Молочная продуктивность, обменные процессы и показатели воспроизводства у высокопродуктивных коров под влиянием защищенного L-карнитина

Автор: Чабаев М.Г., Некрасов Р.В., Романов В.Н.

Журнал: Сельскохозяйственная биология @agrobiology

Рубрика: Обмен веществ и продуктивность

Статья в выпуске: 6 т.53, 2018 года.

Бесплатный доступ

Одна из важнейших составляющих биологически полноценного питания высокопродуктивного молочного скота - аминокислотно-витаминная обеспеченность организма. Установлена важная роль карнитина в углеводно-жировом и белковом обмене, участие в транспорте длинноцепочечных жирных кислот через мембрану митохондрий, в выведении из клеток потенциально токсичных метаболитов, в регуляции глюконеогенеза, а также в синтезе гормона роста. Однако отсутствуют рекомендации по дозам L-карнитина для новотельных коров с неодинаковой продуктивностью, а данные об эффекте скармливаемого карнитина часто противоречивы. В настоящей работе мы впервые сравнили действие разных доз защищенного L-карнитина (в виде препарата Carnipass™) и определили оптимальное количество защищенной формы L-карнитина - 45 мг/кг надоенного молока. Целью работы было изучение влияния L-карнитина в защищенной форме на молочную продуктивность, качество молока, интенсивность и направленность физиолого-биохи-мических процессов у новотельных коров ( Bos taurus taurus ) в период раздоя...

Еще

Высокопродуктивные коровы, кормовые добавки, l-карнитин, пищеварение, переваримость, обмен веществ, иммунитет, молочная продуктивность, воспроизводство

Короткий адрес: https://sciup.org/142220065

IDR: 142220065   |   DOI: 10.15389/agrobiology.2018.6.1169rus

Текст научной статьи Молочная продуктивность, обменные процессы и показатели воспроизводства у высокопродуктивных коров под влиянием защищенного L-карнитина

Наряду с оптимизацией кормления (1), при совершенствовании нормирования рационов (2) целесообразно использовать методы, которые способствуют улучшению функций пищеварительного тракта, печени и других систем, обусловливающих повышение эффективности обменных процессов у высокопродуктивных коров (3) и использование потенциала их продуктивности (4).

Известно, что одна из важнейших составляющих биологически полноценного питания животных и человека — аминокислотно-витамин-ная обеспеченность организма (5, 6). Доказана важная роль реакций метилирования в реализации генетической информации (7), в иммунных процессах, при стрессах, физических нагрузках (8), детоксикации организма (9), установлено липотропно-гепатопроктерное действие метилсодержащих соединений (10, 11). Острый дефицит метилсодержащих метаболитов у высокопродуктивного молочного скота связан с их недостаточным содержанием в потребляемых кормах (12, 13). Даже при обогащении рационов высокопротеиновыми добавками (соевый, рапсовый, подсолнечный жмыхи) требуются дополнительные источники метилсодержащих соединений в виде метионина — первой лимитирующей аминокислоты для жвачных животных (14, 15), а также холина, бетаинов, витаминов и минеральных веществ, участвующих в синтезе жизненно важных соединений в процессах переметилирования (16).

В настоящее время значительное внимание уделяется карнитину, который синтезируется в животном организме при достаточной обеспеченности лизином, метионином, холином, витаминами С, В3, В9, В12, В15, кобальтом, железом (17, 18). Установлена важная роль карнитина в углеводно-жировом и белковом обмене (19, 20). Карнитин участвует в транспорте длинноцепочечных жирных кислот через мембрану митохондрий (21), в выведении из клеток потенциально токсичных метаболитов, в регуляции глюконеогенеза (22), а также в синтезе гормона роста (23, 24). L-Карнитин применяется в медицине для поддержания нормальной работы сердечно-сосудистой системы (25), укрепления сердечной мышцы, контроля содержания холестерина в крови, оказания нейрозащитного эффекта, повышения иммунитета, предупреждения атеросклероза и инфаркта миокарда, восстановления организма после нагрузок и стрессов (26), регенерации тканей органов, повышения интенсивности роста мышечной ткани (анаболитическое действие) (27, 28). Он ингибирует накопление арахидоновой кислоты в фосфолипидах тромбоцитов (29), участвует в детоксикации организма (30), широко используется при болезнях почек и печени (31), острых инфекционных заболеваниях, во время беременности и лактации (32, 33), а также для улучшения спермопродукции у сельскохозяйственных животных (34, 35).

У высокопродуктивных коров период после отела связан со значительной перестройкой и усилением обменных процессов (36, 37). При этом для обеспечения синтеза молока расходуются липопротеиды тканей, что приводит к снижению живой массы новотельных коров, возникновению кетозов, гепатозов и других заболеваний (38), существенному недобору молока, уменьшению длительности продуктивного использования животных, ухудшению функции воспроизводства (7).

