Сравнительная оценка подвижности и концентрации сперматозоидов трутней медоносной пчелы методом традиционной микроскопии и CASA

Автор: Гулов А.Н., Колчаева И.Н., Шестакова А.И., Брандорф А.З.

Журнал: АгроЗооТехника @azt-journal

Рубрика: Разведение, селекция и генетика сельскохозяйственных животных

Статья в выпуске: 4 т.6, 2023 года.

Бесплатный доступ

Изучение качества спермы трутней медоносных пчел представляет собой комплексный анализ, требующий оценки множества характеристик сперматозоидов. Такой анализ на сегодняшний день осуществляется методом традиционной глазомерной микроскопии. Существует также аппаратный метод оценки качества спермы с помощью CASA (Computer-aided sperm analyses). Наиболее широкое распространение метод CASA получил в животноводстве. Цель настоящего исследования - определить различия в оценке подвижности и концентрации сперматозоидов трутней медоносной пчелы методом глазомерной микроскопии и CASA. Сперму отбирали методом искусственной стимуляции выворачивания эндофаллоса у половозрелых трутней в возрасте 22-30 суток с помощью оборудования для искусственного осеменения SCHLEY-System модель 1.04. Методом CASA качественные характеристики спермы трутней оценивали с помощью анализатора класса спермы Sperm Class Analyzer (SCA) MICROPTIC S.L. Сперматозоиды оценивали на подвижность и концентрацию. Различия между исследуемыми группами сравнивали с помощью t-критерия Стьюдента для независимых выборок. Результаты исследований демонстрируют возможность оценки подвижности и концентрации сперматозоидов трутней медоносной пчелы методом CASA в сочетании с фазово-контрастной микроскопией (Ph+). При оценке CASA концентрация сперматозоидов составила в среднем 4,6 млн/мкл, что на 0,4 млн меньше по сравнению с оценкой методом традиционной глазомерной микроскопии и не является достоверно значимой разницей. Общая подвижность сперматозоидов, оцениваемая методом CASA, достоверно отличалась (t = 2,8) от визуальной оценки в среднем на 16,7%. В частности, на определении общей подвижности сперматозоидов трутней методом глазомерной микроскопии сказалась субъективная оценка оператора.

Еще

Трутень, подвижность сперматозоидов, концентрация сперматозоидов, casa

Короткий адрес: https://sciup.org/147242479

IDR: 147242479   |   DOI: 10.15838/alt.2023.6.4.4

Список литературы Сравнительная оценка подвижности и концентрации сперматозоидов трутней медоносной пчелы методом традиционной микроскопии и CASA

  • Атрощенко М.М., Никиткина Е.В., Калашников В.В. [и др.] (2018). Оценка подвижности сперматозоидов жеребцов методом CASA // Коневодство. № 6. С. 30–33.
  • Бородачев А.В., Бородачева В.Т. (1989). Технология инструментального осеменения пчелиных маток. Рыбное: НИИ пчеловодства. 33 с.
  • Верма Л. (1977). Влияние ионов жидкости семяприемника и продолжительности хранения спермы на потребление кислорода сперматозоидами и их подвижность // Генетика, селекция и репродукция пчел. Бухарест: Апимондия. 280 с.
  • Милованов В.К. (1962). Биология воспроизведения и искусственное осеменение животных. Москва. 696 с.
  • Науменкова В.А., Атрощенко М.М., Гулов А.Н., Широкова О.В., Фролова Н.А. (2020). Сравнительная оценка определения целостности мембран спермиев жеребцов различными методами // Российская сельскохозяйственная наука. № 3. С. 45–48.
  • Руттнер Ф. (1975). Инструментальное осеменение пчелиных маток / Международный институт технологии и экономики пчеловодства. Бухарест: Апимондия. 128 с.
  • Borsuk G., Kozłowska M., Anusiewicz M., Paleolog J. (2018). Nosema ceranae changes semen characteristics and damages sperm DNA in honeybee drones. Invertebrate Survival Journal, 15, 197–202. Available at: https://www.isj.unimore.it/index.php/ISJ/article/download/425/405/832
  • Collins A.M. (2005). Insemination of honey bee, Apis mellifera, queens with non-frozen stored semen: Sperm concentration measured with a pectrophotometer. Journal of Apicultural Research, 44 (4), 141–145. DOI: 10.1080/00218839.2005.11101168
  • Duncan W., Glew M., Wang X., Flaherty S., Matthews C. (1993). Prediction of fertilization rates from semen variables. Fertility Sterility, 59, 1233–1238. DOI: 10.1016/s0015-0282(16)55982-2
  • Gil M.C., Garcia-Herreros M., Baron F.J., Aparicio I.M., Santos A.J., Garcia-Marin L.J. (2009). Morphometry of porcine spermatozoa and its functional significance in relation with the motility parameters in fresh semen. Theriogenology, 71, 254–263. DOI: 10.1016/jtheriogenology.2008.07.2007
  • Hinting A., Comhaire F., Vermeulen L. [et al.] (1990). Value of sperm characteristics and the result of in vitro fertilization for predicting the outcome of assisted reproduction. International Journal Andrology, 13, 59–64. DOI: 10.1111/j.1365-2605.1990.tb00960.x
  • Inouri-Iskounen A., Sadeddine-Zennouchec O., Nait Moulouda M., Kebiecheb M., Iguer-Ouadaa M. (2020). In vitro effects of imidacloprid on honey bee sperm: evaluation using computer-aided sperm analysis (CASA). Journal of Apicultural Research, 59 (4), 343–349. DOI: 10.1080/00218839.2020.1775017
  • Lu J.C., Huang Y.F., Lu N.Q. (2014). Computer-aided sperm analysis: Past, present and future. Andrologia, 46 (4), 329–338. DOI: 10.1111/and.12093
  • Murraya J.F., Horsta G.D., Allsoppb M., Christina R., Kotzea M. (2022). A new fluorescent method to determine honey bee sperm motility parameters with computer-aided sperm analysis. Journal of Apicultural Research, 1, 1–9. DOI: 10.1080/00218839.2022.2090729
  • Peng C.Y.-S., Yin C., Yin L.R.S. (1993). Ultrastructure of honey bee, Apis mellifera, sperm with special emphasis on the acrosomal complex following high-pressure freezing fixation. Physiol. Èntomol., 18, 93–101. DOI: 10.1080/00218839.2022.2090729
  • Rhodes J.W. (2008). Semen Production in Drone Honeybees. Rural Industries Research and Development Corporation. Available at: https://rirdc.infoservices.com.au/downloads/08-130
  • Verstegen J., Iguer-Ouada M., Onclin K. (2002). Computer assisted semen analyzers in andrology research and veterinary practice. Theriogenology, 57, 149–179. Available at: https://www.sciencedirect.com/science/article/pii/S0093691X01006641
  • Yaniz J., Palacin I., Santolaria P. (2019). Effect of chamber characteristics, incubation, and diluent on motility of honey bee (Apis mellifera) drone sperm. Apidologie, 50, 472–481. Available at: https://hal.science/hal-02889952/document
  • Yaniz J., Silvestre M.A., Santolaria P. (2020). Sperm quality assessment in honey bee drones. Biology, 9 (7), 174. Available at: https://doi.org/10.3390/biology9070174
Еще
Статья научная