МОНОСЛОИ ЛЕНГМЮРА — НОВЫЙ ТИП СОРБЕНТОВ ДЛЯ МЕТАЛЛ-АФФИННОЙ ХРОМАТОГРАФИИ

МОНОСЛОИ ЛЕНГМЮРА — НОВЫЙ ТИП СОРБЕНТОВ ДЛЯ МЕТАЛЛ-АФФИННОЙ ХРОМАТОГРАФИИ

Автор: Н. Г. Суходолов, А. А. Селютин, Е. П. Подольская

Журнал: Научное приборостроение @nauchnoe-priborostroenie

Рубрика: Научные статьи, посвященные памяти Л.Н. Галль

Статья в выпуске: 4, 2024 года.

Бесплатный доступ

В обзоре представлены все этапы разработки новых металл-аффинных сорбентов на основе коллапсированных монослоев стеаратов металлов (монослоев Ленгмюра), от идеи до практической реализации.

Металл-аффинная хроматография, сорбент, ммонослои Ленгмюра, коллапсированные монослои стеаратов металлов, МАЛДИ-МС

Короткий адрес: https://sciup.org/142242728

IDR: 142242728

Список литературы МОНОСЛОИ ЛЕНГМЮРА — НОВЫЙ ТИП СОРБЕНТОВ ДЛЯ МЕТАЛЛ-АФФИННОЙ ХРОМАТОГРАФИИ

  • 1. Александров М.Л., Галль Л.Н., Краснов Н.В., Николаев В.И., Шкуров В.А. Экстракция ионов из растворов при атмосферном давлении – новый метод массспектрометрического анализа // Доклады Академии наук СССР. 1984. Т. 277, № 2. С. 379-383. URL:
  • https://elibrary.ru/item.asp?id=9290237
  • 2. Юбилей Лидии Николаевны Галль, д-ра физ.-мат. наук, профессора // Научное приборостроение. 2019. Т. 29, № 3. С. 69–72.
  • URL: http://iairas.ru/mag/2019/abst3.php#abst8
  • 3. Подосенова Н.Г., Галль Л.Н., Меленевская Е.Ю., Романенко С.М., Шаронова Л.В., Крюкова Е.Г. Влияние фуллерена на адсорбционные свойства силикагеля по отношению к среднемолекулярным пептидам // Эфферентная терапия. 2009. Т. 15, № 3-4. С. 8–13. URL: https://elibrary.ru/item.asp?id=15457977
  • 4. Галль Л.Н., Малахова М.Я., Меленевская Е.Ю., Подосенова Н.Г., Шаронова Л.В. Влияние воды на адсорбцию компонентов плазмы крови силикагелем // Биомедицинская химия. 2011. Т. 57, № 6. С. 635–641. URL: http://pbmc.ibmc.msk.ru/ru/article-ru/PBMC-2011-57-6-635/
  • 5. Langmuir I., Schaefer V.J. Composition of fatty acid films on water containing calcium or barium salts // Journal of the American Chemical Society. 1936. Vol. 58, no. 2. P. 284–287. DOI: 10.1021/ja01293a028
  • 6. Blodgett K. Films built by depositing successive monomolecular layers on a solid surface // Journal of the American Chemical Society. 1935. Vol. 57, no. 6. Р. 1007–1022. DOI: 10.1021/ja01309a011
  • 7. Янклович А.И., Чернобережский Ю.М. Перенос монослоев на твердую поверхность и образование регулярных мультиструктур. Механизм образования мультислойной структуры // Вестник ЛГУ. 1980. № 16. С. 84–90.
  • 8. Roberts G.G. An applied science perspective of Langmuir-Blodgett films // Advances in Physics. 1985. Vol. 34, no. 4. P. 475–512.
  • DOI: 10.1080/00018738500101801
  • 9. Кarymov M.A., Kruchinin A.A, Tarantov Y.A., Balova I.A., Remisova L.A., Sukhodolov N.G., Yanklovich A.I., Yorking A.M. Langmuir-Blodgett film based membrane for DNA-probe biosensor // Sensors & Actuators B: Chemical. 1992. Vol. 6, no. 1-3. P. 208–210. DOI:
  • 10.1016/0925-4005(92)80057-5
  • 10. Bobrysheva N.P., Ivanov N.S., Selyutin A.A., Janklovich A.I., Sukhodolov N.G. Magnetic properties of Langmuir-Blodgett films with iron ions // Reviews on Advanced Materials Science. 2014. Vol. 37, no. 1-2. P. 48–52. URL: https://www.ipme.ru/ejournals/RAMS/no_13714/07_13714_sukhodolov.pdf