Результаты многочисленных исследований свидетельствуют об эффективности применения защищенного L-карнитина в рационах крупного рогатого скота, однако отсутствуют рекомендации по дозам L-карнитина для новотельных коров с неодинаковой продуктивностью. Кроме того, данные о влиянии дополнительно скармливаемого карнитина на организм часто противоречивы (39), что требует дальнейшего детального изучения 1170

физиологического и продуктивного действия разных доз защищенного L-карнитина при кормлении скота.

В настоящей работе мы впервые сравнили разные дозы защищенного L-карнитина (в виде препарата Carnipass™) в рационах новотельных высокопродуктивных коров по влиянию на переваримость и использование питательных веществ кормов, рубцовый метаболизм, морфологические, биохимические, иммунологические показатели крови, молочную продуктивность и показатели качества молока. В результате установлена и рекомендована оптимальная доза защищенной формы L-карнитина — 45 мг/кг надоенного молока.

Нашей целью было изучение влияния разных доз защищенного L-карнитина на молочную продуктивность, качественные показатели молока, интенсивность и направленность физиолого-биохимических процессов у новотельных высокопродуктивных коров в период раздоя.

Методика . Для научно-хозяйственного и физиологического опытов (ферма «Дубровицы», ЭХ «Кл¸ново-Чегодаево», п. Дубровицы, Московская обл., 2014 год) сформировали четыре группы чистопородных голшти-низированных черно-пестрых коров ( Bos taurus taurus ) 2-й и 3-й лактаций (по 8 гол. в группе), подобранных по принципу аналогов с учетом количества отелов, живой массы, молочной продуктивности за предшествующую лактацию. Подопытные животные в I (контрольной) и II-IV (опытных) групп получали основной рацион, составленный в соответствии с нормами (40). Животные из II, III и IV групп за 21 сут до отела с комбикормом дополнительно получали соответственно 5,5; 8,3 и 11,1 г препарата Carni-pass™ («Lohmann Animal Health GmbH & Co. KG», Германия) с содержанием активного вещества 18 %, или 1,0; 1,5 и 2,0 г защищенного L-карнитина в перерасчете на активное вещество. После отела коровы в течении 120 сут получали 30; 45 и 60 мг защищенной формы L-карнитина на 1 кг надоенного молока.

Потребление кормов учитывали по разности между розданным количеством и остатками. Пробы молока отбирали от каждой коровы ежедекадно. Каждая среднесуточная проба для анализа была пропорциональна удою (по ГОСТ 13928-84). Количественное содержание белка, жира, молочного сахара, Са, Р в образцах оценивали на анализаторе Bentley 150 («Bentley Instruments, Inc.», США) по ГОСТ 5867-90, ГОСТ 25179-90, ГОСТ 3626-73, ГОСТ 3625-84 и ГОСТ 3624-92. При оценке химического состава молока определяли жирность кислотным методом Гербера, белок — методом формольного титрования, сухое вещество — расчетным методом, количество соматических клеток — по ГОСТ 23453-90. Продуктивность каждой коровы за период опыта, а также в среднем по группе животных оценивали как по количеству молока натуральной жирности, так и в пересчете на молоко 4 % жирности. Затраты кормов (энергетических кормовых единиц, переваримого протеина и концентратов) определяли, исходя из фактического потребления в расчете на 1 кг молока 4 % жирности.

Физиологический балансовый опыт по изучению переваримости питательных веществ проводили на животных I, III и IV групп через 90 сут после отела (из каждой группы отбирали по 3 коровы со средними показателями продуктивности). В течение балансового опыта коровы находились в индивидуальных стойлах, оборудованных кормушками и приспособлениями для сбора кала и мочи. Период учета составлял 5 сут. Среднесуточные пробы кормов, их остатков, кала и мочи отбирали и анализировали по общепринятым зоотехническим методикам (41).

В конце научно-хозяйственного опыта в образцах крови, взятых у животных из каждой группы (n = 3) через 3 ч после кормления, определяли концентрацию общего белка и его фракций, содержание глюкозы, мочевины, аланинаминотрансферазы (АлАТ), аспартатаминотрансферазы (АсАТ), билирубина, щелочной фосфатазы, холестерина, кальция, фосфора с использованием автоматического биохимического анализатора Chem Well («Awareness Technology, Inc.», США). Бактерицидную активность оценивали фотонефелометрически, лизоцимную активность — по В.И. Мутовину (42), фагоцитарную активность — по поглощающей и переваривающей способности клеток крови.

У высокопродуктивных коров для изучения рубцового метаболизма отбирали рубцовое содержимое зондом спустя 3 ч после кормления с дальнейшим определением рН, содержания летучих жирных кислот (ЛЖК), азота аммиака, массовой доли простейших и бактерий. Кислотность определяли рН-метром Аквилон-410 («НПК Аквилон», Россия), общее количество летучих жирных кислот — методом паровой дистилляции в аппарате Маркгама, аммиачный азот — микродиффузным методом по Конвею, общий азот — по Кьельдалю после осаждения трихлоруксусной кислотой (43). Биомассу простейших и бактерий оценивали методом дифференцированного центрифугирования.

