Поиск подхода к количественному определению спор микроорганизмов в пищевых системах
Автор: Посокина Н.Е., Захарова А.И., Курбанова М.Н.
Журнал: Вестник Красноярского государственного аграрного университета @vestnik-kgau
Рубрика: Пищевые технологии
Статья в выпуске: 6, 2023 года.
Бесплатный доступ
Цель исследований - поиск подхода к контролю количественного прорастания спор микроорганизмов в пищевых системах. Задачи: определить наличие ионов кальция в суспензии проросших спор; установить зависимость концентрации ионов кальция от количества проросших спор. В качестве объекта исследования использовали штамм Bacillus subtilis ATCC 6633. Определение биологической концентрации Bacillus subtilis в споровой суспензии выполняли методом посева последовательных десятикратных разведений суспензии Bacillus subtilis в стерильной дистиллированной воде с последующим высевом суспензии и ее последовательных разведений в чашки Петри с плотной питательной средой. Прогрев суспензии проводили при температуре 95±1 °С в течение 20 минут. После прогрева определяли титр суспензии и концентрацию Ca2+. Определение концентрации Ca2+ проводили методом капиллярного электрофореза по методике М 04-52-2008 на приборе «Капель-105М» (Люмэкс, Россия). Полученная зависимость концентрации Са2+ от титра микроорганизмов позволяет определять количество проросших спор даже при минимальном их содержании, что дает возможность проводить количественное определение проросших спор в пищевых системах аналитическим методом. Такой подход к контролю количественного прорастания спор показал свою применимость для данного вида исследования, поскольку используемый в исследовании метод капиллярного электрофореза позволяет определять массовую концентрацию катионов кальция от 1,0 до 500 мг/дм3.
Споры микроорганизмов, отложенное прорастание, безопасность пищевой продукции, ионы кальция, капиллярный электрофорез
Короткий адрес: https://sciup.org/140301463
IDR: 140301463 | DOI: 10.36718/1819-4036-2023-6-179-185
Список литературы Поиск подхода к количественному определению спор микроорганизмов в пищевых системах
- Посокина Н.Е., Захарова А.И. Термические способы обработки растительного сырья для увеличения его хранимоспособности // Вестник КрасГАУ. 2022. № 11. С. 192–201. DOI: 10.36718/1819-4036-2022-11-192-201.
- Role of novel polysaccharide layers in assembly of the exosporium, the outermost protein layer of the Bacillus anthracis spore / D. Lehmann [et al.] // Molecular Microbiology. 2022. № 118(3). С. 258–277. DOI: 10.1111/mmi.14966.
- Tan I.S., Ramamurthi K.S. Spore formation in Bacillus subtilis // Environmental Microbiology Report. 2014. № 6 (3). С. 212–225. DOI: 10.1111/1758-2229.12130.
- Stewart G.C. The exosporium layer of bacterial spores: a connection to the environment and the infected host // Microbiology and Molecular Biology Reviews. 2015. № 79 (4). P. 437–457. DOI: 10.1128/MMBR.00050-15.
- Coordinated Assembly of the Bacillus anthracis Coat and Exosporium during Bacterial Spore Outer Layer Formation / T.J. Boone [et al.] // mBio. 2018. № 9(6). P. e01166–18. DOI:10.1128/mBio.01166-18.
- Modelling the effect of sub(lethal) heat treatment of Bacillus subtilis spores on germination rate and outgrowth to exponentially growing vegetative cells / J.P.P.M. Smelt [et al.] // International Journal of Food Microbiology. 2008. № 128 (1). С. 34–40. DOI: 10.1016/j.ijfoodmicro.2008.08.023.
- Посокина Н.Е., Захарова А.И. Современные нетермические способы обработки растительного сырья, применяемые для увеличения его хранимоспособности // Пищевые системы. 2023. № 1 (6). С. 4–10. DOI: 10.21323/2618-9771-2023-6-1-4-10.
- Schubert W.W., Beaudet R.A. Determination of lethality rate constants and D-values for heat-resistant Bacillus spores ATCC 29669 exposed to dry heat from 125 °C to 200 °C // Astrobiology. 2011. № 11(3). P. 213–223. DOI: 10.1089/ast.2010.0502.
- Rodrigo D., Tejedor W., Martínez A. Heat Treatment: Effect on Microbiological Changes and Shelf Life // Encyclopedia of Food and Health. 2016. P. 311–315. DOI: 10.1016/B978-0-12-384947-2.00372-X.
- Dipicolinic acid as a novel spore-inspired excipient for antibody formulation / I.L. Batalha [et al.] // International Journal of Pharmaceutics. 2017. № 526 (1–2). P. 332–338. DOI: 10.1016/j.ijpharm.2017.05.012.
- Targeting the Impossible: A Review of New Strategies against Endospores / A. Romero- Rodríguez [et al.] // Antibiotics. 2023. № 12 (2). P. 248. DOI: 10.3390/antibiotics12020248.
- A monostyryl boradiazaindacene (BODIPY)- based lanthanidefree colorimetric and fluorogenic probe for sequential sensing of copper (II) ions and dipicolinic acid as a biomarker of bacterial endospores / Y. Cetinkaya [et al.] // Journal of Hazardous Materials. 2019. № 377. P. 299–304. DOI: 10.1016/j.jhazmat.2019.05.108.
- Mechanisms and Applications of Bacterial Sporulation and Germination in the Intestine / N. Koopman [et al.] // International Journal of Molecular Sciences. 2022. № 23(6). P. 3405. DOI: 10.3390/ijms23063405.
- Setlow P. Germination of Spores of Bacillus Species: What We Know and Do Not Know // Journal of Bacteriology. 2014. № 196(7). P. 1297–1305. DOI: 10.1128/JB.01455-13.
- Rekadwad B. N., Gonzalez J. M., Khobragade C.N. One Plate-double Nutrient Endospore Activation Method // Bio-101. 2020. P. e3474. DOI: 10.21769/BioProtoc.3474.
- Bacterial Spores: Mechanisms of Stability and Targets for Modern Biotechnologies / B.G. Andryukov [et al.] // Biomedical Journal of Scientific & Technical Research. 2019. № 20 (5). С. 15329–15344. DOI: 10.26717/BJSTR.2019.20.003500.
- Kinetics of Germination of Individual Spores of Geobacillus stearothermophilus as Measured by Raman Spectroscopy and Differential Interference Contrast Microscopy / T. Zhou [et al.] // PLoS ONE. 2013. № 8 (9). P. e74987. DOI: 10.1371/journal.pone.0074987.
