Разработка метода выявления Anaplasma marginale с использованием ПЦР в реальном времени

Автор: Ковальчук С.Н., Косовский Г.Ю., Архипов А.В., Глазко Т.Т., Глазко В.И.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Ветеринарная микробиология, микробиомы

Статья в выпуске: 6 т.50, 2015 года.

Бесплатный доступ

Риккетсия Anaplasma marginale - возбудитель анаплазмоза крупного рогатого скота. Заболевание протекает с признаками анемии, лихорадки и потерей веса, вызывает аборты и снижение удойности у коров и во многих случаях приводит к гибели зараженных животных. A. marginale переносится клещами и кровососущими насекомыми. Анаплазмоз обычно диагностируется при микроскопическом исследовании мазков крови, окрашенных по Романовскому красителем Гимза, но этот метод ненадежен, если животное находится на ранних стадиях инфицирования. Широко используются серологические методы диагностики, однако они не позволяют дифференцировать А. marginale от других видов анаплазм. Подход, основанный на применении полимеразной цепной реакции (ПЦР) в реальном времени, сочетает высокую специфичность анализа и возможность количественной оценки числа копий ДНК патогена в образце. Цель выполненного нами исследования - разработать метод дифференцированного выявления A. marginale в крови крупного рогатого скота с помощью ПЦР в реальном времени. В качестве мишени для амплификации был выбран однокопийный ген msp4. Msp4 - иммунодоминантный белок наружной мембраны всех известных на сегодняшний день риккетсий рода Anaplasma. Праймеры на основе гена msp4 для филогенетического анализа А. marginale ранее были предложены J. de la Fuente с соавт. (2001), однако они не видоспецифичны. В результате анализа нуклеотидных последовательностей гена msp4 разных изолятов A. marginale и близкородственных видов анаплазм, включая A. ovis, выявили характерные для A. marginale участки, на основе которых были разработаны видоспецифичные праймеры и флуоресцентно меченный зонд (MSP4-F 5′-CA-TGAGTCACGAAGTGGCT-3′ и MSP4-R 5′-GGCACACT-CACATCAATC-3′, MSP4-probe 5′-(Cy5)-AAGGGGGAGTAATGGGAGGTAGCT-3′) для амплификации и детекции фрагмента гена msp4 A. marginale длиной 177 п.н. методом ПЦР в реальном времени. Анализ амплифицированных нуклеотидных последовательностей показал, что они имеют 99-100 % идентичности с фрагментом гена msp4 у разных изолятов A. marginale. При определении аналитической чувствительности ПЦР была сконструирована плазмида pGEM -msp4 с фрагментом гена msp4 длиной 177 п.н. и получены образцы, содержащие 10 0-10 7 копий msp4. Показано, что чувствительность метода позволяет выявлять от 10 2 копий гена msp4 А. marginale в анализируемом объеме образца ДНК. Для испытания аналитической специфичности праймеров и зонда использовались образцы ДНК овец, зараженных риккетсиями A. ovis, а также ДНК коров, которые по результатам секвенирования содержали ДНК бактерий Sanguibacter keddieii, Propionibacterium acnes и Pseudomonas aeruginosa. При этом роста флуоресценции, характерного для материала от зараженных A. marginale животных, и каких-либо продуктов ПЦР при электрофоретическом разделении не наблюдали. Таким образом, специфичность метода позволяет надежно дифференцировать A. marginale и A. ovis. Разработанный способ выявления A. marginale на основе амплификации и детекции фрагмента гена msp4 с помощью ПЦР в реальном времени отличается от существующих аналогов высокой специфичностью, быстротой, а также возможностью количественной оценки бактериальной нагрузки. Метод может быть использован для оперативного дифференциального обнаружения и количественного определения А. marginale в образцах крови инфицированного крупного рогатого скота с целью подтверждения диагноза и при проведении эпидемиологического мониторинга анаплазмоза.

