Обусловленность продуктивных качеств крупного рогатого скота Республики Татарстан полиморфизмом гена остеопонтина
Автор: Муханина Е.Н., Сафина Н.Ю., Фаттахова З.Ф., Гайнутдинова Э.Р., Шакиров Ш.К., Равилов Р.Х.
Статья в выпуске: 4 т.260, 2024 года.
Бесплатный доступ
Цель исследования - изучение полиморфизм гена OPN (с.8514 С-T), в популяции коров голштинской породы отечественной селекции Республики Татарстан и его влияния на экономически значимые признаки. Наиболее продолжительный сухостойный период и наивысший выход телят на 100 коров отмечены у особей, несущих генотип ТТ гена OPN. Наиболее ранний возраст первого плодотворного осеменения, наибольшая живая масса, удлиненные сервис- и межотельный периоды, замечены у коров с генотипом CC гена OPN. У животных этого генотипа выявлен наивысший процент яловости - 8,9 %, приводящий в дальнейшей перспективе к высоким убыткам из-за потерь молока.
Крупный рогатый скот, пцр-пдрф, полиморфизм, остеопонтин, ген opn, секретируемый фосфопротеин, spp1, воспроизводство
Короткий адрес: https://sciup.org/142243215
IDR: 142243215 | УДК: 636.034:636.082 | DOI: 10.31588/2413_4201_1883_4_260_148
Conditionality of productive qualities of cattle of the Republic of Tatarstan by osteopontin gene polymorphism
The aim of the study was to study the polymorphism of the OPN gene (p.8514 C-T) in the population of Holstein cows of domestic breeding in the Republic of Tatarstan and its effect on economically significant traits. The longest dry period and the highest yield of calves per 100 cows were observed in individuals carrying the TT genotype of the OPN gene. The earliest age of the first fruitful insemination, the highest live weight, elongated service and interbody periods were observed in cows with the CC genotype of the OPN gene. In animals of this genotype, the highest percentage of milk yield was revealed - 8.9%, leading in the long term to high losses due to milk losses.
Текст научной статьи Обусловленность продуктивных качеств крупного рогатого скота Республики Татарстан полиморфизмом гена остеопонтина
Развитие плода играет важную роль в постнатальной физиологии млекопитающих, что продемонстрировано на людях, лабораторных животных и домашнем скоте [5].
Имплантация эмбрионов у млекопитающих – это высоко скоординированный процесс, который начинается с наложения, прикрепления и адгезии эпителия просвета матки и трофэктодермы. Ремоделирование молекул гликопротеиновой адгезии апикальных поверхностей этих клеток предшествует имплантации. У жвачных животных на имплантацию оказывают влияние два вида секреции: выделяемый железами эмбриона секрет, который сигнализирует о своем присутствии через интерферон-τ (IFNT), а также секрет желез эндометрия, который способствует выработке гистотропина для питания зиготы.
Просвет матки представляет собой простой поляризованный клеточный слой, который опосредует взаимодействия клетка-клетка и клетка-внеклеточный матрикс. Он обычно неадгезивен; однако этот признак теряется во время развития восприимчивости, когда апикальная адгезия между ним и трофэктодермой определяет начало имплантации [7].
Правильная имплантация эмбриона имеет решающее значение для прикрепления и своевременного отделения плаценты в конце беременности. Дальнейшее развитие и дифференцировка тканей плаценты зависит от последовательного синтеза структурных или биологически активных белков и реагирует на сосудистую сеть.
Общей чертой плацент человека и крупного рогатого скота является наличие и активность металлопротеиназ, которые участвуют в имплантации. Исследования эндометрия человека, проведенные L. Kao и соавт. [9] подтвердили, что экспрессия остеопонтина активируется во время фазы готовности к имплантации [6].
Остеопонтин (OPN) – это фосфорилированный гликопротеин, который принимает участие в различных процессах организма, например, в адгезии клеток, хемотаксисе, передаче клеточных сигналов и регуляции роста, и развития плода, а также в инициации и поддержании стельности [10], известный, как секретируемый фосфопротеин (SPP1) или белок активации ранних Т-лимфоцитов (Eta-1) [11].