  • 11. Рожкова Е.А., Краснов И.А., Суходолов Н.Г., Иванов Н.С., Янклович А.И., Подольская Е.П., Краснов Н.В. Исследование поверхностных свойств наноструктур (пленок Лэнгмюра-Блоджетт), содержащих ионы железа, и определение их состава с привлечением методов масс-спектрометрии // Научное приборостроение. 2008. Т. 18, № 4. С. 54–60. URL: http://iairas.ru/mag/2008/abst4.php#abst9
  • 12. Гладилович В.Д., Краснов И.А., Подольская Е.П., Дубровский Я.А., Войтенко Н.Г., Фиронов С.В., Бабаков В.Н., Гончаров Н.В., Краснов Н.В. Идентификация пептидов сывороточного альбумина, модифицированных фосфорорганическими соединениями, с применением методов хроматографии и масс-спектрометрии // Научное приборостроение. 2010. Т. 20, № 4. С. 84–92. URL: http://iairas.ru/mag/2010/abst4.php#abst9
  • 13. Heikaus L., Hidayah S., Gaikwad M., Kotasinska M., Richter V., Kwiatkowski M., Schlüter H. Sample displacement batch chromatography of proteins // Methods in Molecular Biology. 2021. Vol. 2178. P. 285–299. DOI: 10.1007/978-1-0716-0775-6_19
  • 14. Кельциева О.А., Гладилович В.Д., Прусаков А.Н., Колоницкий П.Д., Суходолов Н.Г., Селютин А.А., Краснов Н.В., Бонитенко Е.Ю., Подольская Е.П. Регулярные мультимолекулярные сорбенты (РММС). Получение, изучение поверхностных и сорбционных
  • свойств // Научное приборостроение. 2012. Т. 22, № 4. С. 50–55. URL: http://iairas.ru/mag/2012/abst4.php#abst7
  • 15. Суходолов Н.Г., Гладилович В.Д., Колоницкий П.Д., Шрейнер Е.В., Янклович А.И., Селютин А.А., Краснов Н.В., Подольская Е.П. Исследование электрокинетических свойств регулярных мультимолекулярных сорбентов на основе стеаратов трехвалентных металлов // Научное приборостроение. 2013. Т. 23, № 1. С. 123–129. URL: http://iairas.ru/mag/2013/abst1.php#abst13
  • 16. Gladilovich V., Greifenhagen U., Sukhodolov N., Selyutin A., Singer D., Thieme D., Majovsky P., Shirkin A., Hoehenwarter W., Bonitenko E., Podolskaya E., Frolov A. Immobilized metal affinity chromatography on collapsed Langmuir-Blodgett iron(III) stearate films and iron(III) oxide nanoparticles for bottom-up phosphoproteomics // Journal of Chromatography A. 2016. Vol. 1443. P. 181–190. DOI: 10.1016/j.chroma.2016.03.044
  • 17. Гладилович В.Д., Шрейнер Е.В., Дубровский Я.А., Колоницкий П.Д., Краснов К.А., Бабина Е.В., Мурашко Е.А., Бабаков В.Н., Кельциева О.А., Краснов И.А., Ануров М.С., Русских Я.В., Чернова Е.Н., Жаковская З.А., Суходолов. Н.Г., Селютин А.А., Александрова М.Л., Подольская Е.П. Исследование специфичных свойств регулярного мультимолекулярного сорбента
  • Fe(III) // Научное приборостроение. 2013. Т. 23, № 1. С. 106–114. URL: http://iairas.ru/mag/2013/abst1.php#abst11
  • 18. Чернова Е.Н., Кельциева O.A, Гладилович В.Д., Русских Я.В., Суходолов Н.Г., Селютин А.А., Никифоров В.А., Жаковская З.А., Подольская Е.П. Применение хромато-масс-спектрометра высокого разрешения LTQ Оrbitrap для определения перфторкислот в природной воде с использованием традиционного твердофазного и металл-аффинного сорбентов: разработка и оптимизация метода // Научное приборостроение. 2013. Т. 23, № 1. С. 30–37. URL: http://iairas.ru/mag/2013/abst1.php#abst3