Еще

Ген msp4, крупный рогатый скот, диагностика, пцр в реальном времени

Короткий адрес: https://sciup.org/142134847

IDR: 142134847   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2015.6.825rus

Список литературы Разработка метода выявления Anaplasma marginale с использованием ПЦР в реальном времени

  • Kocan K.M., de la Fuente J., Blouin E.F., Coetzee J.F., Ewing S.A. The natural history of Anaplasma marginale. Vet. Parasitol., 2010, 167: 95-107 ( ) DOI: 10.1016/j.vetpar.2009.09.012
  • Kocan K.M., de la Fuente J., Blouin E.F., Garcia-Garcia J.C. Anaplasma marginale (Rickettsiales: Anaplasmataceae): recent advances in defining host-pathogen adaptations of a tick-borne rickettsia. Parasitology, 2004, 129: 285-300 ( ) DOI: 10.1017/S0031182003004700
  • Scoles G.A., Broce A.B., Lysyk T.J., Palmer G.H. Relative efficiency of biological transmission of Anaplasma marginale (Rickettsiales: Anaplasmataceae) by Dermacentor andersoni (Acari: Ixodidae) compared with mechanical transmission by Stomoxys calcitrans (Diptera: Muscidae). J. Med. Entomol., 2005, 42: 668-675 ( ) DOI: 10.1093/jmedent/42.4.668
  • Guglielmone A.A. Epidemiology of babesiosis and anaplasmosis in South and Central America. Vet. Parasitol., 1995, 57: 109-119.
  • de la Fuente J., Lew A., Lutz H., Meli M.L., Hofmann-Lehmann R., Shkap V., Molad T. Genetic diversity of Anaplasma species major surface proteins and implications for anaplasmosis serodiagnosis and vaccine development. Anim. Health Res., 2005, 6: 75-89 ( ) DOI: 10.1079/AHR2005104
  • Гулюкин М.И., Заблоцкий В.Т., Белименко В.В. Мониторинг эпизоотической ситуации по протозойным кровепаразитарным болезням домашних животных в Российской Федерации (2007-2012). Российский ветеринарный журнал СХЖ, 2013, 2: 36-40.
  • Noaman V., Shayan P. Comparison of Microscopy and PCR-RFLP for detection of Anaplasma marginale in carrier cattle. Iran. J. Microbiol., 2010, 2(2): 89-94.
  • Potgieter F.T., Stoltsz W.H. Anaplasmosis. In: Infectious diseases of livestock with special reference to Southern Africa/J.A.W. Coetzer, G.R. Thompson, R.C. Tustin (eds.). Oxford University Press, Cape Town, South Africa, 1994.
  • Dreher U.M., Fuente J., Hofmann-Lehmann R., Meli M.L., Pusterla N., Kocan K.M., Woldehiwet Z., Braun U., Regula G., Staerk K.D., Lutz H. Serologic crossreactivity between Anaplasma marginale and Anaplasma phagocytophilum. Clin. Diagn. Lab. Immunol., 2005, 12: 1177-1183 ( ) DOI: 10.1128/CDLI.12.10.1177-1183.2005
  • Al-Adhami B., Scandrett W.B., Lovanov V.A., Gajadhar A.A. Serological cross reactivity between Anaplasma marginale and Ehrlichia species in naturally and experimentally infected cattle. J. Vet. Diagn. Invest., 2011, 23: 1181-1188 ( ) DOI: 10.1177/1040638711425593
  • Strik N.I., Alleman A.R., Barbet A.F., Sorenson H.L., Wamsley H.L., Gaschen F.P., Luckschander N., Wong S., Chu F., Foley J.E., Bjoersdorff A., Stuen S., Knowles D.P. Characterization of Anaplasma phagocytophilum major surface protein 5 and the extent of its cross-reactivity with A. marginale. Clin. Vaccine Immunol., 2007, 14: 262-268 ( ) DOI: 10.1128/CVI.00320-06
  • Torioni de Echaide S., Knowles D.P., McGuire T., Palmer G.H., Suarez C.E., McElwain T.F. Detection of cattle naturally infected with Anaplasma marginale in a region of endemicity by nested PCR and a competitive Enzyme-Linked Immunosorbent Assay using recombinant major surface protein 5. J. Clin. Microbiol., 1998, 36: 777-782.
  • de la Fuente J., Van Den Bussche R.A., Kocan K.M. Molecular phylogeny and biogeography of North American isolates of Anaplasma marginale (Rickettsiaceae: Ehrlichieae). Vet. Parasitol., 2001, 97: 65-76 ( ) DOI: 10.1016/S0304-4017(01)00378-8
