Мезенхимные стромальные клетки костного мозга и их роль в формировании опухолевой ниши при онкогематологических заболеваниях

Мезенхимные стромальные клетки костного мозга и их роль в формировании опухолевой ниши при онкогематологических заболеваниях

Автор: Чубарь А. В., Семенова Н. Ю., Ругаль В. И., Бессмельцев С. С., Котова А. В., Масленникова И. И., Иволгин Д. А., Енукашвили Н. И.

Журнал: Вестник гематологии @bulletin-of-hematology

Рубрика: Оригинальные статьи

Статья в выпуске: 1 т.15, 2019 года.

Бесплатный доступ

Мезенхимные стромальные клетки (МСК) являются одними из ключевых компонентов ниши гемопоэтической стволовой клетки. Несмотря на многочисленные исследования, посвящённые фенотипу и дифференцировке МСК в костном мозге (КМ), данные об их функционировании в организме ограничены. Функциональная пластичность этих клеток находит применение в терапии. Особый интерес МСК КМ представляют в связи с их ролью в развитии гематологических заболеваний. В обзоре рассматриваются фенотипические особенности МСК КМ, вопросы их гетерогенности и иерархии, а также их роль в формировании опухолевого микроокружения.

Мезенхимные стромальные клетки, костный мозг, микроокружение, ниша гемопоэтических стволовых клеток

Короткий адрес: https://sciup.org/170172531

IDR: 170172531

Список литературы Мезенхимные стромальные клетки костного мозга и их роль в формировании опухолевой ниши при онкогематологических заболеваниях