Для производственной апробации (ООО «Агрофирма Детчинское», Малоярославецкий р-н, Калужская обл., 2015-2016 годы) из коров краснопестрой породы сформировали две группы по 25 гол. в каждой. Коровам опытной группы скармливали карнитин в защищенной форме за 21 сут до отела (доза 8,3 г•гол. - 1•сут - 1) и на 120-е сут после отела (доза 45 мг/кг надоенного молока) с комбикормом в дополнение к основному сбалансированному общехозяйственному рациону. Животные контрольной группы карнитин не получали.

Оценивали молочную продуктивность, качественные характеристики молока, затраты кормов по вышеописанным методикам. Животных взвешивали в утренние часы до раздачи кормов в разные физиологические периоды: перед запуском, за 3-5 сут до отела, через 5 сут, 1, 2, 3, 4 мес после отела. Определяли индекс осеменения и сервис-период. По результатам зоотехнического учета в течение апробации рассчитывали экономическую целесообразность скармливания защищенного L-карнитина в питании высокопродуктивного молочного скота.

Данные обрабатывали биометрически с использованием t -критерия Стьюдента. Вычисляли среднеарифметические величины ( М ), стандартные ошибки средних ( ± SEM), уровень значимости (р). При р < 0,001 результаты исследований считали высокодостоверными, при р < 0,01 и р < 0,05 — достоверными (44).

Результаты. В научно-хозяйственном опыте потребление питательных веществ и энергии коровами опытных групп, получавших разные дозы защищенного L-карнитина, было сравнительно одинаковым и обеспечило высокую молочную продуктивность (табл. 1).

При скармливании в составе рациона защищенного L-карнитина в количестве 30; 45 и 60 мг/кг надоенного молока среднесуточные удои у коров II, III и IV опытных групп составляли 29,5; 31,6 и 31,4 кг, то есть были на 0,9; 3,0 (р < 0,05) и 2,8 кг (р < 0,05) больше по сравнению с контролем. При пересчете на молоко 4 % жирности разница составляла соответственно 3,7; 10,7 (р < 0,01) и 10,0 % (р < 0,01). Содержание молочного жира, белка и лактозы в суточном молоке у коров опытных групп было больше соответственно на 3,6-10,7; 3,4-11,0 и 4,0-10,7 % по сравнению с контролем. Количество соматических клеток в молоке коров опытных групп в среднем составило 217,5-242,0 тыс/см3 и было ниже, чем в контроле, на 50,0-74,5 тыс/см3, не превышая нормативов для высшего сорта. Содержание сухого вещества, жира, белка, лактозы, кальция и фосфора в молоке у коров из контрольной и опытных групп оказалось сравнительно одинаковым. Использование разных доз защищенного L-карнитина способствовало снижению затрат: энергетических кормовых единиц — на 3,810,8 %, переваримого протеина — на 3,6-10,5 %, концентратов — на 3,810,7 % при производстве 1 кг 4 % молока относительно контроля.

  • 1.    Молочная продуктивность и показатели качества молока у коров голштини-зированной черно-пестрой породы в первые 4 мес лактации при включении в рацион препарата Carnipass™ ( M ± SEM, ферма «Дубровицы», ЭХ «Кл¸но-во-Чегодаево», 2014 год)

    Показатель

    Группа

    I (контроль) ( n = 8)

    II

    ( n = 8)

    III

    ( n = 8)

    IV

    ( n = 8)

    Количественные показатели

    Количество натурального молока, кг

    28,60±0,63

    29,50±0,81

    31,60±0,72*

    31,40±0,73*

    Количество жира в молоке, %

    4,20±0,19

    4,22±0,21

    4,21±0,17

    4,21±0,17

    Количество 4 % молока, кг

    30±0,47

    31,1±0,53

    33,2±0,65**

    33,0±0,64**

    Общее количество натурального молока, кг

    3432

    3540

    3792

    3768

    Общее количество 4 % молока, кг

    3600

    3732

    3984

    3960

    Показатели качества молока

    Сухое вещество, %

    14,12±0,21

    14,16±0,24

    14,19±0,27

    14,20±0,31

    Белок, %

    3,30±0,36

    3,31±0,27

    3,32±0,19

    3,31±0,34

    Лактоза, %

    4,82±0,03

    4,82±0,02

    4,82±0,03

    4,82±0,02

    Соматические клетки, тыс/см3

    292,0±70,5

    242,0±67,7

    217,5±65,4

    225,0±64,6

    Кальций, %

    0,163±0,01

    0,162±0,01

    0,163±0,01

    0,163±0,01

    Фосфор, %

    0,950±0,004

    0,960±0,005

    0,950±0,004

    0,950±0,004

    П р и м е ч а н и е. Описание групп см. в разделе «Методика». Продолжительность опыта 120 сут.

    *, ** Различия с контролем статистически значимы соответственно при р < 0,05 и р < 0,01

    .

