел является выращивание гриба на картофельно-сахарозном агаре при температуре 25 °С. При выращивании на искусственных питательных средах (среда
Чапека) штамм Хk-1-4 Chaetomium olivaceum Cooke et Ellis ассимилирует сахарозу, крахмал, в средней степени – глюкозу и в слабой степени – маннит. Из источников азота использует нитратный, аммонийный азот, мочевину, в слабой степени – тиомочевину. Оптимальный уровень рН среды – 6 [6].
Определение оптимальной питательной среды для штамма Хk-1-4 Chaetomium olivaceum из естественных субстратов
Всего для выращивания штамма Хk-1-4 Chaetomium olivaceum было использовано тринадцать естественных субстратов (табл. 1).
Таблица 1
Рост штамма Хk-1-4 Chaetomium olivaceum на естественных субстратах при температуре 25 °С через 10 суток
Краснодар, ВНИИМК
|
Среда |
Рост мицелия, балл* |
Образование плодовых тел, балл** |
Титр порошка, КОЕ/г |
|
Силос |
3 |
1 |
1,8 × 109 |
|
Солома |
5 |
2 |
2,0 × 109 |
|
Сено |
5 |
2 |
3,8 × 109 |
|
Опилки |
2 |
1 |
6,0 × 106 |
|
Жом |
2 |
1 |
9,0 × 103 |
|
Комбикорм |
4 |
2 |
3,6 × 109 |
|
Сенаж |
0 |
0 |
0 |
|
Семянки подсолнечника |
5 |
2 |
6,5 × 109 |
|
Лузга подсолнечника |
5 |
2 |
3,0 × 109 |
|
Лузга + семянки (1:3) |
5 |
2 |
6,4 × 109 |
|
Лузга + семянки (1:1) |
5 |
2 |
4,6 × 109 |
|
Лузга + гумат натрия 0,1 % |
5 |
2 |
4,2 × 109 |
|
Лузга + гумат натрия 0,2 % |
5 |
2 |
5,0 × 109 |
|
Лузга + гумат натрия 0,3 % |
5 |
2 |
6,6 × 109 |
|
Порошок лузги + кукурузный экстракт |
5 |
2 |
8,0 × 109 |
|
Отходы от очистки семян подсолнечника |
5 |
2 |
3,9 × 109 |
|
Отходы + гумат натрия 0,2 % |
5 |
2 |
7,3 × 109 |
|
Кукурузная мезга |
5 |
2 |
6,0 × 109 |
|
Отходы от очистки семян рапса |
4 |
2 |
2,6 × 106 |
|
Отходы от очистки семян горчицы |
0 |
0 |
0 |
* рост мицелия в баллах (зарастание поверхности среды): 1 – до 10 %; 2 – до 30 %;
3 – до 50 %; 4 – до 75 %; 5 – до 100 %.
** образование плодовых тел в баллах:
0 – отсутствие плодовых тел; 1 – единичные;
2 – массовое количество .
Установлено, что наиболее благоприятными из испытанных естественных субстратов являлись среды на основе семянок и лузги подсолнечника с различными добавками, отходы от очистки семян подсолнечника и кукурузная мезга. На этих средах наблюдался обильный рост мицелия, массовое образование плодовых тел и максимальный титр готового биопрепарата 3,0-8,0 × 109 КОЕ/г.
Также высокие показатели роста отмечены при выращивании гриба на средах из соломы, сена и комбикорма 2,0-3,6 × 109 КОЕ/г. Слабый рост гриба или полное отсутствие роста отмечено на средах из сенажа, жома, опилок, отходов от очистки семян горчицы 0-6,0 × 106 КОЕ/г.
Стационарное выращивание штамма Хk-1 -4 Chaetomium olivaceum на искусственных питательных средах
Стационарное выращивание штамма Хk-1-4 Chaetomium olivaceum проводили на жидких питательных средах сложного состава – Тайлона-3, Рудакова и Чапека, содержащих углеводы и в разном соотношении соединения азота, фосфора, калия и магния, а также микроэлементы. Среды Тайлона-3 и Рудакова в отличие от Чапека содержат кукурузный экстракт (табл. 2).