  • 19. Гладилович В.Д., Подольская Е.П., Селютин А.А., Суходолов Н.Г. Регулярные мультимолекулярные сорбенты для металл-аффинной хроматографии, содержащие лабильную ковалентную связь. Патент РФ RU2608529C2, 27.10.2013. URL:
  • https://patents.google.com/patent/RU2608529C2/ru
  • 20. Кельциева О.А., Гладилович В.Д., Подольская Е.П. Металл-аффинная хроматография. Основы и применение // Научное приборостроение. 2013. Т. 23, № 1. С. 74–85. http://iairas.ru/mag/2013/abst1.php#abst9
  • 21. Mateo C., Fernandez-Lorente G., Pessela B.C., Vian A., Carrascosa A.V., Garcia J.L., Fernandez-Lafuente R., Guisan J.M. Affinity chromatography of polyhistidine tagged enzymes. New dextran-coated immobilized metal ion affinity chromatography matrices for prevention of undesired multipoint adsorptions // Journal of Chromatography A. 2001. Vol. 915. P. 97–106. DOI: 10.1016/S0021-9673(01)00626-4
  • 22. Lingg N., Öhlknecht C., Fischer A., Mozgovicz M., Scharl T., Oostenbrink C., Jungbauer A. Proteomics analysis of host cell proteins after immobilized metal affinity chromatography: Influence of ligand and metal ions // Journal of Chromatography A. 2020. Vol. 1633.
  • Id. 461649. DOI: 10.1016/j.chroma.2020.461649
  • 23. Суходолов Н.Г., Кельциева О.А., Федорова А.В., Селютин А.А., Подольская Е.П. Поверхностные свойства пленок Ленгмюра-Блоджетт и нанодисперсных оксидов, содержащих никель и медь // Журнал общей химии. 2015. Т. 85, № 8. С. 1387–1388. URL:
  • https://www.elibrary.ru/item.asp?id=23883908
  • 24. Шрейнер Е.В., Кельциева О.А., Шустов В.Э., Суходолов Н.Г., Шиловских В.В., Ширкин А.Ю., Александрова М.Л., Жаковская З.А., Подольская Е.П. Разработка металл-хелатного сорбента на основе стеарата никеля(II) // Научное приборостроение. 2015.
  • Т. 25, № 4. С. 19–24. URL: http://iairas.ru/mag/2015/abst4.php#abst2
  • 25. Шрейнер Е.В., Гладилович В.Д., Кельциева О.А., Колоницкий П.Д., Ефремов Т.А., Струков М.К., Александрова М.Л., Селютин А.А., Суходолов Н.Г., Подольская Е.П. Металл-аффинная хроматография как метод специфичной экстракции вредных химических веществ и их производных из объектов окружающей среды и биологических сред // Medline.ru. 2015. Т. 16. С. 350–356. URL: https://elibrary.ru/item.asp?id=23556242
  • 26. Avancini R.M., Silva I.S., Rosa A.C., Sarcinelli Pde N., de Mesquita S.A. Organochlorine compounds in bovine milk from the state of Mato Grosso do Sul-Brazil // Chemosphere. 2013. Vol. 90, no. 9. P. 2408–2413. DOI: 10.1016/j.chemosphere.2012.10.069
  • 27. Shreyner E.V., Alexandrova M.L., Sukhodolov N.G., Podolskaya E.P., Selyutin A.A. Extraction of the insecticide dieldrin from water and biological samples by metal affinity chromatography // Mendeleev Communications. 2017. Vol. 27, no. 3. P. 304–306. DOI:
  • 10.1016/j.mencom.2017.05.030
  • 28. Cheng G., Liu Y.L., Zhang J.L., Sun D.H., Ni J.Z. Lanthanum Silicate Coated Magnetic Microspheres as a Promising Affinity Material for Phosphopeptide Enrichment and Identification // Analytical and Bioanalytical Chemistry. 2012. Vol. 404, no. 3. P. 763–770. DOI: 10.1007/s00216-012-6150-0
  • 29. Pink M., Verma N., Polato F., Bonn G.K., Baba H.A., Rettenmeier A.W., Schmitz-Spanke S. Precipitation by Lanthanum Ions: A Straightforward Approach to Isolating Phosphoproteins // Journal of Proteomics. 2011. Vol. 75, no. 2. P. 375–383. DOI: 10.1016/j.jprot.2011.08.001