  • 2.    Коэффициенты переваримости питательных веществ кормов (%) у коров голштинизированной черно-пестрой породы при включении в рацион препарата Carnipass™ ( M ± SEM, ферма «Дубровицы» ферма «Дубровицы», ЭХ «Кл¸ново-Чегодаево», 2014 год)

  • 3. Биохимические показатели крови и неспецифического иммунитета у коров голштинизированной черно-пестрой породы при включении в рацион препарата Carnipass™ ( M ± SEM, ферма «Дубровицы», ЭХ «Кл¸ново-Чегодаево», 2014 год)
  • 4.    Продуктивность и состав молока у коров голштинизированной черно-пестрой породы при производственной апробации с включением в рацион препарата Carnipass™ ( M ± SEM, ООО «Агрофирма Детчинское», Малоярославецкий р-н, Калужская обл., 2015-2016 годы)

    Показатель

    Группа

    I (контроль) ( n

    = 25) 1

    II ( n = 25)

    Среднесуточный удой, кг

    30,30±0,58

    33,50±0,69*

    Среднесуточный удой, % к контролю

    100,0

    110,6

    Содержание жира в молоке, %

    4,08±0,19

    4,12±0,21

    Содержание жира в молоке,% к контролю

    100,0

    101,0

    Среднесуточный удой молока 4 % жирности, кг

    30,90±0,53

    34,50±0,65*

    Среднесуточный удой молока 4 % жирности, % к контролю

    100,0

    111,6

    Общий удой молока 4 % жирности, кг

    3708

    4140

    Общий удой молока 4 % жирности, % к контролю

    100,0

    111,6

    Белок, %

    3,24±0,23

    3,30±0,31

    Белок, % к контролю

    100,0

    101,9

    Лактоза, %

    4,74±0,02

    4,76±0,02

    Лактоза, % к контролю

    100,0

    100,4

    П р и м е ч а н и е. Описание групп см. в разделе «Методика».

    * Различия с контролем статистически значимы при р < 0,05.

  • 5.    Живая масса и ее изменение после отела у коров голштинизированной чернопестрой породы при производственной апробации и включении в рацион препарата Carnipass™ ( M ± SEM, ООО «Агрофирма Детчинское», Малоярославецкий р-н, Калужская обл., 2015-2016 годы)

При скармливании высокопродуктивным новотельным коровам в составе кормовых рационов c защищенным L-карнитином в дозах 45 и 60 мг/кг молока переваримость сухого вещества повысилась на 3,062,71 %, протеина — на 3,90-3,79 %, жира — на 0,55-0,06 %, клетчатки — на 2,13-1,49 %, безазотистых экстрактивных веществ — на 3,41-2,66 % по сравнению с контролем (табл. 2). Карнитин способствовал улучшению отложения азота на 3,1-3,3 г относительно контроля и обеспечивал достоверные различия в переваримости протеина (р < 0,05).

Показатель

Группа

I (контроль, n = 3)

1      III ( n = 3)       1

IV ( n = 3)

Сухое вещество

72,20±1,24

75,30±1,18

75,00±1,19

Органическое вещество

74,60±1,16

77,60±1,19

77,20±1,23

Протеин

70,10±1,06

74,10±0,12*

73,90±1,14*

Жир

70,30±1,09

70,90±1,27

70,40±1,23

Клетчатка

61,80±1,21

64,90±1,21

63,30±1,35

БЭВ

74,50±1,14

77,90±1,34

77,10±1,37

П р и м е ч а н и е. Описание групп см. в разделе «Методика». БЭВ — безазотистые экстрактивные вещества.

* Различия с контролем статистически значимы при р < 0,05.

Повышение переваримости питательных веществ кормов под влиянием карнитина способствовало увеличению обменного фонда веществ организма и оказало положительное влияние на белковый, углеводножировой и минеральный обмен (табл. 3). Об улучшении азотистого обмена у животных, получавших L-карнитин, свидетельствовало увеличение содержания общего белка в сыворотке крови (на 1,5-4,6 % по сравнению с контролем) и белкового индекса (на 9,4-17,0 %), кроме того, повышалась активность ферментов переаминирования (АлАТ — на 8,1-11,5 %, АсАТ — на 4,9-7,6 %). Содержания мочевины снижалось на 30,1-35,5 %, наименьший показатель отмечали в сыворотке крови у коров III опытной группы, получавших 45 мг L-карнитина/кг молока.

Показатель

Группа

I (контроль) ( n = 3)

II ( n = 3) 1

III ( n = 3) 1

IV ( n = 3)

