Влияние контаминированного микотоксинами корма и противопаразитарной обработки эприномектином на кишечную микробиоту животных в условиях эксперимента

Влияние контаминированного микотоксинами корма и противопаразитарной обработки эприномектином на кишечную микробиоту животных в условиях эксперимента

Автор: Герунов Т.В., Герунова Л.К., Плешакова В.И., Иванова Е.А., Крючек Я.О., Золотова Н.С.

Журнал: Вестник Красноярского государственного аграрного университета @vestnik-kgau

Рубрика: Зоотехния и ветеринария

Статья в выпуске: 12, 2023 года.

Бесплатный доступ

Животные подвергаются действию многочисленных стресс-факторов в условиях промышленного содержания. Наибольшую опасность представляют микотоксины, изменяющие состав микробиоты у животных, что является одной из причин развития иммуносупрессии. Цель исследования - установить изменения в составе кишечной микробиоты у лабораторных животных при сочетанном поражении кормов микотоксинами и противопаразитарной обработке эприномектином. Исследование проведено на лабораторных крысах (пять групп по 10 крыс в каждой). Животные 1-й группы получали стандартизированный рацион и не подвергались действию микотоксинов и эприномектина, 2-я, 3-я, 4-я и 5-я группы животных получали корм с содержанием микотоксинов (ДОН - 0,93, Т-2 - 0,025; ZEA - менее 0,02 мг/кг). Дополнительно животных 3-й и 5-й групп подвергали однократной противопаразитарной обработке препаратом Ветэприн (действующее вещество - эприномектин). Энтеросорбент, модифицированный полиаргинином, вводили ежедневно с кормом животным 4-й и 5-й групп в дозе 0,2 г/кг в течение 12 дней на завершающем этапе эксперимента продолжительностью 50 суток. Материалом для бактериологического исследования служили пробы содержимого слепой кишки. В составе просветной микрофлоры слепой кишки у всех животных преобладают Bifidobactererium spp. и Lactobacillus spp. Однако заметное уменьшение их количества отмечается при сочетанном действии эприномектина и микотоксинов на организм животных, что указывает на снижение колонизационной резистентности и угнетение пристеночного пищеварения. На фоне снижения доли облигатной анаэробной микрофлоры в кишечнике возрастает количество факультативных условно-патогенных микроорганизмов. Повышенный рост дрожжеподобных грибов в кишечнике указывает на снижение иммунной реактивности и нарушение барьерной функции кишечника. Использование сорбента, модифицированного полиаргинином, нормализует и стабилизирует микрофлору кишечника.

Еще

Микотоксины, инсектоакарициды, эприномектин, микробиота, дисбиоз, энтеросорбенты, полиаргинин

Короткий адрес: https://sciup.org/140304266

IDR: 140304266   |   DOI: 10.36718/1819-4036-2023-12-207-214

Список литературы Влияние контаминированного микотоксинами корма и противопаразитарной обработки эприномектином на кишечную микробиоту животных в условиях эксперимента

