Показатели клеточного иммунитета у морских свинок при вакцинации и экспериментальной бруцелезной инфекции
Бесплатный доступ
Проведены исследования по определению функциональной активности полиморфно-ядерных лейкоцитов. Использовали тест восстановления нитросинего тетразолия (НСТ-тест). Иммунологическая перестройка организма морских свинок после вакцинации противобруцеллезными вакцинами сопровождается усилением функциональной активности лейкоцитов, которая четко выявляется в НСТ-тесте. Уровень активизации лейкоцитов коррелирует с устойчивостью морских свинок к бруцеллезу. При бруцеллезной инфекции в отличие от вакцинного процесса, наблюдается значительное угнетение функциональной активности лейкоцитов.
Бруцеллез, иммунитет, инфекция, лейкоциты, нст-тест, функция лейкоцитов
Короткий адрес: https://sciup.org/14288856
IDR: 14288856
Текст научной статьи Показатели клеточного иммунитета у морских свинок при вакцинации и экспериментальной бруцелезной инфекции
В защите организма от чужеродных антигенов участвуют неспецифические и специфические факторы [1,2]. Неспецифическая резистентность связана со специфической иммунной реактивностью и является основой выработки полноценного иммунного ответа, возникшего в процессе эволюции [3,4,5]. Однако отдельные патогенные микроорганизмы не поглащаются фагоцитами или, если поглащаются, не перевариваются внутри фагоцитирующих клеток и переходят в персистирующую форму. К числу таких микроорганизмов относится и возбудитель бруцеллеза. Поэтому изучение клеточных показателей иммуногенеза и инфекционного процесса при бруцеллезе может дать ценную информацию по механизмам защиты организма. Для оценки клеточных механизмов весьма информативной является реакция восстановления нитросинего тетразолия (НСТ-тест) полиморфно-ядерными лейкоцитами (ПМЯЛ) [6]. Она, отражая итоговую реакцию ферментных систем, ответственных за цитотоксический потенциал ПМЯЛ, позволяет оценивать их бактерицидную активность. В связи с этим НСТ-тест может быть использован для оценки иммунологической перестройки организма.
Целью исследований являлось изучение активности ПМЯЛ при вакцинации и инфицировании морских свинок бруцеллами.
Материалы и методы. Четырех групп морских свинок по 15 голов иммунизировали вакцинами из штаммов B.abortus УФ-1 (1 группа), 19 (2 группа), 82
(3 группа) и УФ-1 в сочетании с иммуномодулятором (4 группа). Через 7, 15, 30 и 60 дней после вакцинации у отдельных животных брали пробы крови для исследований. В пробах крови определяли функциональную активность лейкоцитов в НСТ-тесте. Активность лейкоцитов в НСТ-тесте оценивали в спонтанном и стимулизированном тестах. Для стимуляции лейкоцитов в качестве тест-культуры использовали суспензию вирулентного штамма B.abortus 54. НСТ-тест ставили по методике представленной в монографии А.С. Козлюк с соавторами [6] в нашей модификации [7].
Для определения устойчивости к бруцеллезу морских свинок заражали культурой вирулентного штамма B.abortus 54 в дозе 80 микробных клеток через 2 месяца после вакцинации. Убой морских свинок производили через 30 дней и подвергали бактериологическим исследованиям.
Результаты исследований.
Показатели функциональной активности лейкоцитов крови морских свинок представлены в таблице № 1. Ткак свидетельствуют полученные данные, после иммунизации происходила значительная активация лейкоцитов. У животных, вакцинированных штаммом УФ1, на 7-й день иммунизации наблюдалось повышение этого показателя. В стимулированном тесте (АВ) количество активных клеток составляло 30±1,1, что в 2,5 раза выше по отношению показателей контрольной (непривитые) группы (12±0,12). Показатель резерва (ПР) и коэффициент метаболической активации (КМА) равнялись 1,7±0,4 и 0,7
соответственно. Аналогичная тенденция и в других опытных группах животных. Однако этот процесс был несколько слабее, чем у животных привитых вакциной из штамма 19 (2 группа). Показатели резерва и коэффициент метаболической активации у животных 1 и 2 групп, на этот срок, повышались незначительно, тогда как у 3 и 4 групп они существенно возросли. В дальнейшем, на 15 и 30 дни исследований, функциональная активность нейтрофилов крови первых трех групп возрастала, о чем свидетельствует увеличение количества активированных клеток в спонтанном, особенно, в стимулированном тестах, а также ПР и КМА. Через 60 дней после вакцинации функциональная активность нейтрофилов крови у всех испытуемых морских свинок несколько снижалась, но оставалась на значительно более высоком уровне по сравнению с интактными животными. При сходстве тенденции активизации функции нейтрофилов у всех трех групп животных, реакция была интенсивнее у морских свинок, вакцинированных суспензией штамма бруцелл УФ-1. .
