Воздействие бовгиалуронидазы азоксимера на бактериальные биопленки в эякуляте пациентов с хроническим простатитом

Воздействие бовгиалуронидазы азоксимера на бактериальные биопленки в эякуляте пациентов с хроническим простатитом

Автор: Брагина Е.Е., Спивак Л.Г., Газимиев М.А., Евдокимов М.С., Мхитарян О.А.

Журнал: Экспериментальная и клиническая урология @ecuro

Рубрика: Инфекционно-воспалительные заболевания

Статья в выпуске: 3 т.16, 2023 года.

Бесплатный доступ

Введение. Применение молекулярно-биологических методов при анализе бактериального разнообразия (метатаксономика) секрета предстательной железы и эякулята для оценки мужской микробиоты позволило выявить его разнообразие при хроническом простатите. При этом многие штаммы уропатогенов, выявленные при хроническом простатите, проявляют способность к образованию биопленок, при этом нет общепринятых методов лечения биопленочных инфекций. Цель исследования. Изучить действие препарата бовгиалуронидаза азоксимер при хроническом простатите, которое может быть обусловлено ферментативным действием гиалуронидазы на матрикс бактериальных биопленок, что увеличивает биодоступность антибиотиков, приводя к переходу бактерий в планктонное состояние. Материал и методы. Проведено электронно-микроскопическое исследование эякулята 42 пациентов хроническим простатитом, из них 32 рандомно выбранных пациента получали комбинированное антибактериальное лечение (4-6 недель) совместно с бовгиалуронидазы азоксимером (12 недель) (группа I); 10 пациентов получали только антибактериальную терапию согласно клиническим рекомендациям (группа II). На ультратонких срезах подсчитывали количество бактериальных микроколоний и нейтрофильных лейкоцитов на 100 сперматозоидов.

Еще

Бактериальные биопленки, хронический простатит, лонгидаза

Короткий адрес: https://sciup.org/142240023

IDR: 142240023   |   DOI: 10.29188/2222-8543-2023-16-3-87-92

Список литературы Воздействие бовгиалуронидазы азоксимера на бактериальные биопленки в эякуляте пациентов с хроническим простатитом

