Ассоциация генов HLA;DRB1 с развитием пароксизмальной ночной гемоглобинурии

Автор: Павлова И. Е., Глазанова Т. В., Шилова Е. Р., Чубукина Ж. В., Розанова О. Е., Бубнова Л. Н.

Журнал: Вестник гематологии @bulletin-of-hematology

Рубрика: Оригинальные статьи

Статья в выпуске: 1 т.17, 2021 года.

Бесплатный доступ

Роль иммунной системы в развитии пароксизмальной ночной гемоглобинурии (ПНГ) подтверждается обнаружением ассоциации между ПНГ и определенными аллельными вариантами генов Главного комплекса гистосовместимости (HLA-генов). При этом механизмы таких ассоциаций остаются неясными. Возможно, это зависит от функциональных свойств определенных молекул HLA-генов.

Пароксизмальная ночная гемоглобинурия, HLA-DRB1

Короткий адрес: https://sciup.org/170175042

IDR: 170175042

Association of HLA;DRB1 genes with the development of paroxysmal nocturnal hemoglobinuria

The role of the immune system in the development of paroxysmal nocturnal hemoglobinuria (PNH) is confirmed by the discovery of an association between PNH and certain allelic variants of the genes of the Major Histocompatibility Complex (HLA genes). Moreover, the mechanisms of such associations remain unclear. Perhaps this depends on the functional properties of certain molecules of the major histocompatibility complex.

Текст научной статьи Ассоциация генов HLA;DRB1 с развитием пароксизмальной ночной гемоглобинурии

Введение. Пароксизмальная ночная гемоглобинурия (ПНГ) представляет собой редкое клональное заболевание крови, характеризующееся хроническим внутрисосудистым гемолизом с рядом осложнений и наклонностью к рецидивирующим тромбозам. В основе заболевания лежит приобретенная соматическая мутация P A гена в гемопоэтических стволовых клетках, что приводит к появлению одного или нескольких ПНГ-клонов с нарушенным синтезом гликозил-инозитоловых ( P — g lycosylphosphatidylinositol) якорных структур, осуществляющих фиксацию на мембране клеток P -связанных протеинов, защищающих собственные эритроциты от агрессивного действия активированного комплемента и комплемент-зависимого лизиса. В настоящее время для выявления ПНГ-клона используется метод высокочувствительной проточной цитометрии (ПЦ) с использованием скрининговой панели с маркерами C 55 и C 59 (для ретикулоцитов и эритроцитов), C 24/FLAER (для гранулоцитов), C 14/FLAER (для моноцитов) [1; 2].

Для ПНГ характерно также наличие цитопении различной степени выраженности и нередко ассоциация с другими заболеваниями, связанными с костномозговой недостаточностью. По данным А. Д. Кулагина с соавторами моно-или билинейные цитопении встречаются у 2/3 больных с классической гемолитической ПНГ [3]. ПНГ-клон различной величины закономерно встречается также у определённой части больных апластической анемией (АА) (до 70 % больных) и миелодиспластическим синдромом (МДС) (10–25 %), реже — при других окогемато-логических заболеваниях [4; 5–7]. При этом размер клона может варьировать в широком диапазоне — от минорного клона до сочетанных вариантов АА/ПНГ, реже МДС/ПНГ с наличием признаков клинически значимого гемолиза и гемолитических кризов. Имеются многочисленные наблюдения, описывающие прогрессию с переходом АА в классическую гемолитическую ПНГ, сопровождающуюся нарастанием размера патологического клона, преимущественно при достижении ремиссии АА [8–11]. В то же время, имеются сведения о случаях выявлении ПНГ-клона небольшого размера без каких-либо клинических и лабораторных признаков патологии [12]. При этом большинство исследователей сходятся во мнении, что клинически значимым, как правило, является размер клона 10 % и более от общего числа клеток крови [8; 10; 13]

Несмотря на то, что молекулярно-генетические особенности и патогенетические механизмы ПНГ подробно изучены, отдельные аспекты остаются недостаточно освещенными. Так, нет ясности в понимании тесной связи данной патологии с другими синдромами костномозговой недостаточности и причин прогрессии с экспансией ПНГ-клонов. Высказывается обоснованное мнение о наличии внутренних факторов эволюции ПНГ-клона [14]. Определенное значение в развитии и прогрессии заболевания придается имму-нообусловленным механизмам. Если в патогенезе АА ведущим механизмом признается иммунообусловленная депрессия кроветворения, то в развитии ПНГ, по мнению ряда исследователей, играет роль иммунная атака и клональная экспансия через иммуноселекцию [15]. Значимым можно считать и утвердившееся в последние годы представление о том, что наличие ПНГ-клона у пациентов с АА является подтверждением иммуноо-посредованного заболевания и фактором, прогнозирующим положительный ответ на стандартную иммуносупрессивную терапию [16–18].

