Определение протективного эффекта профилактического комплекса на ультраструктуру почек крыс и кроликов при сочетанном микотоксикозе: морфометрический аспект
Автор: Кашеваров Г.С., Тарасова Е.Ю., Саитов В.Р., Юсупова К.В., Матросова Л.Е.
Журнал: Вестник Красноярского государственного аграрного университета @vestnik-kgau
Рубрика: Зоотехния и ветеринария
Статья в выпуске: 4, 2024 года.
Бесплатный доступ
В статье отражены результаты морфометрического анализа действия разработанного профилактического комплекса в отношении сохранения ультраструктуры подоцитов почек крыс и кроликов при сочетанном микотоксикозе. Цель исследования - определение протективного эффекта разработанного профилактического комплекса, в состав которого входит природный минерал галлуазиат (ранее не применявшийся в РФ при микотоксикозах), на ультраструктуру подоцитов крыс и кроликов в условиях подострой интоксикации микотоксинами (Т-2, афлатоксином B1, зеараленоном). Эксперимент проходил в течение 21 суток на 40 белых нелинейных крысах живой массой 150-170 г и 40 кроликах породы шиншилла живой массой 1,7-1,9 кг. Из животных каждого вида по принципу аналогов сформировали 4 группы по 10 голов в каждой (биологический контроль, токсический контроль, основной рацион с профилактическим комплексом, токсический рацион с профилактическим комплексом) с учетом возраста, пола и массы тела. Пробы ткани почек исследовали на просвечивающем электронном микроскопе по методике ультратонких срезов. В результате статистического анализа полученных в проведенном эксперименте морфометрических данных были выявлены отличия ширины цитоподий между профилактируемой группой и группой биологического контроля - с одной стороны, и группой токсического контроля - с другой. Вследствие этого было сделано заключение, что разработанный профилактический комплекс обладает эффективностью при пероральном применении в условиях сочетанного Т-2, афла-, зеараленонмикотоксикоза лабораторных животных (крыс и кроликов), не оказывая при этом негативного влияния на ультраструктуру почек.
Микотоксины, подоциты, ультраструктура, морфометрия, профилактический комплекс
Короткий адрес: https://sciup.org/140306677
IDR: 140306677 | DOI: 10.36718/1819-4036-2024-4-88-95
Текст научной статьи Определение протективного эффекта профилактического комплекса на ультраструктуру почек крыс и кроликов при сочетанном микотоксикозе: морфометрический аспект
Введение . Метаболизм различных веществ, включая токсины, не может происходить без участия почек, роль которых в этом процессе в ряде случаев даже выше роли печени, что делает ее мишенью токсического воздействия [1]. Эта функция (как и ряд других, связанных с поддержанием базальной мембраны почечного клубочка, формированием щелевой мембраны и других) осуществляется в первую очередь благодаря подоцитам – специализированным клеткам клубочкового фильтрационного барьера [2–4].
Повреждение подоцитов может стать причиной развития протеинурии, отслоения их от базальной мембраны клубочка, нарушения целостности базальной мембраны и, возможно, почечной недостаточности [2, 4–8]. Подоцит формирует ветвящиеся структуры, наименьшие конечные отростки которых, цитоподии, образуют щелевые диафрагмы и являются главным функциональным элементом фильтрационного барьера [7]. Щелевые диафрагмы рассматриваются большинством исследователей как «молекулярное сито» – конечная преграда для потери белка с мочой [3, 4, 7–9]; однако есть указания на то, что их функция является чисто структурной [9].
Среди современных средств визуализации многообразных патологических изменений подоцитов классическая просвечивающая электронная микроскопия не теряет своей актуальности [9, 10].
Степень повреждения подоцитов является основным маркером при оценке функционального состояния почек [3, 5, 6]. При микроскопировании ультраструктуры подоцитов внимание обращают на такие патологические признаки, как расширение, втягивание или стирание цитопо-дий; отслоение от базальной мембраны; утол- щение самой базальной мембраны, в том числе неравномерное; микроцистозные и псевдокис-тозные изменения, вакуолизация, обогащение цитоплазмы лизосомами; нарушение щелевых диафрагм [2, 8, 10].
Микотоксины – это одна из наиболее значительных угроз в сфере производства и реализации сельскохозяйственной продукции, оказывающей влияние на безопасность кормов, здоровье и продуктивность животных, а также на здоровье человека путем миграции по пищевым цепям [11–15]. В целях предотвращения пагубного воздействия микотоксинов разработан ряд стратегий борьбы, в основном профилактической направленности. Среди них особое место занимают исследования по созданию эффективных препаратов комплексного действия, которые способны подавлять или уменьшать абсорбцию, стимулировать выведение микотоксинов или изменять механизм их действия [16]. В целом механизмы молекулярных эффектов, особенно при смешанных микотоксикозах, изучены недостаточно. В литературе отсутствуют данные о влиянии зеараленона, афлатоксина В 1 и Т-2 токсина при одновременном поступлении в высоких дозах на ультраструктуру почек.