  • Friedenstein A., Chailakhjan R., Lalykina K. The development of fibroblast colonies in monolayer cultures of guinea-pig bone marrow and spleen cells // Cell Tissue Kinet.— 1970.— Vol. 3, N4.— P. 393-403.
  • Caplan A. Mesenchymal stem cells // J. Orthop. Res.— 1991.—Vol. 9, N5.— P. 641-650.
  • Horwitz E. M., Le Blanc K., Dominici M. et al. Clarification of the nomenclature for MSC: The International Society for Cellular Therapy position statement // Cytotherapy.— 2005.— Vo.7, N5.— P. 393-395.
  • Dominici M., Le Blanc K., Mueller I. et al. Minimal criteria for defining multipotent mesenchymal stromal cells. The International Society for Cellular Therapy position statement// Cytotherapy.— 2006.— Vol. 8, N4.—P. 315-317.
  • Galderisi U., GiordanoA. The gap between the physiological and therapeutic roles of mesenchymal stem cells // Medicinal Research Reviews.— 2014.—Vol. 34, N5.—P. 1100-1126.
  • da Silva Meirelles L., Chagastelles P. C., Nardi B. Mesenchymal stem cells reside in virtually all postnatal organs and tissues // J. Cell Sci.— 2006.— Vol. 119, N11.— P. 2204-2211
  • Pacini S., Petrini I. Are MSCs angiogenic cells? New insights on human nestin-positive bone marrow-derived multipotent cells // Front. Cell Dev. Biol.— 2014.—Vol. 2.— 11 p.
  • Al-Nbaheen M., Vishnubalaji R., Ali D. et al. Human stromal (mesenchymal) stem cells from bone marrow, adipose tissue and skin exhibit differences in molecular phenotype and differentiation potential // Stem Cell Rev.— 2013.— Vol. 9.— P. 32-43.
  • Owen M. Marrow stromal stem cells // Journal of Cell Science — 1988.— Suppl. 10.— P. 63-76.
  • MuragliaA., Cancedda R., Quarto R. Clonal mesenchymal progenitors from human bone marrow differentiate in vitro according to a hierarchical model // J. Cell Sci.— 2000.—Vol. 113 — P. 1161-1166.
  • Russell K. C., PhinneyD. G., Barrilleaux B. L. et al. In Vitro High-Capacity Assay to Quantify the Clonal Heterogeneity in Trilineage Potential of Mesenchymal Stem Cells Reveals a Complex Hierarchy of Lineage Commitment // Stem Cells.— 2010.—Vol. 28.— P. 788-798.
  • BakshD., SongL., Tuan R. S. Adult mesenchymal stem cells: characterization, differentiation, and application in cell and gene therapy // J. Cell. Mol. Med.— 2004.—Vol. 8, N3.— P. 301-316.
  • Bianco P., Robey P. G., Saggio I., Riminucci M. "Mesenchymal" Stem Cells in Human Bone Marrow (Skeletal Stem Cells): A Critical Discussion of Their Nature, Identity, and Significance in Incurable Skeletal Disease // Hum. Gene Ther.— 2010.— Vol. 21, N9.— P. 1057-1066.
  • Xe Q, Wan C, Li G. Concise review: Multipotent Mesenchymal Stromal Cells in Blood // Stem Cells.— 2007.— Vol. 25.— P. 69-77.
  • Bonnet P., Delorme B., Lopez A. et al. Multipotential Mesenchymal Stem Cells Are Mobilized into Peripheral Blood by Hypoxia // Stem Cells.— 2006.—Vol. 24, N10.— P. 2202-2208.
  • БуравковаЛ. Б., КапланскийА. С., Андреева Е. Р. и др. Особенности формирования костной мозоли у крыс после введения в область перелома мультипотентных мезенхимальных стромальных клеток, культивированных при различном содержании кислорода // Клеточная трансплантология и тканевая инженерия.— 2009.—Т. IV, № 3.— С. 52-56.
  • Rankin E.B., NarlaA., Park J. K., Lin S. et al. Biology of the Bone Marrow Microenvironment and Myelodysplastic Syndromes // Mol. Genet. Metab.— 2015.—Vol. 116, N1-2.— P. 24-28.
  • Pal B., Das B. In vitro Culture of Naive Human Bone Marrow Mesenchymal Stem Cells: A Stemness Based Approach // Front. Cell Dev.— 2017.—Vol. 5.— 19 p.
  • Айзенштадт А. А., Енукашвили Н. И., ЗолинаТ. Л. и др. Сравнение пролиферативной активности и фенотипа МСК, полученных из костного мозга, жировой ткани и пупочного канатика // Вестник Северо-Западного государственного медицинского университета им. И.И. Мечникова.— 2015.— Т. 7, № 2.—С. 14-22.
  • KufiS., KufiZ., KreyenbergH. et al. CD271 antigen defines a subset of multipotent stromal cells with immunosuppressive and lymphohematopoietic engraftment-promoting properties // Haematologica.— 2010.— Vol. 95, N4.— P. 651-659.
