ПЦР-диагностика с флуоресцентной детекцией в режиме реального времени для быстрого обнаружения Mycoplasma hyopneumoniae в ассоциации c Streptococcus pneumoniae у свиней

Автор: Толстова Е.А., Лигидова М.М., Агольцов В.А., Черных О.Ю., Падило Л.П., Попова О.М.

Журнал: Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана @uchenye-zapiski-ksavm

Статья в выпуске: 2 т.254, 2023 года.

Бесплатный доступ

Цель исследования - применение ПЦР с флуоресцентной детекцией в режиме реального времени для обнаружения при микстинфекциях Mycoplasma hyopneumoniae и Streptococcus pneumoniae. Результаты, полученные при проведении лабораторных диагностических исследований патматериала от свиней, поступившего в Кропоткинскую краевую лабораторию за последние 3 года (с 2020 по 2022 гг.), свидетельствуют о высокой частоте обнаружения M. hyopneumoniae в ассоциации с S. pneumoniae (от 40 до 60 %). ПЦР - диагностика с флуоресцентной детекцией в режиме реального времени оптимальна для быстрого обнаружения Mycoplasma hyopneumoniae в ассоциации c Streptococcus pneumoniae у свиней.

Еще

Диагностика, пцр с флуоресцентной детекцией в режиме реального времени, свиньи

Короткий адрес: https://sciup.org/142238113

IDR: 142238113 | DOI: 10.31588/2413_4201_1883_2_254_264

Список литературы ПЦР-диагностика с флуоресцентной детекцией в режиме реального времени для быстрого обнаружения Mycoplasma hyopneumoniae в ассоциации c Streptococcus pneumoniae у свиней

Агольцов, В. А. Эффективность и безопасность лекарственных препаратов при лечении экспериментальных и спонтанных микоплазменных инфекций / В. А. Агольцов, Л. П. Падило, О. П. Бирюкова, М. М. Лигидова // Ветеринария сегодня. – 2022. – № 11. – С. 169-175.
Бирюченкова, М. В. Разработкаметодов обнаружения генома Streptococcus suis на основе полимеразной цепной реакции / М. В. Бирюченкова // Труды Федерального центра охраны здоровья животных. – Владимир. – 2017. – Том 15. – С. 70-81.
Ефанова, Л. И. Микоплазменная инфекция у свиней / Л. И. Ефанова, А. В. Степанов, М. М. Свиридов, О. А. Манжурина // Достижения науки и техники АПК. – 2012. – № 1 – С. 35-36.
Лигидова, М. М. Терапевтическая эффективность энтрикима при энзоотической пневмонии свиней / М. М. Лигидова, В. А. Агольцов, Л. П. Падило, А. А. Гусев // Научная жизнь. – 2020. – Выпуск 9. – С. 1260-1269.
Лигидова, М. М. Изучение фармакокинетики действующих веществ препарата «Энтриким» при применении его животным / М. М. Лигидова, Е. А. Толстова, А. М. Семиволос, В. А. Агольцов, М. П. Мариничева // Аграрный научный журнал. – 2022. – № 8 – С. 47-49.
Суханин, А. А. Использование ПЦР для идентификации патогенных стрептококков / А. А. Суханин // Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии. – 2010. – № 2. – С. 13-15.
Толстова, Е.А. Особенности диагностики и терапии стрептококкоза свиней, осложненного РРСС на племенной ферме / Е. А. Толстова, В. А. Агольцов, Л. П. Падило // Научная жизнь – 2022. – Том 17. – В. 1 – С.157-166.
Толстова, Е. А. Диагностика, терапия и специфическая профилактика стрептококкоза свиней, осложненного пастереллезом и микоплазмом / Е. А. Толстова, М. М. Лигидова, Л. П. Падило, А. М. Семиволос, В. А. Агольцов // Аграрный научный журнал. – 2022. – № 1. – С. 71-75.
Тюлькин, С. В. Применение ДНК-диагностики для выявления рецессивных мутаций у сельскохозяйственных животных // С. В. Тюлькин, И. И. Гиниатуллин, Т. М. Ахметов, Л. А. Рахматов // В сборнике: Молекулярная диагностика. Сборник трудов. – 2014. – С. 524-525.
Clark, L. K. Evaluation of the effectiveness of a macrolide antibiotic on reduction of respiratory pathogens in 12-day and 21-day weaned pigs / L. K. Clark, C. C. Wu, W. G. Alstine, K. E. Knox // J. Swine Health Prod. – 1998. – V. 6 (6). – P. 257-262.
Dacak, D. Primer reporte de micoplasmosis en Procyon cancrivorus en cautiverio en Asunción / D. Dacak, J. Petters, L. Batista-Cirne, M. Lucero [et al.] // Paraguay. Rev. Inv. Vet. – Perú. – 2021. – V. 32 (1). – P. 19494. – DOI: 10.15381/RIVEP.V32I1.19494.
De Almeida, J. F. Polimerase chain reaction (PCR) in the diagnosis of goat mycoplasmosis proceeding from cultures stored in glycerol / J. F. De Almeida, E. R. do Nascimento, V. L. de Almeida Pereira, M. L. Barreto [et al.] // Rev. Bras. Med. Vet. – 2007. – V. 29 (2). P. 54-57.
Mc Kelvie, J. Evaluation of tulathromycin for the treatment of pneumonia following experimental infection of swine with Mycoplasma hyopneumoniae / J. McKelvie, J. H. Morgan, I. A. Nanjiani, J. Sherington, T. G. Rowan, S. J. Sunderland // Veterinary Therapeutics. – 2005. – V. 6 (2). – P. 197-202. – PMID: 16094566.
Morrow, C. J. Antimicrobial susceptibility of pathogenic mycoplasmas in chickens in Asia / C. J. Morrow, Z. Kreizinger, R. R. Achari, K. Bekő, C. Yvon, M. Gyuranecz // Vet. Microbiol. – 2020. – P. 250:108840. – DOI: 10.1016/j.vetmic.2020.108840.
Olson, L. B. The effect of tilmicosin in minimizing atrophic rhinitis, pneumonia, and pleuritis in swine / L. B. Olson, L. R. Bäckström // J. Swine Health Prod. – 2000. – V. 8 (6). – P. 263-268.
Suresh, V. K. Novel Real-Time PCR Assay for Rapid Detection of Virulent Streptococcus equi Subspecies zooepidemicus - An Emerging Pathogen of Swine / V. K. Suresh [et al.] // Front Vet. – Sci.2021.DOI:10.3389/fvets.2021.604675.
Zhang, X. H. Investigation of the efficiency and safety of tilmicosin phosphate in treating experimental mycoplasmal infections in pigs / X. H. Zhang, J. Z. Pan, N. Wu, S. Tang, X. D. Lei, Y. Y. Sun [et al.] // Turk. J. Vet. Anim. Sci. – 2018. – V. 42 (6). – P. 571-580. – DOI: 10.3906/vet-1804-76.

Еще

Статья научная