Оптимальный режим оттаивания криоконсервированной спермы голштинских быков-производителей

Автор: Комбарова Н.А., Ескин Г.В., Абилов А.И., Корнеенко-жиляев Ю.А., Виноградов В.Н., Галанкина А.А.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Статья в выпуске: 6 т.53, 2018 года.

Бесплатный доступ

С повышением молочной продуктивности растет число животных с неполноценными половыми циклами и тихими проявлениями охоты, в связи с чем возникает потребность в семени с высокими качественными и количественными характеристиками. Кроме того, при искусственном осеменении после разбавления нативного семени, его расфасовки, криоконсервации и оттаивании число сперматозоидов в спермодозе снижается, что также значительно повышает требования к их качеству. Оттаивание - один из критических этапов при стандартной процедуре подготовки замороженной спермы быков-производителей к искусственному осеменению. Как следствие, процедуры криоконсервации и деконсервации требуют оптимизации протоколов с учетом предлагаемых модификаций этих методов и изменяющихся воспроизводительных способностей животных. В своем исследовании мы оценили влияния ранее рекомендованных и предложенных нами режимов деконсервации на сохранность сперматозоидов у российских голштинских быков-производителей и выявили режимы, которые достоверно обеспечивают пролонгированное положительное влияние на качественные характеристики сперматозоидов и лучшее сохранение их жизнеспособности после оттаивания...

Еще

Голштины, сперматозоиды, режим оттаивания, подвижность, скорость движения, соломинки, необлицованные гранулы

Короткий адрес: https://sciup.org/142220070

IDR: 142220070 | DOI: 10.15389/agrobiology.2018.6.1219rus

Список литературы Оптимальный режим оттаивания криоконсервированной спермы голштинских быков-производителей

