Воспроизводительные качества петухов с нормальным и модифицированным геномом

Воспроизводительные качества петухов с нормальным и модифицированным геномом

Автор: Волкова Н.А., Ветох А.Н., Иолчиев Б.С., Жилинский М.А., Волкова Л.А., Томгорова Е.К., Зиновьева Н.А.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Репродуктивные технологии

Статья в выпуске: 6 т.53, 2018 года.

Бесплатный доступ

К современным успехам в создании трансгенной сельскохозяйственной птицы следует отнести получение эффективных генных конструкций и разработку результативных систем доставки рекомбинантной ДНК в клетки-мишени. Однако при разведении генно-модифицированной птицы вероятны проблемы с трансгенным потомством, в частности репродуктивные нарушения, ограничение численности потомства, снижение его жизнеспособности. В настоящей работе впервые была изучена гистологическая структура семенников и состав сперматогенных клеток в семенных канальцах у трансгенных петухов, полученных нами разными способами, и оценено качество и оплодотворяющая способность их семени. Исследования (ФНЦ ВИЖ им. Л.К. Эрнста, 2017-2018 годы) выполняли на трансгенных петухах ( Gallus gallus L.), полученных на основе породы Первомайская, и их нетрансгенных аналогах. Из трансгенных петухов сформировали две группы - полученные при введении лентивирусного вектора pWRSV в эмбрионы кур in vivo (I группа, n = 4) и посредством трансплантации трансформированных донорских сперматогониев в семенники стерильных петухов-реципиентов ( n = 5)...

Еще

Петухи, трансгенез, генные конструкции, трансплантация, трасформированные сперматогонии, акросома, сперматозоид, качество спермы, оплодотворяющая способность, выводимость

Короткий адрес: https://sciup.org/142220069

IDR: 142220069   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2018.6.1212rus

Список литературы Воспроизводительные качества петухов с нормальным и модифицированным геномом

