Влияние факторов роста тромбоцитов на пролиферацию сперматогенного эпителия после локального облучения электронами в нестерилизующей дозе

Автор: Демяшкин Г.А., Боровая Т.Г., Андреева Ю.Ю., Корякин С.Н., Вадюхин М.А., Щекин В.И., Лысанская Е.В.

Журнал: Вестник Российского научного центра рентгенорадиологии Минздрава России @vestnik-rncrr

Рубрика: Молекулярная медицина, патоморфология

Статья в выпуске: 4 т.21, 2021 года.

Бесплатный доступ

Нарушение мужской репродуктивной функции, вызванное облучением электронами, приводящим к снижению пролиферативной активности половых клеток, а также разработка способов её коррекции являются актуальными. Влияние факторов роста бедной лейкоцитамиплазмы, обогащенной тромбоцитами (LP-PRP), обладающих высокой регенеративной способностью для восстановления сперматогенеза остается малоизученным.Цель исследования: иммуногистохимическая оценка пролиферации сперматогенного эпителия после облучения электронами дозой 2 Гр и коррекции плазмой, обогащенной тромбоцитами. Материал и методы. Крысы породы Wistar (n=135) были поделены на 5 групп: I - контроль, II - 2IR, III - 2IR+LP-PRP+IGF-1, IV - 2IR+LP-PRP и V - LP-PRP. В I группе (n=10), крысамвводили физиологический раствор; крысы II, III, IV групп (n=95) получали однократное локальное облучение семенников электронами дозой 2 Гр. Крысам III-ей группы в течение11 недель вводили плазму, содержащую высокую концентрацию тромбоцитов и низкую концентрацию лейкоцитов - LP-PRP в комбинации с рекомбинантным человеческим IGF-1 (2IR+LP-PRP+IGF-1), крысам IV-ой группы (n=30) вводили только LP-PRP. Крысы V-ой группы (n=30) получали LP-PRP (без облучения). Животных всех групп выводили из эксперимента 1 раз в 2 недели на протяжении 12 недель. Семенники изучали гистологическим и иммуногистохимическим (ИГХ) методами, используя антитела к Ki-67, Bcl-2 и p53.Результаты. К окончанию эксперимента, при ИГХ-исследовании в семенных канальцах после облучения выявили смещение пролиферативно-апоптотического баланса в сторону апоптоза половых клеток: уменьшение уровней экспрессии Ki-67 (16,3±1,1%, P function show_abstract() { $('#abstract1').hide(); $('#abstract2').show(); $('#abstract_expand').hide(); }

Еще

Сперматогенез, бесплодие, клеточный цикл, облучение, плазма, обогащенная тромбоцитами, факторы роста

Короткий адрес: https://sciup.org/149139215

IDR: 149139215

Список литературы Влияние факторов роста тромбоцитов на пролиферацию сперматогенного эпителия после локального облучения электронами в нестерилизующей дозе

  • Vander Borght M., Wyns C. Fertility and infertility: Definition and epidemiology. Clin Biochem. 2018. V. 62. P. 2-10. DOI: doi: 10.1016/j.clinbiochem.2018.03.012.
  • Jafari H., Mirzaiinajmabadi K., Roudsari R.L., Rakhshkhorshid M. The factors affecting male infertility: A systematic review. Int J Reprod Biomed. 2021. V. 19. No. 8. P. 681-688. DOI: 10.18502/ijrm.v19i8.9615.
  • Qu N., Itoh M., Sakabe K. Effects of Chemotherapy and Radiotherapy on Spermatogenesis: The Role of Testicular Immunology. Int J Mol Sci. 2019. V. 20. No. 4. Article ID 957. DOI: 10.3390/ijms20040957.
  • Abd El Tawab A.M., Shahin N.N., AbdelMohsen M.M. Protective effect of Satureja montana extract on cyclophosphamide-induced testicular injury in rats. Chem Biol Interact. 2014. V. 224. P. 196-205. DOI: 10.1016/j.cbi.2014.11.001.
  • Alp B.F., Kesik V., Malkoç E., et al. The effect of melatonin on procarbazine induced testicular toxicity on rats. Syst Biol Reprod Med. 2014. V. 60. No. 6. P. 323-328. DOI: 10.3109/19396368.2014.930212.
  • Everts P., Onishi K., Jayaram P., et al. Platelet-Rich Plasma: New Performance Understandings and Therapeutic Considerations in 2020. Int J Mol Sci. 2020. V. 21. No. 20. P. 77-94. DOI: 10.3390/ijms21207794.
  • Garcia A., Su T.T. Cell cycle regulation. Fly (Austin). 2008. V. 2. No. 3. P. 133-137. DOI: 10.4161/fly.6333.
  • Dehghani F., Sotoude N., Bordbar H., et al. The use of platelet-rich plasma (PRP) to improve structural impairment of rat testis induced by busulfan. Platelets. 2019. V. 30. No. 4. P. 513-520. DOI: 10.1080/09537104.2018.1478400.
  • Guo M., Hay B.A. Cell proliferation and apoptosis. Curr Opin Cell Biol. 1999. V. 11. No. 6. P. 745-752. DOI: 10.1016/s0955-0674(99)00046-0.
  • Zhao W.P., Wang H.W., Liu J., et al. Positive PCNA and Ki-67 Expression in the Testis Correlates with Spermatogenesis Dysfunction in Fluoride-Treated Rats. Biol Trace Elem Res. 2018. V. 186. No. 2. P. 489-497. DOI: 10.1007/s12011-018-1338-6.
  • Bagheri H., Salajegheh A., Javadi A., et al. Radioprotective Effects of Zinc and Selenium on Mice Spermatogenesis. J Biomed Phys Eng. 2020. V. 10. 707–712. DOI: 10.31661/jbpe.v0i0.957.
  • Wang Q., Zhou Y., Wang X., Evers B.M. Glycogen synthase kinase-3 is a negative regulator of extracellular signal-regulated kinase. Oncogene. 2006. V. 25. No. 1. P. 43-50. DOI: 10.1038/sj.onc.1209004.
  • Morel C., Carlson S.M., White F.M., Davis R.J. Mcl-1 integrates the opposing actions of signaling pathways that mediate survival and apoptosis. Mol Cell Biol. 2009. V. 29. No. 14. P. 3845-3852. DOI: 10.1128/MCB.00279-09.
  • Reisz J.A., Bansal N., Qian J., et al. Effects of ionizing radiation on biological molecules--mechanisms of damage and emerging methods of detection. Antioxid Redox Signal. 2014. V. 21. No. 2. P. 260-292. DOI: 10.1089/ars.2013.5489.
  • Демяшкин Г.А. Иммунофенотипическая характеристика сперматогенеза при идиопатической форме мужского бесплодия. Патологическая физиология и экспериментальная терапия. 2020. Т. 64. No. 2. С. 63-73. DOI: 10.25557/0031-2991.2020.02.%2063-73
  • Кубатиев А.А., Боровая Т.Г. Жуховицкий В.Г. и др. Микрочастицы тромбоцитов: образование и свойства. Патогенез. 2017. Т. 15. No. 2. С. 4-13. DOI: 10.25557/GM.2017.2.7296
  • Maria-Angeliki G., Alexandros-Efstratios K., Dimitris R., Konstantinos K. Platelet-rich Plasma as a Potential Treatment for Noncicatricial Alopecias. Int J Trichology. 2015. V. 7. No. 2. P. 54-63. DOI: 10.4103/0974-7753.160098.
Еще
Статья научная