Иолчиев Б.С., Абилов А.И., Таджиева А.В., Багиров В.А., Насибов Ш.Н., Шайдуллин И.Н., Кленовицкий П.М., Комбарова Н.А., Жилинский М.А. Биологическая полноценность эпидидимального семени зубра (Bison bonasus L.) при криоконсервации и длительном хранении. Сельскохозяйственная биология, 2017, 52(2): 282-290 ( ) DOI: 10.15389/agrobiology.2017.2.282rus
Амстиславский С.Я., Брусенцев Е.Ю., Абрамова Т.О., Рагаева Д.С., Рожкова И.Н., Игонина Т.Н., Кизилова Е.А., Напримеров В.А., Феоктистова Н.Ю. Применение репродуктивных технологий и создание криобанка генетических ресурсов лабораторных животных. Вавиловский журнал генетики и селекции, 2015, 19(4): 367-371 ( ) DOI: 10.18699/VJ15.045
Евдокимов В.В., Ерохин А.С., Айбятов Д.Т., Ерасова В.И. Эффективность замораживания эякулята человека в зависимости от используемых сред и криопротекторов. Андрология и генитальная хирургия, 2012, 1: 21-25.
Aungier S.P., Roche J.F., Diskin M.G., Crowe M.A. Risk factors that affect reproductive target achievement in fertile dairy cows. J. Dairy Sci., 2014, 97(6): 472-387 ( ) DOI: 10.3168/jds.2013-7404
Galli C. Achievements and unmet promises of assisted reproduction technologies in large animals: a personal perspective. Anim. Reprod., 2017, 14(3): 614-621 ( ) DOI: 10.21451/1984-3143-AR1005
Кононов В.П. Проблема совместимости высокой молочной продуктивности, воспроизводительной способности и продуктивной жизни коров в современном скотоводстве. Farm Animals, 2015, 1: 40-47.
Решетникова Н.М., Ескин Г.В., Комбарова Н.А., Порошина Е.С., Шавырин И.И. Проблемы снижения плодовитости у высокопродуктивных коров. Проблемы биологии продуктивных животных, 2011, спецвыпуск 4: 116-121.
Комбарова Н.А., Малиновский А.М., Попов Е.Г. Влияние технологических этапов криоконсервации на динамику качественных характеристик семени быков-производителей. Проблемы биологии продуктивных животных, 2011, спецвыпуск 4: 53-57.
Атрощенко М.М., Калашников В.В., Брагина Е.Е., Зайцев А.М. Сравнительное изучение ультраструктуры сперматозоидов в эпидидимальной, эякулированной и криоконсервированной сперме жеребцов. Сельскохозяйственная биология, 2017, 52(2): 274-280 ( )
DOI: 10.15389/agrobiology.2017.2.274rus
Bailey J.L., Blodeau J., Cormier N. Semen cryopreservation in domestic animals: a damaging and capacitating phenomenon minireview. Journal of Andrology, 2000, 21(1): 1-7 ( )
DOI: 10.1002/j.1939-4640.2000.tb03268.x
Костяев А.А., Мартусевич А.К., Андреев А.А. Токсичность криопротекторов и криоконсервантов на их основе для компонентов крови и костного мозга (обзорная статья). Научное обозрение. Медицинские науки, 2016, 6: 54-74.
Dalal J., Kumar A., Dutt R., Singh G., Chandolia R.K. Different cooling rate for cryopreservation of semen in various livestock species: a review. International Journal of Current Microbiology and Applied Sciences, 2018, 7: 1903-1911 ( )
DOI: 10.20546/ijcmas.2018.708.219
Ansari M.S., Rakha B.A., Andrabi S.M.H., Akhter S. Effect of straw size and thawing time on quality of cryopreserved buffalo (Bubalus bubalis) semen. Reproductive Biology, 2011, 11(1): 49-54 ( )
DOI: 10.1016/S1642-431X(12)60063-1
Miranda M., Kulíková B., Vašíček J., Olexiková L., Iaffaldano N., Chrenek P. Effect of cryoprotectants and thawing temperatures on chicken sperm quality. Reprod. Domest. Anim., 2018, 53(1): 93-100 ( )
DOI: 10.1111/rda.13070
Rall W., Reid D., Farrant J. Innocuous biological freezing during warming. Nature (Lond.), 1980, 286: 511-514.
Taylor M., Bank H., Benton M. Selective destruction of leucocytes by freezing as a potential means of modulating tissue immunogenicity: membrane integrity of lymphocytes and macrophages. Cryobiology, 1987, 24(2): 91-102 ( )
DOI: 10.1016/0011-2240(87)90011-3
Осташко Ф.Н. Биотехнология воспроизведения крупного рогатого скота. Киев, 1995.
Ozkavukcu S., Erdemli E., Isik A., Oztuna D., Karahuseyinoglu S. Effects of cryopreservation on sperm parameters and ultrastructural morphology of human spermatozoa. J. Assist. Reprod. Genet., 2008, 25(8): 403-411 ( )
DOI: 10.1007/s10815-008-9232-3
Frenau G.E., Chenoveth H.J., Elis R., Rupp G. Sperm morphology of beef bulls evaluated by two deferent method. Anim. Reprod. Sci., 2010, 118: 176-181 ( )