В женских репродуктивных тканях присутствие этого многофункционального белка установлено в яичниках, эндометрии, яйцеводах и раковых клетках яичников. В яичниках крупного рогатого скота мРНК OPN присутствовала в гранулезной оболочке, теке и лютеиновых клетках; однако точная роль OPN и его связь с иммунными клетками в пределах желтого тела остаются неизвестными. Существует предположение, что остеопонтин, продуцируемый лютеиновыми клетками, изменяет реакцию лимфоцитов в развивающемся, полностью функционирующем и регрессирующем желтом теле [13].
Эпителиальная экспрессия гена OPN , по мнению ученых, специфична для беременности, поскольку его мРНК практически отсутствует в матке небеременных особей [8] Ген OPN картирован на хромосоме 6, он состоит из 7 экзонов, занимающих около 7 кб геномной ДНК (GenBank: NW_255516), и кодирует белок длиной 278 кДа [12].
Зарубежными авторами были получены доказательства изменения роста у мышей, в зависимости от полиморфизма гена OPN, при исследовании размеров эмбрионов внутриутробно на трех стадиях беременности с помощью магнитнорезонансной микроскопии. У мышей с гомозиготным генотипом эмбрионы были меньше на всех этапах проводимого контроля, при этом размер помета не отличался от контрольного.
Также полногеномное ассоциативное исследование показало, что ген OPN является геном-кандидатом репродуктивных качеств и ассоциирован с мертворождением и плечевой дистоцией у крупного рогатого скота [4].
Таким образом этот ген имеет большой потенциал для изучения и использования в маркер-ассоциированной селекции и, следовательно, для улучшения генетического прогресса в скотоводстве.
Целью исследования послужило изучение полиморфизма гена OPN (с.8514 С→T) в интроне 4 и его влияния на продуктивные качества крупного рогатого скота голштинской породы отечественной селекции в Республике Татарстан.
Материал и методы исследований. Для проведения исследования было отобрано 258
полновозрастных коров голштинской породы, содержащихся в СХПК «Племенной завод им. Ленина» Атнинского района Республики Татарстан.
Экстракцию ДНК выполняли набором «АплиПрайм» ДНК-сорб-В (Некст БИО, Россия) в соответствии с инструкцией, прилагаемой производителем.
Полиморфные варианты гена OPN (с.8514 С→T) выявляли по методу ПЦР-ПДРФ с использованием нижеприведенных олигонуклеотидных праймеров (Евроген, Россия):
F: 5’-GCAAATCAGAAGTGTGATAGAC -3 ’;
R: 5’-
CCAAGCCAAACGTATGAGTT -3 ’ [12].
Амплифицикацию реакционной смеси проводили на термоциклере «Thermal Cycler 100» (BIO RAD, США), с подобранными температурно-временными режимами: денатурация в течение 5 мин., при температуре 93 °С; отжиг праймеров, состоящий из 33 циклов: 94 °С – 30 сек., 61 °С – 30 сек., 72 °С – 30 сек.; завершающая элонгация 72 °С – 5 мин [1].
Полиморфизм длин фрагментов определяли с применением эндонуклеазы рестрикции Bse1 I (СибЭнзим, Россия) при температуре 65 °С в течение 2 ч. Электрофоретическое разделение осуществлялось в 2,6 % агарозном геле, в составе которого имеется бромид этидиума и 1 % ТВЕ-буфер, в течение 25 минут. Визуализацию и документирование выявленных фрагментов производили на оборудовании «GelDoc Go» с программным обеспечением «Image Lab Touch» V. 3.0 (BIO RAD, США). Частоту встречаемости аллелей и генотипов, и генетическое равновесие в рассматриваемой популяции согласно закону Харди-Вайнберга, рассчитывали согласно методическим рекомендациям по биометрии в селекции и генетике [3].