Общий белок, г/л

82,70±5,86

83,80±4,92

86,10±6,17

85,90±5,98

Альбумины, г/л

28,60±1,47

30,70±1,54

32,80±1,76

32,60±1,81

Глобулины, г/л

54,10±3,24

53,10±4,23

53,30±4,89

53,30±5,14

Коэффициент А/Г

0,53±0,08

0,57±0,10

0,62±0,09*

0,61±0,11*

Мочевина, ммоль/л

4,80±0,98

3,70±0,65

3,60±0,72

3,60±0,76

АлАТ, МЕ/л

20,10±3,16

21,70±2,87

22,40±3,47

22,20±3,54

АсАТ, МЕ/л

85,10±5,43

89,30±6,07

91,60±6,75

91,30±6,72

Глюкоза, ммоль/л

3,20±0,23

3,30±0,18

3,50±0,12

3,40±0,15

Билирубин, ммоль/л

4,70±0,19

4,60±0,15

4,50±0,12

4,50±0,09

Щелочная фосфатаза, МЕ/л

98,40±18,34

96,50±16,67

83,70±17,92

84,01±19,17

Холестерин, ммоль/л

4,80±0,21

4,60±0,32

4,30±0,16

4,40±0,18

Кальций, ммоль/л

2,40±0,13

2,50±0,28

2,80±0,31

2,70±0,26

Фосфор, ммоль/л

1,50±0,15

1,50±0,19

1,60±0,18

1,60±0,18

Бактерицидная активность, %

78,40±1,12

79,10±0,11

85,30±0,64***

85,20±0,78***

Лизоцимная активность, %

35,20±2,34

35,90±2,65**

40,60±2,86**

40,50±2,92**

Фагоцитарный индекс

3,70±0,12

3,90±0,16**

4,60±0,11**

4,50±0,15**

Фагоцитарное число

2,90±0,11

3,20±0,19

3,50±0,17

3,50±0,13

Фагоцитарная активность, %

66,20±4,24

66,90±4,87

68,30±4,52

68,40±4,63

П р и м еч а ни е. Описание групп см. в разделе «Методика». А/Г — соотношение количества альбуминов и глобулинов, АлАТ — аланинаминотрансфераза, АсАТ — аспартатаминотрансфераза.

*, **, *** Различия с контролем статистически значимы соответственно при р < 0,05; р < 0,01 и р < 0,001.

Повышение количества глюкозы на 4,7; 9,8 и 8,2 % по сравнению с контролем в сыворотке крови у животных II, III и IV групп могло свидетельствовать об улучшении энергетической обеспеченности организма коров, получавших карнитин. Концентрация щелочной фосфатазы уменьшалась соответственно на 2,5; 8,6 и 8,3 %. Содержание общего билирубина в сыворотке крови было ниже на 1,4; 4,7 и 4,9 %, холестерина — на 3,9; 8,8 и 8,2 %, что может свидетельствовать об усилении липидного обмена и функций печени. У коров, получавших карнитин в дозе 45 мг/кг молока, повышались показатели неспецифического иммунитета — фагоцитарная, бактерицидная и лизоцимная активность (на 2,08; 6,91 и 5,43 %).

На основании сравнительного анализа биохимических и иммунологических показателей, свидетельствующих об улучшении метаболических процессов в организме, следует считать оптимальным обогащение рационов

L-карнитином в защищенной форме в дозе 45 мг/кг надоенного молока. В научно-производственном опыте было показано, что применение L-карнитина в указанной дозе способствовало повышению среднесуточного удоя натурального и 4 % молока соответственно на 10,6 и 11,6 % по сравнению с показателями у животных контрольной группы (р < 0,05) (табл. 4). Высокая молочная продуктивность у лактирующих коров, установленная при производственной апробации с использованием указанной дозы защищенного L-карнитина, согласуется с результатами, полученными в научно-хозяйственном опыте. При этом мы не выявили значительных различий в содержании жира, белка, лактозы в молоке у подопытных животных.

Затраты энергетических кормовых единиц, переваримого протеина и концентратов при производственной апробации у животных, получавших карнитин, были ниже контроля соответственно на 12,2, 11,8 и 11,4 %.

Показатель

Группа

I (контроль) ( n = 25)

II ( n = 25)

Живая масса, кг:

до запуска

596,0±24,7

601,0±24,8

до отела

676,0±25,9

683,0±26,1

после отела

через 5 сут

575,0±22,6

581,0±23,9

через 1 мес

558,1±22,8

569,4±23,1

через 2 мес

546,4±22,5

561,1±22,6

через 3 мес

545,1±21,9

563,0±23,5

через 4 мес

548,5±22,5

574,2±23,4

Изменение массы после отела, кг:

за 1 мес

- 16,9±1,5

- 11,6±1,2

за 2 мес

- 11,7±1,3

- 8,3±1,2

за 3 мес

- 1,3±0,7

+1,9±0,8

за 4 мес

+3,4±0,8

+11,2±1,1

П р и м е ч а н и е. Описание групп см. в разделе «Методика».

В 1-й мес после отела в контрольной и опытной группах отмечали максимальную потерю живой массы (16,9 и 11,6 кг) (табл. 5). За 2-й мес лактации потеря живой массы у коров, получавших карнитин, снизилась в меньшей степени, чем у их аналогов из контрольной группы (р < 0,05). За период раздоя живая масса у коров в контрольной группе понизилась на

  • 29,9 кг от первоначальной, в опытной группе этот показатель был меньше, составив 19,9 кг, при разнице 2,9 % (р < 0,05). На 3-й мес лактации отмечали среднесуточный прирост живой массы на 63 г у коров из опытной группы по сравнению с контролем, что в целом свидетельствуют об улучшении использования питательных веществ и энергии кормов при включении L-карнитина в рацион.