  • Simmons P.J., Torokstorb B. Identification of stromal cell precursors in human bone-marrow by a novel monoclonal-antibody, Stro-1 // Blood.— 1991.—Vol.78, N1.—P. 55-62.
  • Sobiesiak M., Sivasubramaniyan K., Hermann C. et al. The mesenchymal stem cell antigen MSCA-1 is identical to tissue non-specific alkaline phosphatase // Stem Cells Dev.— 2010.—Vol. 19, N5.— P. 669-677.
  • Deschaseaux F., Gindraux F., Saadi R. et al. Direct selection of human bone marrow mesenchymal stem cells using an anti-CD49a antibody reveals their CD45med, low phenotype // Br. J. Haematol.— 2003.—Vol. 122, N3.—P. 506-517.
  • Pinho S., LacombeJ., Hanoun M. et al. PDGFR alpha and CD51 mark human Nestin+ sphere-forming mesenchymal stem cells capable of hematopoietic progenitor cell expansion //J. Exp. Med.— 2013.— Vol. 210, N7.—P. 1351-1367.
  • Tormin A., Li O., Brune J. C. et al. CD146 expression on primary nonhematopoietic bone marrow stem cells is correlated with in situ localization // Blood.— 2011.—Vol. 117, N19.— P. 5067-5077.
  • Jones E., Schäfer R. Where is the common ground between bone marrow mesenchymal stem/stromal cells from different donors and species? // Stem Cell Res. Ther.— 2015.— Vol. 6, N1.— 143 p.
  • D'Ippolito G., Diabira S., Howard G. A., Menei P., Roos B. A., Schiller P. C. Marrow-isolated adult multilineage inducible (MIAMI) cells, a unique population of postnatal young and old human cells with extensive expansion and differentiation potential // J. Cell Sci.— 2004.—Vol. 117, N14.— P. 2971-81.
  • KurodaY., Kitada M., Wakao S. et al. Unique multipotent cells in adult human mesenchymal cell populations // Proc. Natl. Acad. Sci. USA.— 2010.—Vol. 107, N19.— P. 8639-8643.
  • JiangY., Jahagirdar B. N., Reinhardt R. L., et al. Pluripotency of mesenchymal stem cells derived from adult marrow // Nature.— 2002.—Vol.418.—P. 41-49.
  • Petrini M., Pacini S., Trombi L., et al. Identification and purification of mesodermal progenitor cells from human adult bone marrow // Stem Cells Develop.— 2009.—Vol. 18, N6.—P. 857-866.
  • IsernJ., Garcia-Garcia A., MartinA. M. et al. The neural crest is a source of mesenchymal stem cells with specialized hematopoietic stem cell niche function // Elife. — 2014.—Vol.3.— e03696.
  • Morikawa S., MabuchiY., Niibe K. et al. Development of mesenchymal stem cells partially originate from the neural crest // Biochem. Biophys. Res. Commun.— 2009.— Vol. 379, N4.— P. 1114-1119.
  • Bani-Yaghoub M., KendallS. E., Moore D. P. et al. Insulin acts as a myogenic differentiation signal for neural stem cells with multilineage differentiation potential // Development.— 2004.—Vol. 131, N17.— P. 4287-4298.
  • Bianco P., Robey P. G., Saggio I., Riminucci M. "Mesenchymal" Stem Cells in Human Bone Marrow (Skeletal Stem Cells): A Critical Discussion of Their Nature, Identity, and Significance in Incurable Skeletal Disease // Hum. Gene Ther.— 2010.—Vol. 21, N9.— P. 1057-1066.
  • ZorinV. L., PulinA.A., Eremin 1.1. et al. Myogenic potential of human alveolar mucosa derived cells // Cell Cycle.— 2017.—Vol. 16, N6.—P. 545-555.
  • Szaraz P., GratchY. S., Iqbal F., Librach C. L. In vitro differentiation of human mesenchymal stem cells into functional cardiomyocyte-like Cells // J. Visual Exp. JoVE.— 2017.—Vol. 126.— e55757.
  • Qian Q, Qian H, ZhangX, et al. 5-azacytidine induces cardiac differentiation of human umbilical cord-derived mesenchymal stem cells by activating extracellular regulated kinase // Stem Cells Dev.— 2012.— Vol. 21, N1.—P. 67-75.
  • Sanchez-Ramos J. R. Neural cells derived from adult bone marrow and umbilical cord blood // J. Neurosci. Res.— 2002.—Vol. 69, N6.— P. 880-893.
  • Shu S. N., Wei L., WangJ. H. et al. Hepatic differentiation capability ofrat bone marrow-derived mesenchymal stem cells and hematopoietic stem cells // World J. Gastroenterol.— 2004.—Vol. 10, N19 — P. 2818-2822.
  • Chen L. B., Jiang X. B., Yang L. Differentiation of rat marrow mesenchymal stem cells into pancreatic islet beta-cells // WorldJ. Gastroenterol.— 2004.—Vol. 10, N20.— P. 3016-3020.