Информация об экономически значимых признаках (живая масса во время контрольных взвешиваний) и репродуктивных качествах были получены из информационно-аналитической системы «СЕЛЭКС. Молочный скот w9.3.0.0.» (АРМ Плинор, Россия). определен по формуле:
Коэффициент яловости коров
K = l – Bт/(365*100/(285+tсп)), где Вт – фактический выход телят от 100 коров, гол.;
365 – число дней в календарном году;
285 – средняя продолжительность стельности, дн.;
t сп – продолжительность сервис-периода, дн.
По формуле, разработанной А.А. Павловым, был произведен расчет потерь молока, которое несет хозяйство, вследствие яловости поголовья коров:
Qпм=У*0,5*Кя где Qпм – потери молока от яловости, кг;
-
У – удой молока в среднем по стаду за отчетный год, ц;
-
0,5 – постоянный коэффициент, характеризующий количественное соотношение между показателями выхода молока от неяловых и яловых коров;
К я – коэффициент яловости коров.
Результат исследований. После проведения генотипирования отобранного поголовья крупного рогатого скота и обработки полученных результатов были выявлены два аллея гена OPN (с.8514 С→T) – С , T и три генотипа – СС , CT и TT. Частота встречаемости аллеля С – 0,436, аллеля Т – 0,564, и, в свою очередь, частота распространенности в татарстанской популяции коров голштинской породы генотипа СС гена OPN – 14,5 % (37 гол.), СТ – 58,2 % (149 гол.) и генотипа ТТ – 27,3 % (70 гол.).
Значение критерия χ² = 8,65 немного превышает χ² крит = 5,99, это говорит о том, что в анализируемом поголовье происходит сдвиг в сторону наращивания гомозиготности и, значит, генетическое равновесие в популяции нарушается [1].
Ранее мы проанализировали молочную продуктивность изучаемой популяции в разрезе гена остеопонтина и получили следующие результаты: статистически значимая (Р ˂ 0,01…0,001) разница в уровнях удоя за полную стандартную лактацию (305 дн.) отмечается между группами животных, имеющих генотипы CC и TT гена OPN на 260,9 кг (3,7 %; Р ˂ 0,05), большое содержание массовой доли жира в молоке опытных коров различных генотипов установлено между группами животных CT и TT на 0,15 абс. % по гену OPN. Особи с генотипом CC гена OPN характеризуются высокой устойчивостью лактации [2]. Взаимосвязь экономически значимых признаков с полиморфизмом гена OPN представлена в таблицах 1 и 2.
Таблица 1 – Воспроизводительная способность коров голштинской породы в зависимости от полиморфизма гена OPN
|
Показатель |
Генотип |
||
|
СС |
CT |
TT |
|
|
Возраст первого плодотворного осеменения, мес. |
17,9 ± 0,34 |
18,4 ± 0,24 |
18,8 ± 0,30* |
|
Живая масса при первом отеле, кг |
534,5 ± 6,6* |
518,9 ± 4,4 |
515,6 ± 6,4 |
|
Кратность осеменения |
1,16 ± 0,06 |
1,09 ± 0,02 |
1,11 ± 0,04 |
|
Сервис-период, дн. |
144,0 ± 16,7* |
122,3 ± 5,7 |
116,0 ± 8,1 |
|
Межотельный период, дн. |
393,9 ± 9,8 |
384,9 ± 5,2 |
389,5 ± 6,6 |
|
Сухостойный период, дн. |
57,7 ± 1,9 |
53,9 ± 1,7 |
60,1 ± 0,9** |
* - Р<0,05, ** - Р<0,01
Ранний возраст первого плодотворного осеменения с достоверным отличием (P<0,05) установлен у особей с генотипом CC гена OPN, преобладая над животными с генотипом TT на 0,9 мес. Достоверно большая живая масса при первом отеле отмечена у коров с генотипом СС , как в отношении особей генотипа TT (3,5 %; P<0,05), так и СТ (3,5 %; P<0,05). Наименьшая кратность осеменения у коров гетерозиготного генотипа по гену OPN.