При добавлении к рациону защищенного L-карнитина в количестве 45 мг/кг молока за два половых цикла стельных коров стало на 16 % больше, что выразилось также в улучшении индекса осеменения (он уменьшился на 0,5 ед.) и сокращении сервис-периода на 24 сут. За время производственной апробации дополнительная прибыль от реализации молока составила 3808 руб/гол. при использовании кормовой добавки Carnipass™ в количестве 8,3 г (доза L-карнитина — 45 мг/кг надоенного молока в перерасчете на активное вещество).

Л И Т Е Р А Т У Р А

ности в энергетических и пластических субстратах и нормирование питания молочных коров с учетом доступности питательных веществ . Боровск, 2007: 130.

ФГБНУ Федеральный научный центр                    Поступила в редакцию

животноводства — ВИЖ им. академика Л.К. Эрнста, 23 марта 2018 года

142132 Россия, Московская обл., г.о. Подольск, пос. Дубровицы, 60,

Sel’skokhozyaistvennaya biologiya [ Agricultural Biology ], 2018, V. 53, ¹ 6, pp. 1169-1179

EFFECTS OF DIFFERENT LEVELS OF PROTECTED L-CARNITINE ON MILK PRODUCTION, METABOLISM, AND REPRODUCTIVE PARAMETERS OF HIGH-PERFORMANCE DAIRY COWS

M.G. Chabaev, R.V. Nekrasov, V.N. Romanov

The authors declare no conflict of interests

Научные собрания

ХХХI ЗИМНЯЯ МОЛОДЕЖНАЯ НАУЧНАЯ ШКОЛА «ПЕРСПЕКТИВНЫЕ НАПРАВЛЕНИЯ ФИЗИКО-ХИМИЧЕСКОЙ БИОЛОГИИ И БИОТЕХНОЛОГИИ»

(11-14 февраля 2019 года, г. Москва, Институт биоорганической химии им. академиков М.М. Шемякина и Ю.А. Овчинникова РАН)

Информация:

Список литературы Молочная продуктивность, обменные процессы и показатели воспроизводства у высокопродуктивных коров под влиянием защищенного L-карнитина