  • Mets T, VerdonkG.In vitro aging of human bone marrow derived stromal cells // Mech. Ageing Dev.— 1981.— Vol. 16, N1.— P. 81-89.
  • Sivasubramaniyan K, Ilas DC, Harichandan A, et al. Bone marrow-harvesting technique influences functional heterogeneity of mesenchymal stem/stromal cells and cartilage regeneration // Am. J. Sports Med.— 2018.— Vol. 46, N14.— P. 3521-3531.
  • Siegel G., Kluba T., Hermanutz-Klein U. et al. Phenotype, donor age and gender affect function of human bone marrow-derived mesenchymal stromal cells // BMC Med.— 2013.—Vol. 11.— 146 p.
  • Siddappa R., Licht R., van Blitterswijk C. et al. Donor variation and loss of multipotency during in vitro expansion of human mesenchymal stem cells for bone tissue engineering // J. Orthop. Res.— 2007.— Vol. 25, N8.—P. 1029-1041.
  • Bara J. J., Richards R. G., Alini M., Stoddart M. J. Concise review: Bone marrow-derived mesenchymal stem cells change phenotype following in vitro culture: Implications for basic research and the clinic // Stem cells.— 2014.— Vol. 32, N7.— P. 1713-1723.
  • Sakaguchi Y., Sekiya I., Yagishita K. et al. Suspended cells from trabecular bone by collagenase digestion become virtually identical to mesenchymal stem cells obtained from marrow aspirates // Blood.— 2004.— Vol. 104, N9.— P. 2728-2735.
  • DiGirolamo C.M., Stokes D., Colter D. et al. Propagation and senescence of human marrow stromal cells in culture: a simple colony-forming assay identifies samples with the greatest potential to propagate and differentiate // Br. J. Haematol.— 1999.—Vol. 107, N2.—P. 275-281.
  • Agata H., Asahina I., Watanabe N. et al. Characteristic change and loss of in vivo osteogenic abilities of human bone marrow stromal cells during passage // Tissue Eng. PartA.— 2010.—Vol. 16, N2.— P. 663-673.
  • Rennerfeldt D. A., Van Vliet K. J. Concise Review: When colonies are not clones: evidence and implications of intracolony heterogeneity in mesenchymal stem cells // Stem Cells.— 2016.—Vol. 34, N5.— P. 1135-1141.
  • Baxter M.A., Wynn R. F., Jowitt Sn. et al. Study of telomere length reveals rapid aging of human marrow stromal cells following in vitro expansion // Stem Cells.— 2004.— Vol. 22, N5.— P. 675-682.
  • Neuhuber B., Swanger S.A., Howard L. et al. Effects of plating density and culture time on bone marrow stromal cell characteristics // Exp. Hematol.— 2008.—Vol. 36, N9.— P. 1176-1185.
  • Estrada J., Torres Y., Benguria A. et al. Human mesenchymal stem cell-replicative senescence and oxidative stress are closely linked to aneuploidy // Cell Death Dis.— 2013.—Vol. 4.— e691.
  • YlostaloJ., BazhanovN., Prockop D. J. Reversible commitment to differentiation by human multipotent stromal cells in single cell-derived colonies // Exp. Hematol.— 2008.—Vol. 36, N10.— P. 1390-1402.
  • Jones E. A., KinseyA. E., EngishA. et al. Isolation and characterization of bone marrow multipotential mesenchymal progenitor cells // Arthritis & Rheumatism.— 2002.—Vol. 46, N12.— P. 3349-3360.
  • LiuL., CheungT.H., CharvilleG.W., RandoT. A.Isolation of skeletal muscle stem cells by Fluorescence-Activated Cell Sorting // Nat. Protoc.— 2015.—Vol. 10, N10.—P. 1612-1624.
  • АйзенштадтА.А., СказинаМ.А., КотелевскаяЕ.А. и др. Характеристики мезенхимных стромаль-ных клеток пупочного канатика человека при длительном культивировании in vitro // // Вестник Северо-Западного государственного медицинского университета им. И.И. Мечникова.— 2015.— Т. 10, №1.—С. 11-19.
  • Tormin A., Li O., Brune J. C. et al. CD146 expression on primary nonhematopoietic bone marrow stem cells is correlated with in situ localization // Blood.— 2011.—Vol. 117, N19.— P. 5067-5077.
  • PéaultB.Are mural cells guardians of stemness? from pluri- to multipotency via vascular pericytes // Circulation.— 2012.—Vol. 125, N1.—P. 12-13.
  • Caplan A. I. New MSC: MSCs as pericytes are sentinels and gatekeepers // J. Orthop. Res.— 2017.—Vol. 35, N6.—P. 1151-1159.