  • Gruber-Dorninger C., Jenkins T., Schatz-mayr G. Global Mycotoxin Occurrence in Feed: A Ten-Year Survey. Toxins (Basel). 2019. Vol. 11. № 7. P. 375. DOI: 10.3390/toxins 11070375.
  • Кононенко Г.П., Буркин А.А., Зотова Е.В. Микотоксикологический мониторинг. Сообщение 1. Полнорационные комбикорма для свиней и птицы (2009–2018 гг.) // Ветеринария сегодня. 2020. № 1 (32). С. 60–65. DOI: 10.29326/2304-196X-2020-1-32-60-65.
  • Микотоксикологический мониторинг кормов и его роль в профилактике микотоксикозов животных / В.И. Дорожкин [и др.] // Вестник Российского университета дружбы народов. Сер. «Агрономия и животноводство». 2022. Т. 17, № 4. С. 546–554. DOI: 10.22363/2312-797X-2022-17-4-546-554.
  • Multi-mycotoxin occurrence in feed, metabo-lism and carry-over to animal-derived food products: A review / J. Tolosa [et al.] // Food Chem Toxicol. 2021. № 158. P. 112661. DOI: 10.1016/j.fct.2021.112661.
  • Сочетанное поражение кормов микотокси-нами как фактор риска множественной патологии животных / Т.В. Герунов [и др.] // Вестник Омского государственного аграрного университета. 2022. Т. 48, № 4. С. 116–123. DOI: 10.48136/2222-0364_2022_ 4_116.
  • Потенциальная опасность сочетанной контаминации корма микотоксинами / Т.В. Герунов [и др.] // Актуальные проблемы и инновации в современной ветеринарной фармакологии и токсикологии: мат-лы VI Междунар. съезда ветеринар. фармакологов и токсикологов / Витебская ордена «Знак Почета» гос. акад. ветеринар. медицины. Витебск, 2022. С. 35–38.
  • Токсигенные свойства микроскопических грибов / Н.Р. Ефимочкина [и др.] // Вестник Томского государственного университета. Биология. 2019. № 45. С. 6–33. DOI: 10.17223/19988591/45/1.
  • Bennett J.W., Klich M. Mycotoxins // Clin Microbiol Rev. 2003. Vol. 16. № 3. P. 497–516. DOI: 10.1128/CMR.16.3.497-516.2003.
  • Guerre P. Mycotoxin and Gut Microbiota In-teractions // Toxins (Basel). Vol. 2020. Vol. 12. № 12. P. 769. DOI: 10.3390/toxins12120769.
  • Микробиота кишечника как отдельная система организма / Ю.В. Юдина [и др.] // Доказательная гастроэнтерология. 2019. Т. 8, № 4. С. 36–43.
  • The role of gut microbiota (commensal bacte-ria) and the mucosal barrier in the pathogene-sis of inflammatory and autoimmune diseases and cancer: contribution of germ-free and gnotobiotic animal models of human disea-ses / H. Tlaskalová-Hogenová [et al.] // Cell Mol Immunol. 2011. Vol. 8. № 2. P. 110–120. DOI: 10.1038/cmi.2010.67.
  • Liew W.P., Mohd-Redzwan S. Mycotoxin: Its Impact on Gut Health and Microbiota // Front Cell Infect Microbiol. 2018. Vol. 8. P. 60. DOI: 10.3389/fcimb.2018.00060.
  • Оппортунистические инфекции у животных: причины распространения и меры профилактики / Т.В. Герунов [и др.] // Вестник КрасГАУ. 2022. № 10 (187). С. 152–160. DOI: 10.36718/1819-4036-2022-10-152-160.
  • Immunotoxicity of Three Environmental Myco-toxins and Their Risks of Increasing Pathogen Infections / Y. Sun [et al.] // Toxins. 2023. Vol. 15, № 3. P. 187.
  • Servin A.L. Antagonistic activities of lactobacilli and bifidobacteria against microbial patho-gens // FEMS Microbiol Rev. 2004. Vol. 28, № 4. P. 405–440. DOI: 10.1016/j.femsre.2004. 01.003.
  • Новик Г.И., Сидоренко А.В. Бифидобактерии: проблемы идентификации и новые технологии пробиотиков медицинского назначения // Проблемы здоровья и экологии. 2006. Т. 10, № 4. С. 119–126.
  • Бифидобактерии: традиционный взгляд и современные генетические исследования / А.Н. Шкопоров [и др.] // Вопросы практической педиатрии. 2007. Т. 2, № 5. С. 76–79.
  • Bifidobacteria and Their Molecular Communi-cation with the Immune System // L. Ruiz [et al.] // Front Microbiol. 2017. № 8. P. 2345. DOI: 10.3389/fmicb.2017.02345.
  • Wells J.M. Immunomodulatory mechanisms of lactobacilli // Microb Cell Fact. 2011. № 10. Suppl 1. P. S17. DOI: 10.1186/1475-2859-10-S1-S17.
  • Dempsey E., Corr S.C. Lactobacillus spp. for Gastrointestinal Health: Current and Future Perspectives // Front Immunol. 2022. № 13. P. 840245. DOI: 10.3389/fimmu.2022.840245.
  • Review of Clinically and Epidemiologically Relevant Coagulase-Negative Staphylococci in Africa / J. Asante [et al.] // Microb Drug Re-sist. 2020. Vol. 26. № 8. P. 951–970. DOI: 10.1089/mdr.2019.0381.
  • Iliev I.D., Leonardi I. Fungal dysbiosis: immuni-ty and interactions at mucosal barriers // Nat Rev Immunol. 2017. Vol. 17. № 10. P. 635–646. DOI: 10.1038/nri.2017.55.
  • Tong Y., Tang J. Candida albicans infection and intestinal immunity // Microbiol Res. 2017. № 198. P. 27–35. DOI: 10.1016/j.micres.2017. 02.002.
  • Jawhara S. Healthy Diet and Lifestyle Improve the Gut Microbiota and Help Combat Fungal Infection // Microorganisms. 2023. Vol. 11. № 6. P. 1556. DOI: 10.3390/microorganisms 11061556.
  • The metabolic basis of arginine nutrition and pharmacotherapy / N.E. Flynn [et al.] // Bio-med Pharmacother. 2002. Vol. 56. № 9. P. 427–438. DOI: 10.1016/s0753-3322(02) 00273-1.
  • Abumrad N.N., Barbul A. Arginine therapy for acute myocardial infarction // JAMA. 2006. Vol. 295. № 18. 2138–2139; author reply 2139–2140. DOI: 10.1001/jama.295.18.2138-b.
  • Alternatively activated macrophages elicited by helminth infection can be reprogrammed to enable microbial killing / K.J. Mylonas [et al.] // J Immunol. 2009. Vol. 182. № 5. P. 3084–3094. DOI: 10.4049/jimmunol.0803463.
  • Exogenous L-arginine increases intestinal stem cell function through CD90+ stromal cells producing mTORC1-induced Wnt2b / Q. Hou [et al.] // Commun Biol. 2020 Oct 23;3(1):611. DOI: 10.1038/s42003-020-01347-9.
  • Effect of L-arginine on intestinal mucosal im-mune barrier function in weaned pigs after Escherichia coli LPS challenge / H.L. Zhu [et al.] // Innate Immun. 2013 Jun;19(3):242–52. DOI: 10.1177/1753425912456223.
  • In ovo feeding of l-arginine regulates intestinal barrier functions of posthatch broilers by acti-vating the mTOR signaling pathway / T. Gao [et al.] // J Sci Food Agric. 2018 Mar;98(4):1416–1425. DOI: 10.1002/jsfa.8609.
Еще
Статья научная
QR-код для установки приложения SciUp Наведите камеру и скачайте бесплатное приложение SciUp