Таблица 2
Влияние питательных сред и срока стационарного культивирования на рост штамма Хk-1-4 Chaetomium olivaceum
Краснодар, ВНИИМК
|
Питательная среда |
Рост мицелия, балл * через, суток |
Масса сухого мицелия, г ** через 10 суток |
||
|
3 |
5 |
10 |
||
|
Чапека |
0 |
1 |
1 |
0,27 ± 0,01 |
|
Тайлона-3 |
1 |
1 |
3 |
0,64 ± 0,08 |
|
Рудакова |
1 |
2 |
3 |
1,26 ± 0,12 |
* рост мицелия в баллах:
0 – нет роста;
1 – рост мицелия отдельными колониями;
2 – мицелиальная плёнка сплошная тонкая;
3 – мицелиальная плёнка сплошная толстая.
** масса мицелия в расчете на 100 мл питательной среды
Установлено, что максимальный рост мицелиальной плёнки гриба обеспечивает среда Рудакова. Уже через 5 суток культивирования на этой среде отмечена сплошная тонкая мицелиальная плёнка, тогда как на среде Тайло-на-3 гриб рос отдельными поверхностными колониями, а на среде Чапека отдельными колониями в глубине питательной среды. Через 10 суток культивирования на среде Рудакова и на среде Тайлона-3 образовались сплошные толстые мицелиальные плёнки, а на среде Чапека отдельные колонии так и не срослись в одну мицелиальную плёнку. Масса сухого мицелия через 10 суток культивирования была максимальной на среде Рудакова. Следует отметить, что штамм Хk-1-4 Chaeto-mium olivaceum на жидких питательных средах растёт гораздо хуже, чем на естественных субстратах и за 10 суток стационарного культивирования ни на одной из испытанных сред плодовые тела не образовались.
Глубинное культивирование штамма Хk-1-4 Chaetomium olivaceum
Изучение кинетики рост гриба при глубинном культивировании показало, что через 24 часа на всех средах отмечен бесцветный, средний по толщине, с выростами, несептированный мицелий с негранулированной цитоплазмой (табл. 3).
При этом мицелий группировался в комочки с диаметром 1,0-4,0 мм на среде Рудакова и 1,0-2,0 мм на среде Тайлона-3. На среде Чапека было много непроросших посевных сумкоспор, а на средах Тайлона-3 и Рудакова их было значительно меньше. рН среды на Чапека 6,5, на Тайлона-3 – 5,0, на Рудакова – 5,5. Утилизация среды составляла: Чапека – 0 %, Тайлона-3 – 10 %, а Рудакова – 20 %.
Через 48 часов культивирования на всех средах отмечено увеличение количества молодого, бесцветного, утолщённого, несептированного, с негранулированной цитоплазмой, но с ещё большим количеством отростков или выростов мицелия. Во всех средах присутствовали свободные сумкоспоры. Уровень рН среды снизился и составлял на среде Чапека 5,0, на среде Тайлона-3 – 4,5 и на среде Рудакова – 5,0. Утилизация среды составляла: Чапека – 10 %, Тайлона-3 – 40 % и Рудакова – 50 %.
Через 72 часа культивирования на всех средах отмечено наличие толстого сероватого, изросшегося в виде бусинок, наростов, септированного, с гранулированной цитоплазмой и молодого слабосептированного
Таблица 3
Кинетика развития культуры штамма Хk-1-4 Chaetomium olivaceum при глубинном культивировании
Краснодар, ВНИИМК
|
Срок культи-виро-вания, час |
Питательная среда |
Морфологические изменения культуры и спорообразование |
Утилизация среды, % |
рН среды |
Титр, КОЕ/мл |
|
24 |
Чапека |
Мицелий бесцветный, несептированный, средний по толщине, с выростами, с негра-нулированной цитоплазмой; много непроросших сумкоспор |
0 |
6,5 |
4,9 ×102 |
|
Тай-лона-3 |
-//-* Мицелий скручивается в комочки 1,02,0 мм; присутствуют сумкоспоры |
10 |
5,0 |
1,9 × 102 |
|
|
Рудакова |
-//-* Мицелий скручивается в комочки 1,0-4,0 мм; присутствуют сумкоспоры |
20 |
5,5 |
2,5 × 102 |
|
|
48 |
Чапека |
Мицелий бесцветный, несептированный, утолщённый, с большим количеством выростов, с негранули-рованной цитоплазмой; присутствуют свободные сумкоспоры |
10 |
5,0 |
2,5 × 104 |
|
Тай-лона-3 |
-//-* Мицелий скручивается в комочки 1,0-2,0 мм |
40 |
4,5 |
2,0 × 104 |
|
|
Рудакова |