Таблица 1. Функциональная активность лейкоцитов крови морских свинок, иммунизированных противобруцеллезными вакцинами
Сроки исследо вания |
УФ-1 (1 гр.) |
19 (2 гр.) |
82 (3 гр.) |
УФ-1 (4 гр.) |
||||||||
СВ |
АВ |
ПР/ КМА |
СВ |
АВ |
ПР/ КМА |
СВ |
АВ |
ПР/ КМА |
СВ |
АВ |
ПР/ КМА |
|
Контроль |
8± 0,2 |
12± 0,1 |
1,5/0,5 |
9± 0,6 |
13± 0,6 |
1,4/0,4 |
8± 0,2 |
12± 0,2 |
1,5/0,5 |
9± 0,2 |
13± 0,3 |
1,4/ 0,4 |
7 день |
18± 0,3 |
30± 1,1 |
1,7/0,7 |
15± 0,1 |
22± 0,6 |
1,5/0,5 |
12± 0,3 |
25± 0,7 |
1,9/0,9 |
12± 0,6 |
24± 1,2 |
2,0/ 1,0 |
15 день |
24± 0,3 |
59± 1,2 |
2,4/1,4 |
18± 0,3 |
48± 1,7 |
2,7/1,7 |
17± 0,4 |
33± 1,1 |
2,0/1,2 |
12± 0,6 |
57± 1,2 |
4,8/ 3,8 |
30 день |
28± 0,3 |
72± 1,7 |
2,6/1,6 |
21± 0,2 |
55± 1,2 |
2,6/1,6 |
21± 0,2 |
47± 0,7 |
2,2/1,2 |
9± 0,8 |
67± 0,6 |
7,4/ 6,4 |
60 день |
19± 0,4 |
48± 1,0 |
2,6/1,5 |
19± 0,3 |
39± 1,0 |
2,1/1,1 |
9± 0,1 |
23± 0,6 |
1,7/1,6 |
11± 0,8 |
53± 0,8 |
4,8/ 3,8 |
СВ – формазан-положительные клетки в спонтанном тесте (%)
АВ - формазан-положительные клетки в стимулированном тесте (%)
ПР – показатель резерва = АВ:СВ
КМА – коэффициент метаболической активации = (АВ – СВ)/СВ
Несколько иная картина наблюдалась в IV группе животных (иммунизированных шт, УФ-1 в сочетании с иммуномодулятором). В частности, у этой группы морских свинок в течение вакцинного процесса показатели спонтанного теста (СВ) не претерпевали существенных изменений, т.е. были почти на исходном уровне, тогда как у других групп наблюдалось повышение активности лейкоцитов в СВ. На 7 день опыта количество формазан-положительных нейтрофилов, в стимулированном тесте у этой группы животных, повышалось в 2 раза, что на 25% ниже по сравнению с первой группой (шт УФ-1 в физиологическом растворе хлористого натрия). В последующие сроки исследований количество активированных клеток в стимулированном тесте у морских свинок I и IV групп почти выравнивались, но ПР и КМА у животных IV группы были значительно выше по сравнению с остальными опытными группами, что указывает на более выраженную активизацию метаболической и переваривающей функции нейтрофилов. У всех опытных групп морских свинок функциональная активность лейкоцитов крови повышалась, достигая максимума на 30-й день после вакцинации. К 60-му дню происходило некоторое снижение изучаемых показателей во всех опытных группах. Тем не менее, количество формазан-положительных лейкоцитов крови у животных опытных групп было в 2,5-4 раза выше по сравнению с контрольной группой. К этому сроку исследований КМА лейкоцитов крови у вакцинированных животных 1-3 групп повышали контрольный уровень в 2,8-3,2 раза, а у 4 группы - почти в 10 раз. Сходная тенденция сохранялась и по показателю резерва. Результаты бактериологических исследований приведенны в таблице № 2.