  • Агафонов В.Н., Кальницкий Б.Д., Харитонов Е.Л., Харитонов Л.В. Физиологические потребности в энергетических и пластических субстратах и нормирование питания молочных коров с учетом доступности питательных веществ. Боровск, 2007: 130.
  • Нормы потребностей молочного скота в питательных веществах в США (пер. с англ.). М., 2007.
  • Han van der Kolk J.H., Gross J.J., Gerber V., Bruckmaier R.M. Disturbed bovine mitochondrial lipid metabolism: a review. Vet. Quart., 2017, 37(1): 262-273 ( ) DOI: 10.1080/01652176.2017.1354561
  • Новое в кормлении животных/Под ред. В.И. Фисинина, В.В. Калашникова, И.Ф. Драганова, Х.А. Амерханова. М., 2012.
  • Osorio J.H., Pourfarzam M. Plasma free and total carnitine measured in children by tandem mass spectrometry. Braz. J. Med. Biol. Res., 2002, 35(11): 1265-1271 ( ) DOI: 10.1590/S0100-879X2002001100003
  • Ringseis R., Keller J., Eder K. Regulation of carnitine status in ruminants and efficacy of carnitine supplementation on performance and health aspects of ruminant livestock: a review. Arch. Anim. Nutr., 2018, 72(1): 1-30 ( )
  • DOI: 10.1080/1745039X.2017.1421340
  • Keller J., Ringseis R., Koc A., Lukas I., Kluge H., Eder K. Supplementation with L-carnitine downregulates genes of the ubiquitin proteasome system in the skeletal muscle and liver of piglets. Animal, 2012, 6(1): 70-78 ( )
  • DOI: 10.1017/S1751731111001327
  • Volek J.S., Kraemer W.J., Rubin M.R., Gómez A.L., Ratamess N.A., Gaynor P.L. Carnitine L-tartrate supplementation favorably affects markers of recovery from exercise stress. Am. J. Physiol. Endocrinol. Metab., 2002, 282(2): 474-482 ( )
  • DOI: 10.1152/ajpendo.00277.2001
  • Kraemer W.J., Volek J.S., Dunn-Lewis C. L-carnitine supplementation: influence upon physiological function. Curr. Sport. Med. Rep., 2008, 7(4): 218-223 ( )
  • DOI: 10.1249/JSR.0b013e318180735c
  • Rizzo A., Pantaleo M., Mutinati M., Minoia G., Trisolini C., Ceci E., Sciorsci R.L. Blood and milk oxidative status after administration of different antioxidants during early postpartum in dairy cows. Res. Vet. Sci., 2013, 95(3): 1171-1184 ( )
  • DOI: 10.1016/j.rvsc.2013.07.016
  • Романов В.Н., Боголюбова Н.В., Чабаев М.Г., Некрасов Р.В. Оптимизация пищеварительных, обменных процессов и функций печени у молочного скота. Дубровицы, 2015.
  • Bremer J. Carnitine -metabolism and functions. Physiol. Rev., 1983, 63(4): 1420-1470 ( )
  • DOI: 10.1152/physrev.1983.63.4.1420
  • Sato M., Kurosawa A., Watanabe N., Odo S., Ikeda S., Sukemori S. Seasonal variations in L-carnitine levels in colostrum and milk of Holstein cows. Journal of Agriculture Science, Tokyo University of Agriculture, 2009, 54(3): 214-217.
  • Wang F., Shi H., Wang S., Wang Y., Cao Z., Li S. Amino acid metabolism in dairy cows and their regulation in milk synthesis. Curr. Drug Metab., 2018, 19: 1 ( )
  • DOI: 10.2174/1389200219666180611084014
  • Пономаренко В.И., Фисинин В.И., Егоров И.А. Корма, биологически активные вещества, безопасность. Минск-М., 2014.
  • Chabaev M.G., Tjutjunik S.I., Nekrasov R.V., Anisova N.I., Pervov N.G., Romanov V.N., Gadjiev A.M. The effect of protected cho1ine on metabolism and productivity of highly productive cows. In: Book of Abstracts of the 65 Annual Meeting of the European Federation of Animal Science. Copenhagen, 2014: 118.
  • Chandler T.L., White H.M. Choline and methionine differentially alter methyl carbon metabolism in bovine neonatal hepatocytes. PLoS ONE, 2017, 12(2): e0171080 ( )
  • DOI: 10.1371/journal.pone.0171080
  • Pekala J., Patkowska-Sokoła B., Bodkowski R., Jamroz D., Nowakowski P., Lochyński S., Librowski T. L-carnitine -metabolic functions and meaning in humans life. Curr. Drug Metab., 2011, 12(7): 667-678.
  • Evans A.M., Fornasini G. Pharmacokinetics of L-carnitine. Clin. Pharmacokinet., 2003, 42(11): 941-967 ( )
  • DOI: 10.2165/00003088-200342110-00002
  • Seim H., Eichler K., Kleber H.P. L(-)-Carnitine and its precursor, γ-butyrobetaine. In: Nutraceuticals in health and disease prevention/K. Krämer, P.P. Hoppe, L. Packer (eds.). Marcel Dekker, Inc., NY, 2001: 217-256.
  • Sharma S., Black S.M. Carnitine homeostasis, mitochondrial function, and cardiovascular disease. Drug Discovery Today: Disease Mechanisms, 2009; 6(1-4): e31-e39 ( )
  • DOI: 10.1016/j.ddmec.2009.02.001
  • El-Hattab A.W., Scaglia F. Disorders of carnitine biosynthesis and transport. Mol. Genet. Metab., 2015, 116(3): 107-112 ( )
  • DOI: 10.1016/j.ymgme.2015.09.004
  • Efimova E.V., Gus'kova T.A., Kopelevich V.M., Gunar V.I. Acetyl-L-carnitine: biological properties and clinical application (a review). Pharm. Chem. J., 36(3): 111-115 ( )
  • DOI: 10.1023/A:1019689508012
  • Steiber A., Kerner J., Hoppel C.L. Carnitine: a nutritional, biosynthetic, and functional perspective. Mol. Aspects Med., 2004, 25(5-6): 455-473 ( )
  • DOI: 10.1016/j.mam.2004.06.006
  • Zaugg C.E., Spaniol M., Kaufmann P., Bellahcene M., Barbosa V., Tolnay M., Buser P.T., Krähenbühl S. Myocardial function and energy metabolism in carnitine-deficient rats. CMLS, Cell. Mol. Life Sci., 2003, 60(4): 767-775 ( )