  • Sacchetti B., FunariA., Michienzi S. et al. Self-renewing osteoprogenitors in bone marrow sinusoids can organize a hematopoietic microenvironment // Cell.— 2007.—Vol. 131, N2.— P. 324-336.
  • Jones E., McGonagle D. Human bone marrow mesenchymal stem cells in vivo // Rheumatology.— 2008.— Vol. 47, N2.—P. 126-131.
  • de Souza L. E., Malta T. M., Kashima Haddad S., Covas D. T. Mesenchymal stem cells and pericytes: to what extent are they related? // Stem cells Dev.— 2016.—Vol. 25, N24.— P. 1843-1852.
  • Corselli M., Chen C. W., Sun B., Yap S. et al. The tunica adventitia of human arteries and veins as a source of mesenchymal stem cells // Stem Cells Dev.— 2012.—Vol. 21, N8.— P. 1299-1308.
  • Crisan M., Yap S., Casteilla L. A perivascular origin for mesenchymal stem cells in multiple human organs // Cell Stem Cell.— 2008.—Vol. 3, N3.— 301 p.
  • Covas D. T., Panepucci R.A., Aparecida M. Fontes AM, et al. Multipotent mesenchymal stromal cells obtained from diverse human tissues share functional properties and gene-expression profile with CD146+ perivascular cells and fibroblasts // Experimental Hematology.— 2008.— Vol. 36, N5.— P. 642-654.
  • Guimaräes-Camboa N., Cattaneo P., Sun Y et al. Pericytes of multiple organs do not behave as mesenchymal stem cells in vivo // Cell Stem Cell.— 2017.— Vol. 20, N3.— P. 345-359.
  • Minasi M. G., Riminucci M., De Angelis L. et al. The meso-angioblast: a multipotent, self-renewing cell that originates from the dorsal aorta and differentiates into most mesodermal tissues // Development.— 2002.— Vol. 129, N11.— P. 2773-2783.
  • Slukvin 1.1., Kumar A. The mesenchymoangioblast, mesodermal precursor for mesenchymal and endothelial cells // Cell Mol. Life Sci.— 2018.
  • Fan W., Crawford R., Xiao Y. The ratio of VEGF/PEDF expression in bone marrow mesenchymal stem cells regulates neovascularization // Differentiation.— 2011.—Vol. 81, N3.— P. 181-191.
  • Quirici N., Soligo D., Bossolasco P. et al. Isolation of bone marrow mesenchymal stem cells by anti-nerve growth factor receptor antibodies // Exp. Hematol.— 2002.—Vol. 30, N7.— P. 783-791.
  • TakashimaY., EraT., Nakao K. et al. Neuroepithelial cells supply an initial transient wave of MSC differentiation // Cell.— 2007.—Vol. 129, N7.— P. 1377-1388.
  • Семенова Н. Ю., Бессмельцев С. С., Ругаль В. И. Биология ниши гемопоэтических стволовых клеток // Клиническая онкогематология. Фундаментальные исследования и клиническая практика.— 2014.— Т. 7, № 4.— С. 501-510.
  • Kudo-Saito C. Cancer associated mesenchymal stem cells aggravate tumor progression // Front. Cell Dev. Biol.— 2015.—Vol. 3.— 23 p.
  • Xu S., De Veirman K., De Becker A. et al. Mesenchymal stem cells in multiple myeloma: a therapeutical tool or target? // Leukemia.— 2018.—Vol. 32, N7.—P. 1500-1514.
  • André T., Meuleman N., Stamatopoulos B. et al. (2013) Evidences of early senescence in multiple myeloma bone marrow mesenchymal stromal cells // PLoS ONE.— 2013.— Vol. 8, N3.— e59756.
  • Xiao P., Heshmati Y., Bouderlique T. et al. Mesenchymal stromal cells, instigator or suppressor for the development of MLL-AF9 induced acute myeloid leukemia? // Blood.— 2016.—Vol. 2, N12.— P. 1488-1488.
  • Ito S., BarrettA.J., DutraA. et al. Long term maintenance of myeloid leukemic stem cells cultured with unrelated human mesenchymal stromal cells // Stem Cell Res.— 2015.—Vol.14, N1.— P. 95-104.
  • ЧубарьА. В., Семенова Н. Ю., Ругаль В. И. и др. Изменение морфо-функциональных характеристик мезенхимных стромальных клеток костного мозга у больных множественной миеломой // Сборик материалов всероссийской конференции «StemCellBio-2018: фундаментальная наука как основа клеточных технологий».— С. 113-114.— Тезисы устного доклада.
  • Ругаль В. И., Бессмельцев С. С., Семенова Н. Ю. и др. Характеристика микроокружения костного мозга при множественной миеломе до и после терапии // Сибирский научный медицинский журнал.— 2019 —Т. 39, № 1.— С. 112-118.
  • Paunescu V., Bojin F. M., Tatu C. A. et al. Tumour-associated fibroblasts and mesenchymal stem cells: more similarities than differences // J. Cell Mol. Med.— 2011.—Vol. 15, N3.—P. 635-646.