Роль иммунной системы в развитии ПНГ подтверждается обнаружением ассоциации между ПНГ и определенными аллельными вариантами генов Главного комплекса гистосовместимости (HLA-генов). Наиболее часто в литературе упоминается ассоциация развития ПНГ клона с определенными аллелями HLA-генов класса . В исследованиях, выполненных в разных популяциях — в Польше, Японии, Италии — была выявлена повышенная частота HLA- RB1*15:01, HLA- RB1*04:01 и гаплотипа RB1*15:01- QA1*01:02-

QB1*06: 02 [17–19]. В тоже время, есть сведения об особенностях HLA-генов класса при этом заболевании — среди итальянских пациентов с пароксизмальной ночной гемоглобинурией была выявлена повышенная частота гаплотипа HLA-B *14:02-C*08:02 [19]. В одноцентровом исследовании, выполненном в Польше, у пациентов с апластической анемией и наличием ПНГ клона была выявлена ассоциация с аллелем HLA-B*18:01, тогда как для аллеля HLA-A *24:02 установлена протективная роль [20]. При этом механизмы ассоциации аллелей Главного комплекса гистосовместимости с ПНГ остаются неясными. Возможно, это зависит от функциональных свойств определенных молекул Главного комплекса гистосовместимости.

Таким образом, полученные зарубежными исследователями данные свидетельствуют о возможной роли HLA-генов класса и класса в развитии ПНГ. При этом в РФ изучение особенностей распределения аллелей HLA-генов

Таблица 1.

Демографическая и клиническая характеристика пациентов

Количество пациентов

77

Медиана возраста, лет

42 (16–74)

Пол:

Мужской, чел. ( %)

31 (40,3 %)

Женский, чел. ( %)

46 (59,7 %)

Диагнозы направления

АА / ПНГ ( %)

55 (71,4 %)

ПНГ ( %)

16 (20,8)

МДС / ПНГ ( %)

6 (7,8 %)

В качестве популяционного контроля использовалась группа доноров крови, жителей европейской части России, из 1456 человек в возрасте от 18 до 60 лет: мужчин — 871 (59,8 %), женщин — 585 (40,2 %), выразивших добровольное согласие на проведение имму-ногенетического обследования для включения в регистр доноров костного мозга.

Диагностика наличия ПНГ-клона осуществлялась с помощью проточной цитометрии по общепринятой методике с использованием стандартного протокола, рекомендованного Международным Обществом Клинической Цитометрии ( CCS) [2].

ПНГ-клон определяли в периферической крови среди эритроцитов, гранулоцитов и моноцитов, используя проточный цитофлуориметр Beckman Coulter (США). Использовали следующий набор реагентов:для выяв- у пациентов с наличием ПНГ-клона не проводилось.

Целью настоящего исследования являлось изучение особенностей распределения HLA-RB1 аллелей у больных пароксизмальной ночной гемоглобинурией (ПНГ), проживающих в европейской части России.

Материалы и методы. В исследование были включены 77 пациентов, образцы периферической крови которых направлялись в лабораторию иммуногематологии ФГБУ РосНИИГТ ФМБА России из различных регионов европейской части России для выявления ПНГ-клона. Основными диагнозами направления были: апластическая анемия (АА), ПНГ, миелодиспластический синдром (МДС). У подавляющего большинства пациентов (71,4 %) диагнозом направления на обследование являлся АА/ПНГ. Демографическая и клиническая характеристика пациентов представлены в таблице 1 .

