Влияние регуляторных последовательностей гена овальбумина на тканеспецифичность и экспрессию рекомбинантных генов
Автор: Волкова Н.А., Фомин И.К., Доцев А.В., Денискова Т.Е., Зиновьева Н.А.
Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology
Рубрика: Основы маркерной селекции, трансгенез
Статья в выпуске: 6 т.51, 2016 года.
Бесплатный доступ
Использование лентивирусных векторов для генетической модификации эмбриональных клеток кур рассматривается в качестве одного из перспективных способов получения трансгенной сельскохозяйственной птицы. При этом встает вопрос об определении регуляторных элементов гена овальбумина, обеспечивающих тканеспецифичность и высокую экспрессию трансгена в клетках яйцевода кур. Целью настоящей работы стало изучение влияния последовательностей в составе интрона и промотора гена овальбумина на тканеспецифичность и экспрессию трансгена. Мы получили 5 экспрессирующих конструкций на основе лентивирусного вектора pWpxl, где маркерный ген eGFP был поставлен под контроль модифицированных регуляторных элементов гена овальбумина. В состав вектора pW2.8 входил хромосомный фрагмент ДНК размером 2,8 т.п.н., включавший первый экзон, интронную последовательность, а также часть второго экзона гена овальбумина; в состав вектора pW1.2 - хромосомный фрагмент ДНК длиной 1,2 т.п.н., включавший промотор и последовательность (без интрона и первого экзона) гена овальбумина до точки инициации транскрипции; в векторы pW131, pW225, pW315 - хромосомный фрагмент ДНК, аналогичный фрагменту 1,2 т.п.н. в векторе pW1.2, в котором промоторная часть (80 п.н.) была заменена соответственно на 131, 225 или 315 п.н. высокоструктурированной последовательности промоторной области гена β-актина птиц. Контрольный вектор pWCAGgfp включал конститутивный гибридный регуляторный элемент, содержащий энхансер ранних генов цитомегаловируса человека и промотор гена β-актина птиц (CAG). В качестве клеток-мишеней для трансфекции использовали первичную культуру клеток яйцевода кур и клетки фибросаркомы человека 293Т (контроль). Вирусный препарат вносили в концентрации 1-3x107 КОЕ/мл по достижении клетками монослоя. Экспрессию eGFP определяли флуориметрически через 72 ч после трансфекции. В условиях in vitro на культуре клеток яйцевода кур и клеточной линии 293Т была подтверждена низкая степень экспрессии гена eGFP, контролируемого хромосомным фрагментом 2,8 т.п.н. из лидерной области гена овальбумина: экспрессия рекомбинантного белка оказалась в 25 раз ниже, чем в случае вектора pWCAGgfp с конститутивным промотором CAG. При этом степень экспрессии eGFP для конструкций pW2.8 и pW1.2 была идентичной, что свидетельствует об отсутствии влияния интрона на экспрессию рекомбинантной ДНК с использованием этого регуляторного элемента. При замене промотора гена овальбумина на высокоструктурированные элементы конститутивного промотора гена β-актина отмечалось увеличение экспрессии eGFP в 2-3 раза, а также наблюдалось усиление экспрессии по мере удлинения промоторной области гена β-актина (векторы pW131, pW225, pW315). Экспрессия, достигнутая с использованием экзогенного промотора гена β-актина, была сопоставима с контролируемой конститутивным промотором CAG, однако замена промоторной части гена овальбумина на экзогенный промотор (гена β-актина) приводила к дерегуляции тканеспецифичного выражения eGFP, что свидетельствует о том, что транскрипция с тканеспецифичного промотора гена овальбумина не может быть модулирована или активирована с помощью экзогенных энхансеров
Трансгенез, куры, лентивирусные вектора, яйцевод, регуляторные элементы гена овальбумина
Короткий адрес: https://sciup.org/142213981
IDR: 142213981 | УДК: 636.52/.58:573.6.086.83:636.082:577.21 | DOI: 10.15389/agrobiology.2016.6.782rus
Influence of ovalbumin gene regulatory elements on tissue specificity and level of transgene expression