  • Shiga K., Hara M., Nagasaki T. et al. Cancer-Associated Fibroblasts: Their Characteristics and Their Roles in Tumor Growth // Cancers.— 2015.—Vol. 7, N4.—P. 2443-2458.
  • Khan M., Adil SER., Olson A. L. The role of mesenchymal stem cells in oncology and regenerative medicine // Future Oncol.— 2017.— Vol. 13, N9.— P. 821-831.
  • Laurenzana I., LamorteD., TrinoS. et al. Extracellular Vesicles: A New Prospective in Crosstalk between Microenvironment and Stem Cells in Hematological Malignancies // Stem Cells Int.—2018.—Vol. 2018.— ID9863194.
  • Sun Z., Wang S., Zhao R. C. The roles of mesenchymal stem cells in tumor inflammatory microenvironment // Journal of Hematology & Oncology.— 2014.— Vol. 7.— 14 p.
  • Reagan M. R., Rosen C. J. Navigating the bone marrow niche: translational insights and cancer-driven dysfunction // Nat. Rev. Rheumatol.— 2016.—Vol. 12, N3.—P. 154-168.
  • Bisping G., Leo R., Wenning D. et al. Paracrine interactions ofbasic fibroblast growth factor and interleukin-6 in multiple myeloma // Blood.— 2003.—Vol. 101, N7.— P. 2775-2783.
  • Han Z., JingY., Zhang S. et al. The role of immunosuppression of mesenchymal stem cells in tissue repair and tumor growth // Cell Biosci.— 2012.— Vol.2.— 8 p.
  • Dong X., Han Z. C., Yang R. Angiogenesis and antiangiogenic therapy in hematologic malignancies // Critical Reviews in Oncology/Hematology.— 2007.—Vol. 62.—P. 105-118.
  • Pruneri G., Ponzoni M., Ferreri A. J.M. et al. Microvessel density, a surrogate marker of angiogenesis, is significantly related to survival in multiple myeloma patients // British Journal of Haematology.— 2002.— Vol. 118, N3.—P. 817-820.
  • Palumbo A. P., Pileri A., Dianzani U. et al. Altered expression of growth-regulated protooncogenes in human malignant plasma cells // Cancer Res.— 1989.—Vol. 49, N17.—P. 4701-4704.
  • Garayoa M., Garcia J. L., SantamariaC. et al. Mesenchymal stem cells from multiple myeloma patients display distinct genomic profile as compared with those from normal donors // Leukemia.— 2009.—Vol. 23, N8.—P. 1515-1527.
  • IwabuchiH., KakiharaT., KobayashiT. et al. A Gene Homologous to human endogenous retrovirus overexpressed in childhood acute lymphoblastic leukemia // Leukemia & Lymphoma.— 2004.—Vol. 45, N11.—P. 2303-2306.
  • Patzke S., Lindeskog M., Munthe E., Aasheim H. C. Characterization of a novel human endogenous retrovirus, HERV-H/F, Expressed in Human Leukemia Cell Lines // Virology.— 2002.— Vol. 303, N1.— P. 164-173.
  • Depil S., Roche C., Dussart P., Prin L. Expression of a human endogenous retrovirus, HERV-K, in the blood cells of leukemia patients // Leukemia.— 2002.—Vol. 16, N2.— P. 254-259.
  • Bergfeld S. A., DeClerck Y. A. Bone marrow-derived mesenchymal stem cells and the tumor microenvironment // Cancer Metastasis Rev.— 2010.— Vol. 29, N2.— P. 249-261.
  • Aanei C. M., Catafal L. C. Evaluation of bone marrow microenvironment could change how myelodysplastic syndromes are diagnosed and treated // CytometryA.— 2018.—Vol. 93, N9.— P. 916-928.
  • ManierS., SaccoA., LeleuX., GhobrialI.M. et al. Bone marrow microenvironment in multiple myeloma progression // J. Biomed. Biotechnol.— 2012.— 157496 p.
  • SceneayJ., Mark J. Smyth M. J., MollerA. The pre-metastatic niche: finding common ground // Cancer Metastasis Rev.— 2013.—Vol. 32, N3-4.—P. 449-464.
  • Raaijmakers M. H.G.P., Mukherjee S., Guo S. et al. Bone progenitor disfunction induces myelodysplasia and secondary leukaemia // Nature.— 2010.— Vol. 464.— P. 852-857.
  • Hoggatt J., KfouryY., Scadden D. T. Hematopoietic stem cell niche in health and disease // Annu Rev. Pathol.— 2016.— Vol. 11.— P. 555-581.
  • Tehrani R. M., Verdi J., Noureddini M. et al. Mesenchymal stem cells: A new platform for targeting suicide genes in cancer // J. Cell Physiol.— 2018.—Vol. 233.— P. 3831-3845.
Еще
Статья обзорная
QR-код для установки приложения SciUp Наведите камеру и скачайте бесплатное приложение SciUp