  • Зиновьева Н.А., Волкова Н.А., Багиров В.А., Брем Г. Трансгенные сельскохозяйственные животные: современное состояние исследований и перспективы. Экологическая генетика, 2015, 13(2): 58-76.
  • Scott B.B., Velho T.A., Sim S., Lois C. Applications of avian transgenesis. ILAR J., 2010, 51(4): 353-361.
  • Brazolot C.L., Petitte J.N., Etches R.J., Verrinder Gibbins A.M. Efficient transfection of chicken cells by lipofection, and introduction of transfected blastodermal cells into the embryo. Mol. Reprod. Dev., 1991, 30(4): 304-312 ( ) DOI: 10.1002/mrd.1080300404
  • Fraser R.A., Carsience R.S., Clark M.E., Etches R.J., Gibbins A.M. Efficient incorporation of transfected blastodermal cells into chimeric chicken embryos. Int. J. Dev. Biol., 1993, 37(3): 381-385.
  • Chojnacka-Puchta L., Kasperczyk K., Płucienniczak G., Sawicka D., Bednarczyk M. Primordial germ cells (PGCs) as a tool for creating transgenic chickens. Pol. J. Vet. Sci., 2012, 15(1): 181-188 ( ) DOI: 10.2478/v10181-011-0132-6
  • Macdonald J., Glover J.D., Taylor L., Sang H.M., McGrew M.J. Characterisation and germline transmission of cultured avian primordial germ cells. PLoS ONE, 2010, 5: e15518 ( )
  • DOI: 10.1371/journal.pone.0015518
  • Han J.Y. Germ cells and transgenesis in chickens. Comparative Immunology, Microbiology and Infectious Diseases, 2009, 32(2): 61-80 ( )
  • DOI: 10.1016/j.cimid.2007.11.010
  • Scott В.B., Lois C. Generation of tissue-specific transgenic birds with lentiviral vectors. PNAS USA, 2005, 102(45): 16443-16447 ( )
  • DOI: 10.1073/pnas.0508437102
  • Kalina J., Senigl F., Micáková A., Mucksová J., Blazková J., Yan H., Poplstein M., Hejnar J., Trefil P. Retrovirus-mediated in vitro gene transfer into chicken male germ line cells. Reproduction, 2007, 134(3): 445-453 ( )
  • DOI: 10.1530/rep-06-0233
  • Kuwana T., Kawashima T., Naito M., Yamashita H., Matsuzaki M., Takano T. Conservation of a threatened indigenous fowl (Kureko dori) using the germline chimeras transplanted from primordial germ cells. J. Poult. Sci., 2006, 43(1): 60-66 ( )
  • DOI: 10.2141/jpsa.43.60
  • Naito M., Harumi T., Kuwana T. Long term in vitro culture of chicken primordial germ cells isolated from embryonic blood and incorporation into germline of recipient embryo. J. Poult. Sci., 2010, 47(1): 57-64 ( )
  • DOI: 10.2141/jpsa.009058
  • Li B., Sun G., Sun H., Xu Q., Gao B., Zhou G., Zhau W., Wu X., Bao W., Yu F., Wang K., Chen G. Efficient generation of transgenic chickens using the SSCs in vivo and ex vivo transfection. Science in China Series C: Life Sciences, 2008, 51(8): 734-742 ( )
  • DOI: 10.1007/s11427-008-0100-2
  • Yu F., Ding L.J., Sun G.B., Sun P.X., He X.H., Ni L.G., Li B.C. Transgenic sperm produced by electrotransfection and allogeneic transplantation of chicken fetal spermatogonial stem cells. Mol. Reprod. Dev., 2010, 77: 340-347.
  • Tyack S.G., Jenkins K.A., O’Neil T.E., Wise T.G., Morris K.R., Bruce M.P., McLeod S., Wade A.J., McKay J., Moore R.J., Schat K.A., Lowenthal J.W., Doran T.J. A new method for producing transgenic birds via direct in vivo transfection of primordial germ cells. Transgenic Res., 2013, 22(6): 1257-1264 ( )
  • DOI: 10.1007/s11248-013-9727-2
  • Min S., Qing S.Q., Hui Y.Y., Zhi F.D., Rong Q.Y., Feng X., Chun L.B. Generation of antiviral transgenic chicken using spermatogonial stem cell transfected in vivo. Afr. J. Biotechnol., 2011, 10(70): 15678-15683.
  • Mozdziak P.E., Borwornpinyo S., McCoy D.W., Petitte J.N. Development of transgenic chickens expressing bacterial beta-galactosidase. Dev. Dyn., 2003, 226(3): 439-445 ( )
  • DOI: 10.1002/dvdy.10234
  • Byun S.J., Kim S.W., Kim K.W., Kim J.S., Hwang I.-S., Chung H.K., Kan I.S., Jeon I.-S., Chang W.-K., Park S.-B., Yoo J.G. Oviduct-specific enhanced green fluorescent protein expression in transgenic chickens. Bioscience, Biotechnology, and Biochemistry, 2011, 75(4): 646-649 ( )
  • DOI: 10.1271/bbb.100721
  • Lillico S.G., Sherman M.J., McGrew C.D., Robertson C.D., Smith J., Haslam C., Barnard P., Radcliffe P.A., Mitrophanous K.A., Elliot E.A. Oviduct-specific expression of two therapeutic proteins in transgenic hens. PNAS USA, 2007, 104(6): 1771-1776 ( )
  • DOI: 10.1073/pnas.0610401104
  • Kwon S.C., Choi J.W., Jang H.J., Shin S.S., Lee S.K., Park T.S., Choi I.Y., Lee G.S., Song G., Han J.Y. Production of biofunctional recombinant human interleukin 1 receptor antagonist (rhIL1RN) from transgenic quail egg white. Biol. Reprod., 2010, 82(6): 1057-1064 ( )
  • DOI: 10.1095/biolreprod.109.081687
  • Айбазов М.М., Мамонтова Т.В., Холмова Е.В. Воспроизводительные показатели трансгенных по гену лактоферрина коз. Сборник научных трудов Всероссийского научно-исследовательского института овцеводства и козоводства, 2016, 2(9): 67-72.
  • Козикова Л.В., Росохацкий С.И., Яковлев А.Ф., Медведев С.Ю. Фенотипические показатели трансгенных кроликов с генами соматотропной оси. Цитология, 2005, 47(9): 814-815.
  • Микроскопическая техника/Под ред. Д.С. Саркизова, Ю.П. Перова. М., 1996.
  • Жункейра Л.К., Карнейро Ж. Гистология/Пер. с англ. под ред. В.Л. Быкова. М., 2009.
  • Айбазов М.М., Аксенова П.В. Лактоферрин человека от трансгенных коз. 1. Особенности физиологии репродукции молочных коз зааненской породы. Вестник ветеринарии, 2010, 3(54): 59-64.
  • Дейкин А.В., Ермолкевич Т.Г., Гурский Я.Г., Краснов А.Н., Георгиева С.Г., Кузнецов С.Л., Деревянко В.Г., Новикова Н.И., Мурашев А.Н., Гольдман И.Л., Садчикова Е.Р. Состояние здоровья и воспроизводительная способность трансгенных мышей, продуцирующих с молоком рекомбинантный белок человека лактоферрин. Доклады Академии наук, 2009, 427(4): 545-548.
  • Калмыков С.П. Воспроизводительные способности овец, трансгенных по рекомбинантному гену фермента химозина. Зоотехния, 2008, 5: 28-30.
Еще
Статья научная
QR-код для установки приложения SciUp Наведите камеру и скачайте бесплатное приложение SciUp