-//-* Мицелий скручивается в комочки 1,0-4,0 мм |
50 |
5,0 |
2,9 × 104 |
|
|
72 |
Чапека |
Мицелий сероватый, толстый, изросшийся с бусинками, септированный, с гранулированной цитоплазмой и мицелий молодой, бесцветный, слабосептированный; присутствуют свободные сумкоспоры |
10 |
5,0 |
5,6 × 106 |
|
Тай-лона-3 |
-//-* комочки 1,0-2,0 мм |
50 |
4,5 |
7,3 ×106 |
|
|
Рудакова |
-//-* комочки 1,0-4,0 мм |
50 |
5,0 |
1,9 × 107 |
|
|
96 |
Чапека |
Мицелий сероватый, толстый, с выростами и бусинками, с гранулированной цитоплазмой и мицелий молодой, средний, септированный, с гранулированной цитоплазмой. Начало лизиса старого мицелия. Свободных сумкоспор мало |
10 |
5,0 |
6,9 × 106 |
|
Тай-лона-3 |
-//-* комочки 1,0-2,0 мм |
50 |
4,5 |
8,5 × 106 |
|
|
Рудакова |
-//-* комочки 2,0-3,0-4,0 мм |
60 |
4,5 |
2,3 × 107 |
* описание мицелия соответствует таковому на среде Чапека мицелия. Во всех средах присутствовали в незначительном количестве свободные сумкоспоры. рН среды оставался на том же уровне. Утилизация среды составляла: Чапека – 10 %, Тайлона-3 и Рудакова – 50 %. Титр составлял: на среде Чапека – 5,6 × 106 КОЕ/мл, на Тайлона-3 – 7,3 × 106 КОЕ /мл и на Рудакова – 1,9 × 107 КОЕ/мл.
Через 96 часов культивирования на всех средах отмечено наличие толстого, сероватого, с многочисленными выростами и бусинками мицелия и молодого, среднего, септированного мицелия с гранулированной цитоплазмой. Отмечено начало лизиса старого мицелия. Свободных сумкоспор во всех средах было мало. Отмечено начало образования плодовых тел. рН снизился на среде Рудакова до 4,5. Утилизация среды составляла: Чапека – 10 %, Тайлона-3 – 50 %, Рудакова – 60 %. Титр на среде Чапека 6,9 × 106 КОЕ/мл, на Тайлона-3 – 8,5 × 106 КОЕ/мл, на Рудакова – 2,3 × 107 КОЕ/мл.
Визуально:
-
- среда Чапека – прозрачная, ярко-жёлтая, мицелия в среде 10 %; комочков (глобул) не было;
-
- среда Тайлона-3 – прозрачная, светлокоричневая, мицелия в среде 50 %, имелись комочки (глобулы) диаметром 1,0-2,0 мм;
-
- среда Рудакова – мутная, коричневая, мицелия в среде 60 %, имелись комочки (глобулы) диаметром 2,0-4,0 мм.
Таким образом, выращивание штамма антагониста в глубинной культуре сопровождалось обильным ростом мицелиальной массы и не вызывало массового образования плодовых тел и спороношения, титр даже на лучшей питательной среде (Рудакова) не превышал 107 КОЕ/мл, тогда как на средах из естественных субстратов он составлял 109 КОЕ/г.
Заключение. Наиболее благоприятными естественными субстратами для штамма продуцента микробиопрепарата Хk-1-4 Chaetomium olivaceum являлись среды на основе семянок и лузги подсолнечника с различными добавками, отходы от очистки семян подсолнечника и кукурузная мезга. На этих средах наблюдался обильный рост мицелия, массовое образование плодовых тел и максимальный титр готового биопрепарата – 3,0-8,0 × 109 КОЕ/г.
При стационарном культивировании штамма Хk-1-4 Chaetomium olivaceum на жидких питательных средах сложного состава максимальный рост мицелиальной плёнки гриба обеспечивала среда Рудакова. На жидких питательных средах штамм-продуцент
ISSN 0202-5493. МАСЛИЧНЫЕ КУЛЬТУРЫ. Научно-технический бюллетень Всероссийского научно-исследовательского института масличных культур. Вып.2 (148-149), 2011
рос гораздо хуже, чем на естественных субстратах, и за десять суток культивирования ни на одной из испытанных сред плодовые тела не образовались.
Выращивание штамма при глубинном культивировании сопровождалось обильным ростом мицелиальной массы и не вызывало массового образования плодовых тел и споро-ношения. Титр даже на лучшей питательной среде (Рудакова) не превышал 107 КОЕ/мл, тогда как на средах из естественных субстратов он составлял 109 КОЕ/г.
Работа выполнена при финансовой поддержке гранта РФФИ № 11-08-96512-р юг ц.