  • Carelli G., Decaro N., Lorusso A., Elia G., Lorusso E., Mari V., Ceci L., Buonavoglia C. Detection and quantification of Anaplasma marginale DNA in blood samples of cattle by real-time PCR. Vet. Microbiol., 2007, 124: 107-114 ( ) DOI: 10.1016/j.vetmic.2007.03.022
  • Fyumagwa R.D., Simmler P., Meli M.L., Hoare R., Hofmann-Lehmann R., Lutz H. Prevalence of Anaplasma marginale in different tick species from Ngorongoro Crater, Tanzania. Vet. Parasitol., 2009, 161(1-2): 154-157 ( ) DOI: 10.1016/j.vetpar.2008.12.018
  • Picoloto G., Lima R.F., Olegário L.A.O., Carvalho C.M.E., Lacerda A.C.R., Tomás W.M., Borges P.A.L., Pellegrin A.O., Madruga C.R. Real-time polymerase chain reaction to diagnose Anaplasma marginale in cattle and deer (Ozotoceros bezoarticus leucogaster) of the Brazilian Pantanal. Brazilian Journal of Veterinary Parasitology, 2010, 19(3): 186-188 ( ) DOI: 10.1590/S1984-29612010000300012
  • Torina A., Agnone A., Blanda V., Alongi A., D'Agostino R., Caracappa S., Marino A.M., Di Marco V., de la Fuente J. Development and validation of two PCR tests for the detection of and differentiation between Anaplasma ovis and Anaplasma marginale. Ticks and Tick-borne Diseases, 2012, 3(5-6): 283-287 ( ) DOI: 10.1016/j.ttbdis.2012.10.033
  • Reinbold J.B., Coetzee J.F., Sirigireddy K.R., Ganta R.R. Detection of Anaplasma marginale and A. phagocytophilum in bovine peripheral blood samples by duplex real-time reverse transcriptase PCR assay. J. Clin. Microbiol., 2010, 48(7): 2424-2432 ( ) DOI: 10.1128/JCM.02405-09
  • Molad T., Mazuz M.L., Fleiderovitz L., Fish L., Savitsky I., Krigel Y., Leibovitz B., Molloy J., Jongejan F., Shkap V. Molecular and serological detection of A. centrale-and A. marginale-infected cattle grazing within an endemic area. Vet. Microbiol., 2006, 113: 55-62 ( ) DOI: 10.1016/j.vetmic.2005.10.026
  • Bilgiç H.B., Karagenç T., Simuunza M., Shiels B., Tait A., Eren H., Weir W. Development of multiplex PCR assay for simultaneous detection of Theileria annulata, Babesia bovis and Anaplasma marginale incattle. Exp. Parasitol., 2013, 133(2): 222-229 ( ) DOI: 10.1016/j.exppara.2012.11.005
  • Lew A.E., Bock R.E., Minchin C.M., Masaka S. A msp1alpha polymerase chain reaction assay for specific detection and differentiation of Anaplasma marginale isolates. Vet. Microbiol., 2002, 86: 325-333 ( ) DOI: 10.1016/S0378-1135(02)00017-2
  • Ybañez A.P., Sivakumar T., Ybañez R.H.D., Ratilla J.C., Perez Z.O., Gabotero S.R., Hakimi H., Kawazu S., Matsumoto K., Yokoyama N., Inokuma H. First molecular characterization of Anaplasma marginale in cattle and Rhipicephalus (Boophilus) microplus ticks in Cebu, Philippines. J. Vet. Med. Sci., 2013, 75: 27-36 ( ) DOI: 10.1292/jvms.12-0268
  • Vidotto M.C., McGuire T.C., McElwain T.F., Palmer G.H., Knowles D.P. Jr. Intermolecular relationships of major surface proteins of Anaplasma marginale. Infect. Immunol., 1994, 62(7): 2940-2946.
  • Brayton K.A., Kappmeyer L.S., Herndon D.R., Dark M.J., Tibbals D.L., Palmer G.H., McGuire T.C., Knowles D.P. Jr. Complete genome sequencing of Ana-plasma marginale reveals that the surface is skewed to two superfamilies of outer membrane proteins. PNAS USA, 2005, 102(3): 844-849 ( ) DOI: 10.1073/pnas.0406656102
  • Глазко В.И., Косовский Г.Ю., Ковальчук С.Н., Архипов А.В., Петрова И.О., Дедович Г.О., Глазко Т.Т. Инвертированный повтор микросателлита (AGC)6G фланкирует районы ДНК с участками гомологии к ретротранспозонам в геноме крупного рогатого скота. Инновационные технологии в медицине, 2014, 2(03): 63-79.
Еще
Статья научная