Цель исследования – определение протек-тивного эффекта разработанного в ФГБНУ «ФЦТРБ-ВНИВИ» профилактического комплекса, в состав которого входит природный минерал галлуазиат (ранее не применявшийся в РФ при микотоксикозах), на ультраструктуру подоцитов крыс и кроликов в условиях подострой интоксикации микотоксинами (Т-2, афлатоксином В 1 , зеараленоном).
Ранее нами была изучена ультраструктура гепатоцитов с морфометрическими характеристиками митохондрий при смешанном микотоксикозе белых крыс на фоне применения разработанного профилактического комплекса, подтверждена высокая адсорбционная активность галлуазита в отношении микотоксинов и показан протективный эффект на целостность ДНК [17–21].
Объекты, материал и методы. В соответствии с целью исследования из питомника были отобраны и помещены в условия двухнедельного карантина 40 белых нелинейных крыс живой массой 150–170 г и 40 кроликов породы шиншилла живой массой 1,7–1,9 кг. Животных содержали в одинаковых условиях кормления и ухода со свободным доступом к корму и воде. По истечении срока карантинирования из животных каждого вида по принципу аналогов сформировали 4 группы (по 10 голов в каждой) с учетом возраста, пола и массы тела. Схема опыта была следующей:
– 1-я группа – биологический контроль (далее БК);
– 2-я группа – профилактический комплекс на основе галлуазита, метионина, β-глюканов, шрота расторопши из расчета 0,25 % к основному рациону (далее БК+ПК);
– 3-я группа – токсический контроль (далее ТК). Микотоксины животным задавали с кормом (белым крысам: афлатоксин В 1 – 2,5 мг/кг, Т-2 токсин – 5 мг/кг и зеараленон – 2,0 мг/кг; кроликам – 0,3, 1,2, 1,7 мг/кг корма соответственно) путем тщательного перемешивания;
– 4-я группа – профилактический комплекс на основе галлуазита, метионина, β-глюканов, шрота расторопши из расчета 0,25 % к токсическому рациону (далее ТК+ПК).
Эксперимент проходил в течение 21 суток. После его завершения, согласно правилам гуманного отношения к лабораторным животным, особей всех групп выводили из опыта [22]. В последующем производили отбор проб корковой зоны почек (размером 1 мм3) для ультра-структурных исследований и помещали их в 1 % раствор глутарового альдегида. Далее, после промывки 0,1 М фосфатным буфером, кусочки органов переносили на 2 ч в 1 % раствор тетраоксида осмия для завершения фиксации. Затем проводили дегидратацию и заключение образцов в смесь эпоновых смол с последующей полимеризацией и подготовкой для исследования по методике ультратонких срезов [23, 24]. Полученные на ультрамикротоме срезы материала монтировали на медные сетки, контрастировали с помощью растворов уранилацетата и цитрата свинца. Просмотр и съемку образцов каждой группы осуществляли на электронном микроскопе Jeol JEM-1011 с последующей морфометрией в программе Fiji [25]. В ходе морфометрического анализа просматривали разрез дистального участка почечных клубочков и измеряли ширину цитоподий по линии щелевых диафрагм (рис. 1). Результаты подвергали статистической обработке в программе STATISTICA 6.0 с использованием непараметрического теста Манна – Уитни. Тестовые данные интерпретировали исходя из критического уровня значимости α = 0,05, скорректированного по методу Бонферрони до α = 0,01 с учетом количества тестов (n = 5, табл. 1).
Таблица 1
Дизайн и результаты статистической обработки экспериментальных данных
Вид животного |
Группа |
БК+ПК |
ТК |
ТК+ПК |
Кролики |
БК |
0,79 |
0,1·10-22 |
0,13 |
ТК |
0,2·10-20 |
n |
0,3·10-15 |
|
Крысы |
БК |
0,75 |
0,5·10-4 |
0,07 |
ТК |
0,3·10-7 |
n |
0,3·10-2 |
Список литературы Определение протективного эффекта профилактического комплекса на ультраструктуру почек крыс и кроликов при сочетанном микотоксикозе: морфометрический аспект
- Khan K.N.M., Hard G.C, Alden C.L. Kidney // Haschek and Rousseaux's handbook of toxicologic pathology. 2013. Third edition. P. 1667-1764.