  • Ejike CE, Ezeanyika LU. Prevalence of chronic prostatitis symptoms in a randomly surveyed adult population of urban-community-dwelling Nigerian males. Int J Urol 2008;15(4):340–3. https://doi.org/10.1111/j.1442-2042.2008.02003.x.
  • Shang Y, Liu C, Cui D, Han G, Yi S. The effect of chronic bacterial prostatitis on semen quality in adult men: a meta-analysis of case-control studies. Sci Rep 2014;4(1):7233. https://doi.org/10.1038/srep07233.
  • Коган М.И., Набока Ю.Л., Исмаилов Р.С. Микробиота секрета простаты: сравнительный анализ хронического простатита категорий II и IIIA. Урология 2020;(2):16-22. https://doi.org/https://dx.doi.org/10.18565/urology.2020.2.16-22. [Kogan M.I., Naboka Y.L., Ismailov R.S. Prostatic secretion microbiota: a comparative analysis of the chronical prostatitis II and IIIa category. Urologiya = Urologiia 2020;(2):16-22. (In Russian)].
  • Suárez JP, Cardona Maya WD. Microbiota, prostatitis, and fertility: bacterial diversity as a possible health ally. Adv Urol 2021:1007366. https://doi.org/10.1155/2021/1007366.
  • Budía A, Luis Palmero J, Broseta E, Tejadillos S, Benedicto A, Queipo JA, et al. Value of semen culture in the diagnosis of chronic bacterial prostatitis: a simplified method. Scand J Urol Nephrol 2006;40(4):326–331. https://doi.org/10.1080/00365590600748247.
  • Cottell E, Harrison RF, McCaffrey M, Walsh T, Mallon E, C Barry-Kinsella. Are seminal fluid microorganisms of significance or merely contaminants? Fertil Steril 2000;74(3):465–70. https://doi.org/10.1016/s0015-0282(00)00709-3
  • Rodin DM, Larone D, Goldstein M. Relationship between semen cultures, leukospermia, and semen analysis in men undergoing fertility evaluation. Fertil Steril 2003;79(Suppl 3):1555–8. https://doi.org/10.1016/s0015-0282(03)00340-6.
  • Weng SL, Chiu CM, Lin FM, Huang WC, Liang C, Yang T, et al. Bacterial communities in semen from men of infertile couples: metagenomic sequencing reveals relationships of seminal microbiota to semen quality. PLoS One 2014;9:e110152. https://doi.org/10.1371/journal.pone.0110152. eCollection 2014.
  • Mändar R, Punab M, Borovkova N, Lapp E, Kiiker R, Korrovits P, et al. Complementary seminovaginal microbiome in couples. Res Microbiol 2015;166:(5):440–7. https://doi.org/10.1016/j.resmic.2015.03.009.
  • Delcaru C, Alexandru I, Podgoreanu P, Grosu M, Stavropoulos E, Chifiriuc MC, et al. Microbial biofilms in urinary tract infections and prostatitis: etiology, pathogenicity, and combating strategies. Pathogens 2016;5(4):65. https://doi.org/10.3390/pathogens5040065.
  • Magri V, Boltri M, Cai T, Colombo R, Cuzzocrea S, De Visschere P, et al. Multidisciplinary approach to prostatitis. Arch Ital Urol Androl 2019;90(4):227-248. https://doi.org/10.4081/aiua.2018.4.227.
  • Mazzoli S. Biofilms in chronic bacterial prostatitis (NIH-II) and in prostatic calcifications. FEMS Immunol Med Microbiol 2010;59(3):337-44. https://doi.org/10.1111/j.1574 695X.2010.00659.x.
  • Flemming HC, Wingender J. The biofilm matrix. Nat Rev Microbiol 2010;8(9):623–33. https://doi.org/10.1038/nrmicro2415.
  • Rather MA, Gupta K, Mandal M. Microbial biofilm: formation, architecture, antibiotic resistance, and control strategies. Braz J Microbiol 2021;52(4):1701-18. https://doi.org/10.1007/s42770-021-00624-x.
  • Lundin PM, Fiser BL, Blackledge MS, Pickett HL, Copeland AL. Functionalized self-assembled monolayers: versatile strategies to combat bacterial biofilm formation. Pharmaceutics 2022;14(8):1613. https://doi.org/10.3390/pharmaceutics14081613.
  • Stewart PS, Costerton JW Antibiotic resistance of bacteria in bioflms. Lancet 2001;358(9276):135–138. https://doi.org/10.1016/S0140-6736(01)05321-1).
  • Roy R, Tiwari M, Donelli G, Tiwari V. Strategies for combating bacterial biofilms: A focus on anti-biofilm agents and their mechanisms of action. Virulence 2018;9:522–554. https://doi.org/10.1080/21505594.2017.1313372.