ления ПНГ клеток на эритроцитах — C 235a –F TC/ C 59-PE; на гранулоцитах — C 45-PC7/C 15-PC5/ C 24-PE/ FLAER-Alexa 488; на моноцитах — C 45-PC7/C 64-PC5/C 14-PE / FLAER-Alexa 488. Окрашивание лейкоцитов проводили по стандартной методике феноти-пирования для цельной крови, для моноцитов и гранулоцитов в разных пробирках: после добавления к образцу цельной крови антител в объеме, предлагаемом производителем, и 20-ти минутной инкубации в темноте проводили лизирование эритроцитов с последующей отмывкой. Для выявления эритроцитов с ПНГ-фенотипом, цельную кровь предварительно разбавляли в 100 раз, затем инкубировали с антителами в отдельной пробирке с последующей обязательной двойной отмывкой.

Для проведения HLA-типирования гена RB1 геномную ДНК выделяли из ядросо- держащих клеток периферической крови с использованием набора реагентов NA BOX 500 производства «Protrans» (Германия). HLA-типирование гена RB1 проводилось на уровне базового разрешения, т.е. выполнялось определение групп аллелей с помощью полимеразной цепной реакции с сиквенс-специфичными праймерами (PCR-SSP) производства “Protrans” (Германия). В случае выявления группы аллелей HLA- RB1*15 выполнялось высокоразрешающее типиро-вание с помощью PCR-SSP с сиквенс-специ-фичными праймерами производства “Olerup” (Германия).

Статистическую обработку проводили при помощи пакета программ Arlequin software package, version 3.5. Достоверность различий определяли с помощью критерия χ 2 с поправкой Йейтса.

Результаты. На основании результатов, полученных с помощью проточной цитометрии, патологический клон среди гранулоцитов и/ или моноцитов был выявлен у 57 (74,03 %) обследованных лиц; у 20 (25,97 %) пациентов, направленных на обследование, ПНГ-клон не был обнаружен.

Величина ПНГ-клона варьировала от 0,1 % до 99,9 %, при этом клинически значимым считали клон более 10 %, т. н. «большой клон», а содержание клеток с ПНГ-фенотипом от 0,1 до 10 % расценивали как «малый клон». Большой клон был определен у 41 человека (73,2 %), малый клон — у 16 человек (26,8 %).

По результатам иммуногенетического обследования (HLA-типирования) определено, что из 13 установленных в настоящее время групп аллелей HLA- RB1 в общей группе пациентов с наличием ПНГ-клона выявлены практически все, за исключением групп HLA-

RB1*10 и HLA- RB1*12, что объясняется достаточно редкой их частотой у жителей европейской части нашей страны. Анализ распределения групп аллелей показал, что среди пациентов с наличием ПНГ-клона значительно повышена частота группы аллелей HLA- RB1*15–66,07 % против 28,37 % в группе контроля (таблица 2) .

Частота групп аллелей HLA-DRB1 у пациентов с наличием ПНГ-клона

Таблица 2.

Группы аллелей

Частота в группе пациентов с ПНГ клоном ( %), n = 57

Частота в группе популяционного контроля ( %), n = 1456

χ 2

р

HLA-DRB1*01

10,53

23,70

6,10

< 0,005

HLA-DRB1*03

21,05

16,28

0,70

> 0,05

HLA-DRB1*04

17,54

20,40

0,40

> 0,05

HLA-DRB1*07

21,05

25,69

0,76

> 0,05

HLA-DRB1*08

1,75

5,91

2,53

> 0,05

HLA-DRB1*09

3,51

2,47

0,01

> 0,05

HLA-DRB1*10

0,00

1,79

2,35

> 0,05

HLA-DRB1*11

22,81

22,94

0,01

> 0,05

HLA-DRB1*12

0,00

3,85

3,45

> 0,05

HLA-DRB1*13

19,30

25,00

1,14

> 0,05

HLA-DRB1*14

5,26

3,16

0,28

> 0,05

HLA-DRB1*15

64,91

28,37

34,89

< 0,0001

HLA-DRB1*16

1,75

8,65

4,26

< 0,005

При последующем высокоразрешающем типировании группы аллелей HLA- RB1*15 установлено, что в 100 % случаев в этой группе аллелей определялся HLA- RB1*15:01.

На фоне столь значимого увеличения частоты HLA- RB1*15:01 у пациентов с наличием ПНГ-клона установлено достоверное снижение частоты групп аллелей HLA- RB1*01–10,75 % против 23,7 % и HLA-

RB1*16–1,75 % против 8,65 % по сравнению с группой здоровых лиц.