DOI: 10.2016/j.anireposci.2009.08.015
Walczak-Jedrzejowska R., Wolski J.K., Slowikowska-Hilczer J. The role of oxidative stress and antioxidants in male fertility. Central European Journal of Urology, 2013, 66: 60-67 ( )
DOI: 10.5173/ceju.2013.01.art19
Yániz J.L., Capistrós S., Vicente-Fiel S., Hidalgo C.O., Santolaria P. A comparative study of the morphometry sperm head components in cattle, sheep, and pigs with a computer-assisted fluorescence method. Asian Journal of Andrology, 2016, 18: 840-843 ( )
DOI: 10.4103/1008-682X.186877
Banaszewska D., Andraszek K., Czubaszek M., Biesiada-Drzazga B. The effect of selected staining techniques on bull sperm morphometry. Anim. Reprod. Sci., 2015, 159: 17-24 ( )
DOI: 10.1016/j.anireprosci.2015.06.019
Soler C., Cooper T.G., Valverde A., Yániz J.L. Afterword to Sperm morphometrics today and tomorrow special issue in Asian Journal of Andrology. Asian Journal of Andrology, 2016, 18: 895-897 ( )
DOI: 10.4103/1008-682X.187582
Yaniz J.L., Santolaria P., Marco Aguado Lopez-Gatius F. Use of image analysis to assess the plasma membrane integrity of ram spermatozoa in different diluents. Theriogenology, 2008, 70(2): 192-198 ( )
DOI: 10.1016/j.theriogenology.2008.03.002
Солер К., Валверде А., Бомбарт Д., Фердейндонфар С., Санчо М., Яниз Х.Л., Гарсия-Молина А., Корнеенко-Жиляев Ю.А. Новые методы анализа спермы с использованием системы CASA (сomputer-assisted sperm analysis). Сельскохозяйственная биология, 2017, 52(2): 232-241 ( )
DOI: 10.15389/agrobiology.2017.2.232rus
Комбарова Н.А., Жаворонкова Н.В., Малиновский А.М., Попов Е.Г. Опыт использования спермоанализатора SFA-500 для оценки качественных характеристик семени быков-производителей на всех этапах технологического процесса. Практик, 2010, 2: 56-61.
Кононов В.П., Черных В.Я. Биотехника репродукции в молочном скотоводстве. М., 2009.
Rastegarnia A.R., Shahverdi A.H., Rezaei Topraggaleh T., Ebrahimi B., Shafipour V. Effect of different thawing rates on post-thaw viability, kinematic parameters and chromatin structure of buffalo (Bubalus bubalis) spermatozoa. Cell J., 2013; 14(4): 306-313.
Muiño R., Rivera M.M., Rigau T., Rodriguez-Gil J.E., Peña A.I. Effect of different thawing rates on post-thaw sperm viability, kinematic parameters and motile sperm subpopulations structure of bull semen. Anim. Reprod. Sci., 2008, 109(1-4): 50-64 ( )
DOI: 10.1016/j.anireprosci.2007.11.028
Calamera J.C., Buffone M.G., Doncel G.F., Brugo-Olmedo S., de Vincentiis S., Calamera M.M., Storey B.T., Alvarez J.G. Effect of thawing temperature on the motility recovery of cryopreserved human spermatozoa Fertil. Steril., 2010, 93(3): 789-794 ( )
DOI: 10.1016/j.fertnstert.2008.10.021
Anwar M., Andrabi S.M., Mehmood A., Ullah N. Effect of low temperature thawing on the motility and fertility of cryopreserved water buffalo and zebu bull semen. Turkish Journal of Veterinary and Animal Sciences, 2008, 32(6): 413-416.
Marin-Briggiler C.I., Tezon J.G., Miranda P.V., Vazquez-Levin M.H. Effect of incubating human sperma at room temperature on capacitation-related events. Fertil. Steril., 2002, 77(2): 252-259 ( )
DOI: 10.1016/S0015-0282(01)02982-X
Suarez S.S. Formation of a reservoir of sperm in the oviduct. Reproduction in Domestic Animals, 2002, 37(3): 140-142 ( )
DOI: 10.1046/j.1439-0531.2002.00346.x
Payan-Carreira R., Borges P., Mir F., Fontbonne A. Molecular markers in sperm analysis, success in artificial insemination. Alemayehu Lemma, IntechOpen, January 9th 2013 ( ). Режим доступа: https://www.intechopen.com/books/success-in-artificial-insemination-quality-of-semen-and-diagnostics-employed/molecular-markers-in-sperm-analysis. Без даты
DOI: 10.5772/52231
Bergeron A., Ménard M. Major proteins of bovine seminal plasma bind to the low-density lipoprotein fraction of hen’s egg yolk. Biol. Reprod., 2002, 67: 1250-1258
Röpkea T., Oldenhofb H., Leidingc C., Siemeb H., Bollweina H., Wolkersd W.F. Liposomes for cryopreservation of bovine sperm. Theriogenology, 2011, 76(8): 1465-1472 ( )
DOI: 10.1016/j.theriogenology.2011.06.015

Еще

Статья научная