Полученные данные показывают, что у морских свинок, иммунизированных суспензиями бруцелл штаммов УФ-1, 19, 82 в физиологическом растворе и УФ-1, разведенной в разбавителе с иммуномодулятором, количество активированных лейкоцитов в стимулированном НСТ-тесте перед заражением варьировало в переделах 19-
53%, а контрольных - 10-13%.
Вакцинированные морские свинки с показателями активированных лейкоцитов в реакции НСТ-33% и более оказались устойчивыми к контрольному заражению вирулентной культурой бруцелл 54. Вакцинированные шт. 82 две морские свинки, имевшие активированные нейтрофилы значительно ниже (17-19%), заразились. Однако их инфицирование имело региональный характер (и.и. - 7,0), в отличие от интактных (непривитые), у которых наблюдался генерализированный бруцеллезный процесс (И.И. - 94%).
После заражения невакцинированных морских свинок вирулентным штаммом происходило угнетение активности нейтрофилов, о чем свидетельствует снижение количества активированных клеток в 2-4 раза по сравнению с исходным уровнем.
Таблица 2 - Результаты заражения морских свинок и показатели НСТ-теста
Группа животных |
Количество животных |
Иммунных (%) |
И.И. |
Показатели НСТ-теста в стимулир. варианте |
|
В опыте |
Из них заразились |
||||
1.Заражен. вакцин.шт. УФ-1 в дозе 4 млрд.м.к. |
7 |
0 |
100,0 |
0 |
48,0±0,2 |
2.заражен. шт. 19 (2 млрд.м.к.) |
7 |
0 |
100,0 |
0 |
39,0±0,4 |
3.заражен. вакцин.шт.82 (2 млрд.м.к.) |
7 |
2 |
71,4 |
7,0 |
33,0±0,6 (у заразившихся) 19,0±0,3 17,0±1,8 |
4.заражен. вакцин.шт. УФ-1 (2 млрд.м.к.) + иммуномодулятор |
7 |
0 |
100,0 |
0 |
45,3±0,8 |
5. контроль -непривитые |
5 |
5 |
0 |
94,0 |
До заражения: 12,0±0,3; Через 30 дней после зараж.: 4,2±0,2 |
Заключение. 1. Иммунологическая перестройка организма морских свинок после вакцинации противобруцеллезными вакцинами сопровождается усилением функциональной активности лейкоцитов, которая четко выявляется в НСТ-тесте.
-
2. Уровень активизации лейкоцитов коррелирует с устойчивостью морских свинок к бруцеллезу.
-
3. При бруцеллезной инфекции в
отличие от вакцинного процесса, наблюдается значительное угнетение функциональной активности лейкоцитов.
Резюме
Проведены исследования по определению функциональной активности полиморфноядерных лейкоцитов. Использовали тест восстановления нитросинего тетразолия (НСТ-тест). Иммунологическая перестройка организма морских свинок после вакцинации противобруцеллезными вакцинами сопровождается усилением функциональной активности лейкоцитов, которая четко выявляется в НСТ-тесте. Уровень активизации лейкоцитов коррелирует с устойчивостью морских свинок к бруцеллезу. При бруцеллезной инфекции в отличие от вакцинного процесса, наблюдается значительное угнетение функциональной активности лейкоцитов.
Список литературы Показатели клеточного иммунитета у морских свинок при вакцинации и экспериментальной бруцелезной инфекции
- Воронин Е.С. Иммунология/Воронин Е.С., Петров Р.В., Седых М.М., Дедвинов Д.А./М.: Колос -Пресс -2002. -384 с.
- Езенчук Ю.В. Патогенность как функция биомолекул. М. «Мерцание» -1988. -240 с.
- Бойд У. Основы иммунологии. Пер. с английского под ред. гуровича А.Е., М. «Мир» -1969.-648 с.
- Петров Р.В. Иммунология/Петров Р.В. -М. «Мерцание» -1982.-368 с.
- Davis C.P. Evidence for a Bladder cells glicolipid receptore E.coli and effect of neuramic acid colominic acid adherence/Davis C.P.//Infect Immunal/-1981/-v.34. №3.P.144 -148.
- Алимов А.М., Зарипова И.Р. Методические указания по определению активности ПМЯЛ в НСТ-тесте/Казань -1990. -4с.