У пациентов с отсутствием ПНГ-клона также было установлено 11 групп аллелей HLA- RB1 (не выявлены HLA- RB1*09 и HLA-

RB1*12). Распределение групп аллелей гена HLA - RB1 незначительно отличалось от такового в группе популяционного контроля за исключением группы аллелей HLA- RB1*14, частота которой существенно превосходила с большой разницей в численности обследо-частоту в контрольной группе: 20 % против ванных групп.

3,16 % (таблица 3) , что может быть связано

Частота групп аллелей HLA-DRB1 у пациентов с отсутствием ПНГ-клона

Таблица 3.

Группы аллелей

Частота в группе пациентов без ПНГ клона ( %), n = 20

Частота в группе популяционного контроля ( %), n = 1456

χ 2

р

HLA-DRB1*01

15,00

23,70

1,38

> 0,05

HLA-DRB1*03

10,00

16,28

1,13

> 0,05

HLA-DRB1*04

10,00

20,40

2,04

> 0,05

HLA-DRB1*07

15,00

25,69

1,81

> 0,05

HLA-DRB1*08

5,00

5,91

0,42

> 0,05

HLA-DRB1*09

0,00

2,47

2,08

> 0,05

HLA-DRB1*10

5,00

1,79

0,05

> 0,05

HLA-DRB1*11

25,00

22,94

0,00

> 0,05

HLA-DRB1*12

0,00

3,85

2,20

> 0,05

HLA-DRB1*13

30,00

25,00

0,06

> 0,05

HLA-DRB1*14

20,00

3,16

12,34

< 0,05

HLA-DRB1*15

45,00

28,37

1,92

> 0,05

HLA-DRB1*16

5,00

8,65

0,79

> 0,05

В этой группе пациентов высокоразрешающее типирование группы аллелей HLA-RB1*15 также выявило HLA- RB1*15:01 в 100 % случаев.

Изучение частоты групп аллелей HLA-RB1 среди пациентов в зависимости от величины патологического клона не показало каких-либо значимых различий (таблица 4). Однако необходимо отметить, что в группе пациентов с малым ПНГ-клоном не выявлено лиц, имеющих в генотипе HLA- RB1*01, а частота HLA- RB1*15:01 существенно превосходила таковую в группе пациентов с большим ПНГ-клоном (81,25 % против 58,54 %).

Таблица 4.

Группы аллелей/ аллель

Частота в группе пациентов с большим ПНГ клоном ( %), n = 41

Частота в группе пациентов с малым клоном ПНГ клоном ( %), n = 16

χ 2

р

HLA-DRB1*01

14,63

0,00

1,29

> 0,05

HLA-DRB1*03

19,51

25,00

0,67

> 0,05

HLA-DRB1*04

17,07

18,75

0,29

> 0,05

HLA-DRB1*07

19,51

25,00

0,67

> 0,05

HLA-DRB1*08

0,00

6,25

3,49

> 0,05

HLA-DRB1*09

2,44

6,25

2,26

> 0,05

HLA-DRB1*10

0,00

0,00

-

HLA-DRB1*11

29,27

12,50

0,96

> 0,05

HLA-DRB1*12

0,00

0,00

-

HLA-DRB1*13

21,95

12,50

0,19

> 0,05

HLA-DRB1*14

4,88

6,25

0,75

> 0,05

HLA-DRB1*15:01

58,54

81,25

3,70

> 0,05

HLA-DRB1*16

4,88

6,25

0,75

> 0,05

Частота групп аллелей HLA-DRB1 у пациентов с ПНГ-клоном в зависимости от величины клона

Изучение частоты групп аллелей HLA- RB1 у пациентов с выявленным ПНГ-клоном в зависимости от диагноза (АА, МДС, ПНГ) показало, что наибольшая частота HLA- RB1*15:01 наблюдалась в группе больных с АА (73,53 %), несколько реже этот аллель определялся у пациентов с МДС (62,5 %) и ПНГ (53,33 %), однако во всех группах больных частота аллеля HLA- RB1*15:01 существенно превышала этот показатель в группе популяционного контроля (таблица 5).

Таблица 5.