- Tharaux PL, Huber T.B. How many ways can a podocyte die? // Seminars in nephrology. 2012. Vol. 32, № 4. P. 394-404.
- Rabelinka T.J., Heerspinkb H.J.L., de Zeeuw D. Chapter 9. The pathophysiology of proteinuria // Chronic renal disease. 2015. P. 92-105.
- Nagata M. Podocyte injury and its consequences // Kidney international. 2016. Vol. 89. P. 1221-1230.
- Moeller M.J., Holzman L.B. Imaging podocyte dynamics // Nephron experimental nephrology. 2006. Vol. 103. P. 69-74.
- Mathieson P.W. The podocyte as a target for therapies - new and old // Nature reviews. Nephrology. 2012. Vol. 8. P. 52-56.
- Garg P. A review of podocyte biology // American journal of nephrology. 2018. Vol. 47 (1). P. 3-13.
- Renal fibrosis: mechanisms and therapies / C.C. Lu [et al.] // Advances in experimental medicine and biology. 2019. Vol. 1165. P. 195-232.
- Grahhamer F. New structural insights into podocyte biology // Cell tissue research. 2017. Vol. 369. P. 5-10.
- Akilesh S. Glomerular disease // Patology of human disease. 2014. P. 2734-2752.
- Nutritional impact of mycotoxins in food animal production and strategies for mitigation / R. Xu [et al.] // Journal of animal science and biotechnology. 2022. Vol. 13 (1). № 69. P. 19.
- Аналитика данных распространения Т-2 токсина в Республике Татарстан / И.Н. Штыров [и др.] // Международный вестник ветеринарии. 2021. № 1. С. 167-172.
- Козина Е.А., Табаков Н.А. Использование адсорбентов в рационах мышей при скармливании зерна, содержащего микотоксины // Вестник КрасГАУ. 2011. № 7 (58). С. 123126.
- Савкова М.Г., Цыренов С.О., Минина Л.А. Цеолиты Шивыртуйского месторождения в предотвращении отрицательного воздействия микотоксинов в рационе кур-несушек // Вестник КрасГАУ. 2010. № 5 (44). С. 86-90.
- Экспериментальный сочетанный микоток-сикоз свиней на фоне инфекционной нагрузки / Э.И. Семенов [и др.] // Сельскохозяйственная биология. 2022. Т. 57, № 2. С. 371-383.
- Перфилова К.В., Мишина Н.Н., Семенов Э.И. Обоснование компонентного состава комплексного средства «Цеапитокс» в отношении Т-2 токсина в опытах in vitro // Ученые записки Казанской государственной академии ветеринарной медицины им. Н.Э. Баумана. 2021. Т. 247, № 3. С. 208-212.
- Изучение сорбционной активности потенциальных средств профилактики микоток-сикозов в отношении афлатоксинов / Е.Ю. Тарасова [и др.] // Ветеринарный врач. 2020. № 2. С. 51-58.
- Нанотрубки галлуазита - новое эффективное средство для борьбы с микотоксикоза-ми / Е.Ю. Тарасова [и др.] // Научная жизнь. 2020. Т. 15, № 4 (104). С. 561-571.
- Тарасова Е.Ю. Изучение сорбционной активности нанотрубок галлуазита по отношению к зеараленону и охратоксину А // Вестник Марийского государственного университета. Сер. «Сельскохозяйственные науки. Экономические науки». 2021. Т. 7, № 1 (25). С. 64-70.
- Оценка объективных морфологических признаков митохондрий гепатоцитов крыс при сочетанном микотоксикозе на фоне применения профилактических комплексов / Е.Ю. Тарасова [и др.] // Вестник КрасГАУ. 2022. № 12 (189). С. 98-105.
- Оценка протективного эффекта разработанных профилактических комплексов на целостность ДНК при экспериментальном сочетанном микотоксикозе / Е.Ю. Тарасова [и др.] // Ветеринарный врач. 2022. № 4. С. 70-76.
- Directive 2010/63/EU of the European Parliament and of the Council of 22 September 2010 on the protection of animals used for scientific purposes (Text with EEA relevance) // European Commission: Brussels, Belgium, 2010.
- Методические рекомендации по электронно-микроскопическим исследованиям биологических объектов / А.В. Иванов [и др.]. М.: Росинформагротех, 2011. 67 с.
- Трансмиссионная электронная микроскопия в биологии и медицине: монография / М.М. Сальникова [и др.]. Казань: КФУ, 2016. 125 с.
- Fiji: an open-source platform for biological-image analysis / J. Schindelin [et al.] // Nature methods. 2012. Vol. 9 (7). P. 676-682.