Статистически достоверное продление сервис-периода (P<0,05) отмечено у животных СС-типа гена OPN, при противопоставлении их с носительницами генотипа TT - разница составила 28 дней или 19,4 %. Межотельный период наиболее пролонгирован у коров-обладательниц генотипа СС. По сухостойному периоду статистически значимое удлинение (на 5,6 дней или 10,3 %; P<0,01), установлено у особей, гомозиготных по аллелю Т гена OPN, чем у животных с гетерозиготным генотипом.
Таблица 2 - Репродуктивные показатели коров голштинской породы в зависимости от полиморфизма гена OPN
|
Показатель |
Генотип |
||
|
СС |
CT |
TT |
|
|
Индекс плодовитости Дохи |
46,8 ± 0,7 |
47,0 ± 0,4 |
46,2 ± 0,5 |
|
Выход телят на 100 коров, гол. |
77,5 ± 3,8 |
85,2 ± 1,4 |
87,4 ± 2,0* |
|
Коэффициент воспроизводительной способности |
0,93 ± 0,02 |
0,95 ± 0,01 |
0,94 ± 0,01 |
|
Яловость, % |
8,9 ± 0,06*** |
4,9 ± 0,13 |
4,0 ± 0,09 |
|
Потери молока, кг |
315,9 ± 7,8*** |
168,9 ± 5,4 |
136,8 ± 4,9 |
|
Потери молока, руб. |
11209,3 ± 158,6*** |
6036,5 ± 118,7 |
4889,2 ± 122,6 |
* - Р<0,05, *** - Р<0,001
Судя по уровню индекса плодовитости коров, введенному Дохи, все животные изучаемой популяции имеют возраст первого отела и продолжительность межотельного периода в пределах физиологических норм, о чем говорит средний уровень этого показателя по всем изучаемым генотипам. Это же можно сказать о коэффициенте воспроизводительной способности. Статистически значимая (P<0,05) разница выхода телят на 100 коров наблюдается между группами особей с генотипами CC и TT гена OPN - 9,9 гол. (11,3 %).
Высокий процент яловости - 8,9 % (P<0,001), имеют первотелки с генотипом CC, низким процентом напротив выделяются животные, носители генотипа TT гена OPN , при этом разница между значениями составила 55 %.
Наибольшее количество недополученного надоя (P<0,001) было у коров с генотипами CC и СТ - 179,1 кг (56,7 %), и СТ - ТТ - 32,1 кг или 19 %.
В пересчете на деньги потери молока, из-за высокого уровня яловости коров с генотипом СС гена OPN, достигали 11,2 тыс. руб./гол (при цене реализации молока СХПК «ПЗ им. Ленина» на 1 декабря 2023 г. 35,74 руб. за 1 кг).
Заключение. При изучении популяции коров голштинской породы в условиях Республики Татарстан было установлено, что наиболее распространены генотип СТ и аллель Т гена OPN .
Удлиненный сухостойный период и больший выход телят на 100 коров характерны для животных, гомозиготных по аллелю Т гена OPN .
Достоверно установлено (P<0,05), что ранний возраст первого плодотворного осеменения, наибольшая живая масса, пролонгированные сервис- и межотельный периоды, отмечаются у коров с генотипом СС гена OPN. В этой же группы животных определен высокий процент яловости - 8,9 %, который влечет за собой соответствующую серьезную потерю молока, которая в дальнейшем ведет к значительным денежным потерям.
Рекомендуется для дальнейшей селекции использовать животных в генетическом профиле гена OPN , имеющих аллель T так, как они имеют хорошие показатели по воспроизводительной способности. Выявленный экономический эффект от внедрения генотипирования в селекционный процесс и использование поголовья с желательным генетическим профилем позволит повысить прибыль от продажи молока.