  • DOI: 10.1007/s00018-003-3011-1
  • Matera M., Bellinghieri G., Costantino G., Santoro D., Calvani M., Savica V. History of L-carnitine: implications for renal disease. J. Renal. Nutr., 2003, 13(1): 2-14 ( )
  • DOI: 10.1053/jren.2003.50010
  • Bouitbir J., Haegler P., Singh F. Joerin L., Felser A., Duthaler U., Krähenbühl S. Impaired exercise performance and skeletal muscle mitochondrial function in rats with secondary carnitine deficiency. Front. Physiol., 2016, 7: 345 ( )
  • DOI: 10.3389/fphys.2016.00345
  • Owen K.Q., Jit H., Maxwell C.V., Nelssen J.L., Goodband R.D., Tokach M.D., Tremblay G.C., Koo S.I. Dietary L-carnitine suppresses mitochondrial branched chain keto acid dehydrogenase activity and enhances protein accretion and carcass characteristics of swine. J. Anim. Sci., 2001, 79(12): 3104-3112 ( )
  • DOI: 10.2527/2001.79123104x
  • Crociati M., Sylla L., Floridi C., Comin A., Fruganti G., Monaci M., Stradaioli G. Influence of lipoproteins at dry-off on metabolism of dairy cows during transition period and on postpartum reproductive outcomes. Theriogenology, 2017, 94: 31-36 ( )
  • DOI: 10.1016/j.theriogenology.2017.02.007
  • Noland R.C., Koves T.R., Seiler S.E., Lum H., Lust R.M., Ilkayeva O., Stevens R.D., Hegardt F.G., Muoio D.M. Carnitine insufficiency caused by aging and overnutrition compromises mitochondrial performance and metabolic control. J. Biol. Chem., 2009, 284(34): 22840-22852 ( )
  • DOI: 10.1074/jbc.M109.032888
  • Spaniol M., Kaufmann P., Beier K., Wüthrich J., Török M., Scharnagl H., März W., Krähenbühl S. Mechanisms of liver steatosis in rats with systemic carnitine deficiency due to treatment with trimethylhydraziniumpropionate. J. Lipid. Res., 2003, 44: 144-153 ( )
  • DOI: 10.1194/jlr.M200200-JLR200
  • LaCount D.W., Drackley J.K., Weigel D.J. Responses of dairy cows during early lactation to ruminal or abomasal administration of L-carnitine. J. Dairy Sci., 1995, 78(8): 1824-1836 ( )
  • DOI: 10.3168/jds.S0022-0302(95)76807-2
  • Bloomer R.J., Smith W.A. Oxidative stress in response to aerobic and anaerobic power testing: influence of exercise training and carnitine supplementation. Res. Sports Med., 2009, 17(1): 1-16 ( )
  • DOI: 10.1080/15438620802678289
  • Pignatelli P., Lenti L., Sanguigni V., Frati G., Simeoni I., Gazzaniga P.P., Pulcinelli F.M., Violi F. Carnitine inhibits arachidonic acid turnover, platelet function, and oxidative stress. Am. J. Physiol.-Heart C, 2003, 284(1): 41-48 ( )
  • DOI: 10.1152/ajpheart.00249.2002
  • Племяшов К.В., Анипченко П.С. Опыт применения раствора L-карнитина с целью коррекции качества спермопродукции. Вопросы нормативно-правового регулирования в ветеринарии, 2017, 2: 102-104.
  • Некрасов Р.В., Головин А.В., Аникин А.С., Первов Н.Г. Нормирование и организация кормления высокопродуктивных коров. Молочная промышленность, 2014, 5: 16-18.
  • Рядчиков В.Г., Подворок Н.И., Потехин С.А. Питание высокопродуктивных коров. Краснодар, 2003.
  • Abbasi I.H.R., Abbasi F., Soomro R.N., Abd El-Hack M.E., Abdel-Latif M.A., Li W., Hao R., Sun F., Bodinga B.M., Hayat K., Yao J., Cao Y. Considering choline as methionine precursor, lipoproteins transporter, hepatic promoter and antioxidant agent in dairy cows. AMB Express, 2017, 7(1): 214 ( )
  • DOI: 10.1186/s13568-017-0513-z
  • Ringseis R., Keller J., Eder K. Role of carnitine in the regulation of glucose homeostasis and insulin sensitivity: evidence from in vivo and in vitro studies with carnitine supplementation and carnitine deficiency. Eur. J. Nutr., 2012, 51(1): 1-18 ( )
  • DOI: 10.1007/s00394-011-0284-2
  • Головин А.В., Аникин А.С., Первов Н.Г., Некрасов Р.В., Стрекозов Н.И., Дуборезов В.М., Чабаев М.Г., Фомичев Ю.П., Гусев И.В. Рекомендации по детализированному кормлению молочного скота. М., 2016.
  • Томмэ М.Ф. Методика определения переваримости кормов и рационов. М., 1969: 5-23.
  • Мутовин В.И. Борьба с маститами коров. М., 1974.
  • Изучение пищеварения у жвачных/Под ред. Н.В. Курилова. Боровск, 1987.
  • Лакин Г.Ф. Биометрия. М., 1990.
  • Богомолова Р.А. Биологическое действие карнитина на организм сельскохозяйственных животных и птицы. Автореф. канд. дис. Йошкар-Ола, 2006.
  • Иванова Г.В., Романов В.Н., Боголюбова Н.В. Влияние добавок с защищенной формой L-карнитина на процессы пищеварения и молочную продуктивность коров. Главный зоотехник, 2011, 8: 16-20.
  • Романов В.Н., Боголюбова Н.В., Девяткин В.А., Гришин В.Н., Ильина Л.А. Особенности пищеварительных и обменных процессов у молодняка крупного рогатого скота при включении в рационы «защищенной» формы карнитина. Вестник Российского университета дружбы народов. Серия: агрономия и животноводство, 2015, 1: 35-42.
  • Фомичев Ю.П., Довыденков Г.В. Комплексное применение холинхлорида, L-карнитина и Экостимула-2 в профилактике кетоза у высокопродуктивных молочных коров. Известия Оренбургского государственного аграрного университета, 2010, 4(28): 244-248.
Еще
Статья научная