Частота групп аллелей HLA-DRB1 у пациентов с ПНГ-клоном в зависимости от диагноза

Группы аллелей/аллель

Частота в группе пациентов с АА ( %), n = 34

Частота в группе пациентов МДС ( %), n = 8

Частота в группе пациентов ПНГ ( %), n = 15

HLA-DRB1*01

5,88

12,50

20,00

HLA-DRB1*03

20,59

12,50

26,67

HLA-DRB1*04

8,82

25,00

33,33

HLA-DRB1*07

29,41

12,50

6,67

HLA-DRB1*08

2,94

0,00

0,00

HLA-DRB1*09

5,88

0,00

0,00

HLA-DRB1*10

0,00

0,00

0,00

HLA-DRB1*11

32,35

12,50

13,33

HLA-DRB1*12

0,00

0,00

0,00

HLA-DRB1*13

5,88

37,50

40,00

HLA-DRB1*14

0,00

12,50

6,67

HLA-DRB1*15:01

73,53

62,50

53,33

HLA-DRB1*16

5,88

12,50

0,00

Заключение. В ходе выполненной работы нами впервые получены данные о распределении частот групп аллелей гена HLA- RB1 у больных с установленным методом проточной цитометрии ПНГ-клоном, проживающих на территории европейской части России.

Установлено, что частота иммуногенетиче-ского маркера HLA- RB1*15:01 значимо повышена как в группе больных пароксизмальной ночной гемоглобинурией, так у больных АА/ПНГ и МДС/ПНГ, что согласуется с данными других авторов о сильных ассоциативных связях аллеля HLA- RB1*15:01 с развитием ПНГ-клона [18–22]. Полученные нами данные свидетельствуют о том, что клональная селекция гемопоэтических стволовых клеток с мутацией P A гена ассоциирована именно HLA- RB1*15:01. В тоже время, согласно результатам наших исследований, наличие

RB1*15:01 не является фактором, определяющим величину патологического клона т. к. у пациентов как с большим, так и с малым клоном с высокой частотой выявлялся этот аллель. К протективным иммуногенетиче- ским факторам развития ПНГ-клона, согласно результатам наших исследований, можно отнести такие иммуногенетические маркеры, как HLA- RB1*01 и HLA- RB1*16.

Несмотря на то, что в настоящее время для диагностики ПНГ-клона успешно применяется стандартный протокол с использованием проточной цитометрии, полученные нами новые сведения об иммуногенетических маркерах развития ПНГ-клона можно использовать в качестве дополнительных критериев дифференциальной диагностики, особенно в случаях выявления минорного клона ПНГ.

Учитывая тот факт, что по данным некоторых зарубежных авторов развитие ПНГ-клона ассоциировано с определенными генами HLA не только класса , но и класса , представляется интересным продолжить эту работу и провести иммуногенетическое обследование, включающее изучение аллелей генов HLA как класса (HLA-A, B, C), так и класса (HLA- QB1, QA1) пациентов с ПНГ-клоном, проживающих на территории европейской части РФ.

Конфликты интересов отсутствует

Источник финансирования

Исследование не имело источника финансирования

Список литературы Ассоциация генов HLA;DRB1 с развитием пароксизмальной ночной гемоглобинурии