Список литературы Обусловленность продуктивных качеств крупного рогатого скота Республики Татарстан полиморфизмом гена остеопонтина
- Гайнутдинова, Э. Р. Идентификация полиморфизма гена остеопонтин (OPN) в популяции голштинского крупного рогатого скота Республики Татарстан / Э. Р. Гайнутдинова, Н. Ю. Сафина, З. Ф. Фаттахова [и др.] // Journal of Agriculture and Environment. – 2022. – № 7(27). – DOI: 10.23649/jae.2022.27.7.008.
- Гайнутдинова, Э. Р. Молочная продуктивность голштинского скота с различными генотипами гена Остеопонтин (OPN) / Э. Р. Гайнутдинова, Н. Ю. Сафина, З. Ф. Фаттахова [и др.] // Международный вестник ветеринарии. – 2023. – № 3. – С. 246-250. – DOI: 10.52419/issn2072-2419.2023.3.246.
- Меркурьева, Е. К. Генетика с основами биометрии / Е. К. Меркурьева, Г. Н. Шангин-Березовский. – М.: Колос, 1983. – 400 с.
- Chakraborty, D. Role of secreted phosphoprotein 1 (SPP1) gene in bovines– a review / D. Chakraborty, A. Sharma shwani, M. S. Singh Avtar Tantia [et al.] // Agricultural Reviews. – V. 31(3). – P. 184-193.
- Eberlein, A. Dissection of genetic factors modulating fetal growth in cattle indicates a substantial role of the nonsmc condensin I complex, subunit G (NCAPG) gene / A. Eberlein, A. Takasuga, K. Setoguchi // Genetics. – 2009. – V. 183(3). – P. 951-964. – DOI: 10.1534/genetics.109.106476.
- Franczyk, M. Extracellular matrix proteins in healthy and retained placentas, comparing hemochorial and synepitheliochorial placentas / M. Franczyk, M. Lopucki, N. Stachowicz [et al.] // Placenta. – 2017. – V. 50. – P. 19-24. DOI: 10.1016/j.placenta.2016.12.014.
- Johnson, G. A. Muc-1, integrin, and osteopontin expression during the implantation cascade in sheep / G. A. Johnson, F. W. Bazer, L. A. Jaeger [et al.] // Biology of Reproduction. – 2001. – V. 65. – P. 820-828. – DOI: 10.1095/biolreprod65.3.820.
- Johnson, G. A. Osteopontin: a leading candidate adhesion molecule for implantation in pigs and sheep / G. A. Johnson, R. C. Burghardt, F. W. Bazer // J. Anim. Sci. Biotechnol. – 2014. – V. 5(1). – P. 56. DOI: 10.1186/2049-1891-5-56.
- Kao, L. C. Global gene profiling in human endometrium during the window of implantation / L. C. Kao, S. Tulac, S. Lobo [et al.] / Endocrinology. – 2002. – V. 143(6). – P. 2119-2138. – DOI: 10.1210/endo.143.6.8885
- Karthikeyan, A. Characterization and in-silico analysis of Osteopontin gene in vechur cattle of Kerala / A. Karthikeyan., G. Radhika, T. V. Aravindakshan // J. Entomol. Zool. Stud. – 2020. – V. 8 (2). – P. 262-266.
- Kowalewska-Łuczak, I. Polymorphism of the FAM13A, ABCG2, OPN, LAP3, HCAP-G, PPARGC1A genes and somatic cell count of Jersey cowspreliminary study / I. Kowalewska-Łuczak, H. Kulig // Res. Vet. Sci. – 2013. – V. 94 (2). – P. 252-255. – DOI: 10.1016/j.rvsc.2012.08.006.
- Leonard, S. Effects of the Osteopontin Gene Variants on Milk Production Traits in Dairy Cattle / S. Leonard, H. Khatib, V. Schutzkus [et al.] // J. Dairy Sci. – 2005. – Vol. 88. – P. 4083-4086.
- Poole, D. H. Expression and regulation of secreted phosphoprotein 1 in the bovine corpus luteum and effects on T lymphocyte chemotaxis / D. H. Poole, K. Ndiaye, J. L. Pate // Reproduction. – 2013. – V. 146(6). – P. 527-537. DOI: 10.1530/REP-13-0190.