The use of lentiviral vectors for the genetic modification of embryonic chicken cells is re-garded as one of the promising methods for producing transgenic poultry. In this case, it is very im-portant to determine the regulatory elements of the ovalbumin gene, providing tissue-specificity and high transgene expression in cells of chicken oviduct. The aim of this work was to study the effect of the intron sequences and promoter of ovalbumin gene on tissue specificity and level of the transgene expression. For this purpose constructs based on lentiviral vector pWpxl, containing eGFP marker gene under control of the modified ovalbumin gene regulatory elements were obtained. Vector pW2.8 included a chromosomal DNA fragment of 2.8 kb comprising a first exon, intron sequence and part of the second exon of the ovalbumin gene; vector pW1.2 - chromosomal DNA fragment of 1.2 kb comprising a promoter and ovalbumin gene sequence (without the intron and the first exon) to the transcription initiation point; vectors pW131, pW225, pW315 - chromosomal DNA fragment, simi-lar to the fragment of 1.2 kb in pW1.2 vector in which promoter (80 bp) was replaced by highly structured sequence of the birds β-actin gene promoter region of 131, 225 or 315 bp respectively. The control vector pWCAGgfp included constitutive hybrid regulatory element comprising human cytomegalovirus early gene enhancer and birds’ β-actin gene promoter (CAG). Primary culture cells of chick oviduct and human fibrosarcoma cells 293T (control) were used as target cells for transfection. Viral preparation was added after a monolayer of cells reached concentration of 1-3x107 CFU/ml. eGFP expression was determined by fluorimetry in 72 hours after transfection. Low level of expression of eGFP gene controlled by chromosomal fragment of 2.8 kb leader region of the ovalbumin gene was confirmed in vitro using culture of chicken oviduct cells and 293T cell line: in vector pW2.8 recombinant protein expression level was up to 25 times lower compared to pWCAGgfp vector with a constitutive promoter CAG. Yet the eGFP expression levels for pW1.2 and pW2.8 constructs were identical, indicating the absence of introns’ influence on the expression level of the recombinant DNA using this regulatory element. When the ovalbumin gene promoter was re-placed by highly structured elements of β-actin constitutive gene promoter the increase in the ex-pression of eGFP in 2-3 times was observed, as well as the increased expression occurred with lengthening of the promoter region of β-actin gene (vectors pW131, pW225, pW315). The achieved levels of expression with the use of exogenous β-actin gene promoter were comparable with expres-sion levels controlled by a constitutive promoter CAG, however when the promoter part of the oval-bumin gene was replaced by exogenous promoter (gene β-actin), the deregulation of tissue-specific expression of eGFP was observed, indicating that transcription with tissue-specific ovalbumin pro-moter gene can be modulated or activated with exogenous enhancers.
Список литературы Влияние регуляторных последовательностей гена овальбумина на тканеспецифичность и экспрессию рекомбинантных генов
- Mizuarai S., Ono K., Yamaguchi K., Nishijima K-I., Kamihira M., Iijima S. Production of transgenic quails with high frequency of germ-line transmission using VSV-G pseudotyped retroviral vector. Biochem. Biophys. Res. Commun., 2001, 286: 456-463 ( ) DOI: 10.1006/bbrc.2001.5422
- Kwon M.S., Koo B.C., Choi B.R., Park Y.Y., Lee Y.M., Suh H.S., Park Y.S., Lee H.T., Kim J.H., Roh J.Y., Kim N.H., Kim T. Generation of transgenic chickens that produce bioactive human granulocyte-colony stimulating factor. Mol. Reprod. Dev., 2008, 75(7): 1120-1126 ( ) DOI: 10.1002/mrd.20860
- Kwon S.C., Choi J.W., Jang H.J., Shin S.S., Lee S.K., Park T.S., Choi I.Y., Lee G.S., Song G., Han J.Y. Production of biofunctional recombinant human interleukin 1 receptor antagonist (rhIL1RN) from transgenic quail egg white. Biol. Reprod., 2010, 82: 1057-1064 ( ) DOI: 10.1095/biolreprod.109.081687