  • Borowitz M. J., Craig. F. E., Digiuseppe J. A. et al. Guidelines for the diagnosis and monitoring of paroxysmal nocturnal hemoglobinuria and related disorders by flow cytometry // Cytometry B. Clin. Cytom. — 2010. — Vol. 78, N4. — P. 211–230.
  • Sutherland D. R., Keeney M., Illingworth A. Practical Guidelines for the high-sensitivity detection and monitoring of Paroxysmal Nocturnal Hemoglobinuria (PNH) clones by flow cytometry // Cytometry Part B. — 2012. —Vol. 82B. — P. 195–208.
  • Кулагин А. Д., Климова О. У., Добронравов А. В. и др. Клиническая манифестация и ошибки диагностики классической пароксизмальной ночной гемоглобинурии: Анализ 150 наблюдений // Клиническая онкогематология. Фундаментальные исследования и клиническая практика. — 2017. — Т. 10, № 3. — С. 333–341.
  • De Latour R. P., Mary J. Y., Salanoubat C. et al. Paroxysmal nocturnal hemoglobinuria: natural history of disease subcategories // Blood. — 2008. — Vol. 112. — P. 3099–3106.
  • Glazanova T. V., Chubukina Z. V., Rozanova O. E. et al. Detection of PNH-clone in patients with depression of hemopoiesis // Haematologica. — 2013. — Vol. 98, suppl. 1. — P. 579.
  • Глазанова Т. В., Чубукина Ж. В., Розанова О. Е. и др. Выявление ПНГ-клона у пациентов с апластической анемией и миелодиспластическим синдромом // Вестник гематологии. — 2012. — Т. 8, № 4. — С. 41.
  • Кулагин А. Д., Лисуков И. А., Птушкин В. В. и др. Национальные клинические рекомендации по диагностике и лечению пароксизмальной ночной гемоглобинурии // Онкогематология. — 2014. — Т. 9, № 2. — С. 20–28.
  • Kulagin A, Lisukov I, Ivanova M, et al. Prognostic value of paroxysmal nocturnal haemoglobinuria clone presence in aplastic anaemia patients treated with combined immunosuppression: results of two-centre prospective study. // Br. J. Haematol. — 2014. — Vol. 164, N4. — P. 546–54.
  • Wanachiwanawin W., Siripanyaphinyo U., Piyawattanasakul N., et al. A cohort study of the nature of paroxysmal nocturnal hemoglobinuria clones and PIG-A mutations in patients with aplastic anemia. // Eur. J. Haematol. — 2006. — Vol. 76, Vol. 6. — P. 502–509.
  • Фидарова З. Т., Михайлова Е. А., Гальцева И. В. и др. Динамика ПНГ-клона у больных апластической анемией в процессе иммуносупрессивной терапии // Клиническая лабораторная диагностика. — 2016. — Т. 21, № 8. — С. 490–494.
  • Шилова Е. Р., Глазанова Т. В., Чубукина Ж. В. и др. Пароксизмальная ночная гемоглобинурия у пациентов с апластической анемией: проблемы, особенности, анализ клинического наблюдения // Клиническая онкогематология. — 2019. — Т. 12, № 3. — С. 319–328.
  • Hu R., Mukhina G., Piantadosi S. PIG-A mutations in normal hematopoiesis // Blood — 2005. — Т. 105, № 10 — P. 3848–54с.
  • Bessler M., Mason P., Hillmen P. et al. Paroxysmal nocturnal haemoglobinuria (PNH) is caused by somatic mutations in the PIG-A gene // EMBO J. — 1994. — Vol. 13, N1. — P. 110–117.
  • Inoue N., Iziu-Sarumaru T., Murakami Y. et al. Molecular basis of clonal expansion of hematopoiesis in 2 patients with paroxysmal nocturnal hemoglobinuria (PNH) // Blood. — 2006. — Vol. 108, N13. — P. 4232–4236
  • Кулагин А. Д., Лисуков И. А., Козлов. Апластическая анемия: иммунопатогенез, клиника, диагностика, лечение — Новосибирск: Изд-во “Наука”, 2008. — 236 с.
  • Narkao S., Gale R. P. Are mild/moderate аcquired idiopathic aplastic anaemia and low-risk myelodysplastic syndrome one or two diseases or both and how should it/they be treated? // Leukemia. — 2016. — Vol. 30, N11. — P. 2127–2130.
  • Maciejewski J. P, Follmann D., Nakamura R. et al. Increased frequency of HLA-DR2 in patients with paroxysmal nocturnal hemoglobinuria and the PNH/aplastic anemia syndrome // Blood. — 2001. — Vol 98. — P. 3513–3519.
  • Shichishima T., Okamoto M., Ikeda K. et al. HLA class II haplotype and quantitation of WT1 RNAin Japanese patients with paroxysmal nocturnal hemoglobinuria // Blood. — 2002. — Vol. 100. — P. 22–28.
  • Lombardi M. L., Terrazzano G., Cosentini E. et al. Paroxysmal nocturnal hemoglobinuria: significant association with specific HLA-A, -B, -C, and -DR alleles in an Italian population // Human Immunology. — 2008. — Vol. 69. — P. 202–206.
  • Nowak J., Mika-Witkowska R., Mendek-Czajkowska E. et al. The patterns of MHC association in aplastic and non-aplastic paroxysmal nocturnal hemoglobinuria // Archivum Immunologiae et Therapiae Experimentalis. — 2011. — Vol. 59. — P. 231–238.
  • Абдулкадыров К. М., Бессмельцев С. С. Апластическая анемия — СПб: Изд-во “Наука”; “Издательство KN”, 1995. — 232 с.
  • West A., Godley L., Churpek J. E. Familial myelodysplastic syndrome/acute leukemia syndromes: a review and utility for translational investigations // Ann. NY Acad. Sci. — 2014. — Vol. 1310, N1. — P. 111–118.
Еще