  • Parrino B, Schillaci D, Carnevale I, Giovannetti E, Diana P, Cirrincione G, et al. Synthetic small molecules as anti-biofilm agents in the struggle against antibiotic resistance. Eur J Med Chem 2019;161:154–178. https://doi.org/10.1016/j.ejmech.2018.10.036.
  • Hemmati F, Rezaee MA, Ebrahimzadeh S, Yousefi L, Nouri R, Kafil HS, et al. Novel strategies to combat bacterial biofilms. Mol Biotechnol 2021;63(7):569–86. https://doi.org/10.1007/s12033-021-00325-8.
  • Ghosh A, Jayaraman N, Chatterji D. Small-molecule inhibition of bacterial biofilm. ACS Omega 2020;5(7):3108–15. https://doi.org/10.1021/acsomega.9b03695.
  • Бутов Ю.С., Васенова В.Ю., Возможности применения и терапевтическая эффективность Лонгидазы при патологиях соединительной ткани. Эффективная фармакотерапия Дерматология и Дерматокосметология 2012;(1):40-43. [Butov Yu.S., Vasenova V.Yu., Possibilities of application and therapeutic efficacy of Longidase in connective tissue pathologies. Effektivnaya farmakoterapiya Dermatologiya i Dermatokosmetologiya = Effective pharmacotherapy Dermatology and Dermatocosmetology 2012;(1):40-43. (In Russdian)].
  • Зайцев А.В., Ходырева Л.А., Дударева А.А., Пушкарь Д.Ю. Современный взгляд на применение ферментных препаратов у больных хроническим простатитом. Клиническая дерматология и венерология 2016;(3): 53-
  • https://doi.org/10.17116/klinderma201615353-60. [Zaitsev A.V., Khodyreva L.A., Dudareva A.A., Pushkar D.Yu. The use of enzymatic drugs in patients with chronic prostatitis: the current view. Klinicheskaya Dermatologiya i Venerologiya = Russian Journal of Clinical Dermatology and Venereology 2016;(3): 53-60. (In Russian).
  • Bergmans L, Moisiadis P, Van Meerbeek P, Quirynen M, Lambrechts P. Microscopic observation of bacteria: review highlighting the use of environmental SEM. Int Endod J 2005;38(11):775–88. https://doi.org/10.1111/j.1365-2591.2005.00999.x.
  • Hannig C, Follo M, Hellwig E, Al-Ahmad A. Visualization of adherent microorganisms using diferent techniques. J Med Microbiol 2010;59(Pt 1):1–7. https://doi.org/10.1099/jmm.0.015420-0.
  • Grin I, Schwarz H, Linke D. Electron microscopy techniques to study bacterial adhesion. Adv Exp Med Biol 2011;715:257-69. https://doi.org/10.1007/978-94-007-0940-9_16.
  • Keleş, A., Keskin, C., Kalkan, M., Yakupoğulları, Y., Gül, M., Aydemir, H., et al. Visualization and characterization of Enterococcus faecalis biofilm structure in bovine dentin using 2D and 3D microscopic techniques. Arch Microbiol 2020; 203(1):269–277. https://doi.org/10.1007/s00203-020-02031-6).
  • Gupta P, Sarkar S, Das B, Bhattacharjee S, Tribedi P. Biofilm, pathogenesis and prevention—a journey to break the wall. Arch Microbiol 2016;198(1):1-15. https://doi.org/10.1007/s00203-015-1148-6.
  • Авдошин В.П., Андрюхин М.И., Михайликов Т.Г. Опыт применения ферментной терапии (Лонгидаза 3000 МЕ, ректальные суппозитории) в комплексном лечении хронического простатита. Урология 2008;(6):55-61. [Avdoshin V.P., Andryukhin M.I., Mikhailikov T.G. Magneto-laser and enzyme therapy in combined treatment of patients with chronic bacterial prostatitis. Urologiya = Urologiia 2008;(6):55-61. (In Russian)].
  • Кульчавеня Е.В., Швецова О.П., Бреусов А.А. Обоснование назначения и эффективность препарата Лонгидаза у больных хроническим простаттом. Урология 2018;(4):64-71 https://doi.org/https://dx.doi.org/10.18565/urology.2018.4:64-71 [Kulchavenya E.V., Shvetsova O.P., Breusov A.A. Rationale of use and effectiveness of longidaza in patients with chronic prostatis. Urologiya = Urologiia 2018;(4):64-71. (In Russian)].
  • Gatina A, Trizna E, Kolesnikova A, Baidamshina D, Gorshkova A, Drucker V, et al. The Bovhyaluronidase Azoximer (Longidaza®) Disrupts Candida albicans and Candida albicans-Bacterial Mixed Biofilms and Increases the Efficacy of Antifungals. Medicina (Kaunas) 2022;58(12):1710. https://doi.org/10.3390/medicina58121710.
Еще
Статья научная
SciUp 2024 © 2024 ©