- Chapman S.C., Lawson A., Macarthur W.C., Wiese R.J., Loechel R.H., Burgos-Trinidad M., Wakefield J.K., Ramabhadran R., Mauch T.J., Schoenwolf G.C. Ubiquitous GFP expression in transgenic chickens using a lentiviral vector. Development, 2005, 132: 935-940 ( ) DOI: 10.1242/dev.01652
- Smith C.A., Roeszler K.N., Sinclair A.H. Robust and ubiquitous GFP expression in a single generation of chicken embryos using the avian retroviral vector, RCASBP. Differentiation, 2009, 77(5): 473-482 ( ) DOI: 10.1016/j.diff.2009.02.001
- Rapp J.C., Harvey A.J., Speksnijder G.L., Hu W., Ivarie R. Biologically active human interferon a-2b produced in the egg white of transgenic hens. Transgenic Res., 2003, 12(5): 569-575 ( ) DOI: 10.1023/A:1025854217349
- Kamihira M., Ono K., Esaka K., Nishijima K., Kigaku R., Komatsu H., Yamashita T., Kyogoku K., Iijima S. High-level expression of single-chain Fv-Fc fusion protein in serum and egg white of genetically manipulated chickens by using a retroviral vector. J. Virol., 2005, 79(17): 10864-10874 ( ) DOI: 10.1128/JVI.79.17.10864-10874.2005
- McGrew M.J., Sherman A., Ellard F.M., Lillico S.G., Gilhooley H.J., Kingsman A.J., Mitrophanous K.A., Sang H. Efficient production of germline transgenic chickens using lentiviral vectors. EMBO Rep., 2004, 5: 728-733 ( ) DOI: 10.1038/sj.embor.7400171
- Scott B.B., Velho T.A., Sim S., Lois C. Applications of avian transgenesis. ILAR J., 2010, 51(4): 353-361 ( ) DOI: 10.1093/ilar.51.4.353
- Furlan-Magaril M., Rebollar E., Guerrero G., Fernandez A., Moltai E., Gonzalez-Buenda E., Cantero M., Montoliu L., Recillas-Targa F. An insulator embedded in the chicken a-globin locus regulates chromatin domain configuration and differential gene expression. Nucl. Acids Res., 2011, 39(1): 89-103 ( ) DOI: 10.1093/nar/gkq740
- Scott B.B., Lois C. Generation of tissue-specific transgenic birds with lentiviral vectors. PNAS, 2005, 102(45): 16443-16447 ( ) DOI: 10.1073/pnas.0508437102
- Dougherty D.C., Sanders M.M. Estrogen action: revitalization of the chick oviduct model. Trends Endocrinol. Metab., 2005, 16: 414-419 ( ) DOI: 10.1016/j.tem.2005.09.001
- Shimizu M., Losos J.K., Gibbins A.M. Analysis of an approach to oviduct-specific expression of modified chicken lysozyme genes. Biochem. Cell Biol., 2005, 83(1): 49-60 ( ) DOI: 10.1139/o04-122
- Byun S.J., Kim S.W., Kim K.W., Kim J.S., Hwang I.S., Chung H.K., Kan I.S., Jeon I.S., Chang W.K., Park S.B., Yoo J.G. Oviduct-specific enhanced green fluorescent protein expression in transgenic chickens. Biosci. Biotechnol. Biochem., 2011, 75(4): 646-649 ( ) DOI: 10.1271/bbb.100721
- Lillico S.G., Sherman A., McGrew M.J., Robertson C.D., Smith J., Haslam C., Barnard P., Radcliffe P.A., Mitrophanous K.A., Elliot E.A., Sang H.M. Oviduct-specific expression of two therapeutic proteins in transgenic hens. PNAS, 2007, 104(6): 1771-1776 ( ) DOI: 10.1073/pnas.0610401104
- Kodama D., Nishimiya D., Nishijima K., Okino Y., Inayoshi Y., Kojima Y., Ono K., Motono M., Miyake K., Kawabe Y., Kyogoku K., Yamashita T., Kamihira M., Iijima S. Chicken oviduct-specific expression of transgene by a hybrid ovalbumin enhancer and the Tet expression system. J. Biosci. Bioeng., 2012, 113(2): 146-153 ( ) DOI: 10.1016/j.jbiosc.2011.10.006
- Schomber T., Kalberer C.P., Wodnar-Filipowicz A., Skoda R.C. Gene silencing by lentivirus-mediated delivery of siRNA in human CD34+ cells. Blood, 2004, 103(12): 4511-4513 ( ) DOI: 10.1182/blood-2003-07-2397
- Sambrook J., Fritsch E.F., Maniatis T. Molecular cloning: a laboratory manual. 2nd ed. Cold Spring Harbor, NY, 1989.
- Tiscornia G., Singer O., Verma I.M. Production and purification of lentiviral vectors. Nature Protocols, 2006, 1(1): 241-245 ( ) DOI: 10.1038/nprot.2006.37
- Новое в клонировании ДНК. Методы/Под ред. Д. Гловера. М., 1989.
- Волкова Н.А., Фомин И.К., Томгорова Е.К., Ветох А.Н., Меннибаева Э.Р., Брем Г., Зиновьева Н.А. Изучение условий эффективного введения трансгенов в эмбриональные клетки кур с использованием лентивирусной векторной системы. Сельскохозяйственная биология, 2015, 50(4): 458-466 ( , 10.15389/agrobiology.2015.4.458eng) DOI: 10.15389/agrobiology.2015.4.458rus