  • 30. Babakov V.N., Shreiner E.V., Keltsieva O.A., Dubrovskii Y.A., Shilovskikh V.V., Zorin I.M., Sukhodolov N.G., Zenkevich I.G., Podolskaya E.P., Selyutin A.A. Application of lanthanum stearate monolayers as a metalaffinity sorbent for the selective sorption of soman adducts to human serum albumin // Talanta. 2019. Vol. 195. P. 728–731. DOI: 10.1016/j.talanta.2018.11.103
  • 31. Kurdyukov D.A., Eurov D.A., Sokolov V.V., Golubev V.G., Chernova E.N., Russkikh Y.V., Bykova A.A., Shilovskikh V.V., Ubyivovk E.V., Anufrikov Y.A., Fedorova A.V., Selyutin A.A., Sukhodolov N.G., Keltsieva O.A., Podolskaya E.P., Golubev V.G. Ni-functionalized submicron mesoporous silica particles as a sorbent for metal affinity chromatography // Journal of Chromatography A. 2017. Vol. 1513. P. 140–148.
  • DOI: 10.1016/j.chroma.2017.07.043
  • 32. Zeng Z., Wang Y., Shi S., Wang L., Guo X., Lu N. On-plate selective enrichment and self-desalting of peptides/proteins for direct MALDI MS analysis // Analytical Chemistry. 2012. Vol. 84, no. 5. P. 2118–2123. DOI: 10.1021/ac203378q
  • 33. Reyes-Garcés N., Gionfriddo E., Gómez-Ríos G.A., Alam M.N., Boyaci E., Bojko B., Singh V., Grandy J., Pawliszyn J. Advances in Solid Phase Microextraction and Perspective on Future Directions // Analytical Chemistry. 2018. Vol. 90, no. 1. P. 302–360. DOI:
  • 10.1021/acs.analchem.7b04502
  • 34. Urban P.L., Amantonico A., Zenobi R. Lab-on-a-plate: Extending the functionality of MALDI-MS and LDI-MS targets // Mass Spectrometry Reviews. 2011. Vol. 30, no. 3. P. 435–478. DOI: 10.1002/mas.20288
  • 35. Wei Z., Li Y., Cooks R.G., Yan X. Accelerated Reaction Kinetics in Microdroplets: Overview and Recent Developments // Annual Review of Physical Chemistry. 2020. Vol. 71. P. 31–51. DOI: 10.1146/annurev-physchem121319-110654
  • 36. Gladchuk A.S., Silyavka E.S., Shilovskikh V.V., Bocharov V.N., Zorin I.M., Tomilin N.V., Stepashkin N.A., Alexandrova M.L., Krasnov N.V., Gorbunov A.Yu., Babakov V.N., Sukhodolov N.G., Selyutin A.A., Podolskaya E.P. Self-organization of stearic acid salts on the
  • hemispherical surface of the aqueous subphase allows functionalization of matrix-assisted laser desorption/ionization mass spectrometry target plates for onplate immobilized metal affinity chromatography enrichment // Thin Solid Films. 2022. Vol. 756. Id. 139374.
  • DOI: 10.1016/j.tsf.2022.139374
  • 37. Бабаков В.Н., Горбунов А.Ю., Гладчук А.С., Калниня Я.К., Шиловских В.В., Томилин Н.В., Суходолов Н.Г., Радилов А.С., Подольская Е.П. Идентификация фосфонилированных пептидов с применением МАЛДИ-мишени, функционализированной стеаратом лантана // Медицина экстремальных ситуаций. 2023. Т. 1. С. 21–30. URL: https://mes.fmba.press/files/issues/mes.fmba.press/2023/1/2023-1-1186_ru.pdf?lang=ru
  • 38. Kalninia Y.K., Viskov M.A., Gladchuk A.S., Afanasyeva A.A., Keltsieva O.A., Slyusarenko M.A., Frolov A.S., Krasnov K.A., Sukhodolov N.G., Reinyuk V.L., Podolskaya E.P. MALDI target functionalization with deposited thin films of lanthanum stearate – An efficient tool for in
  • situ enrichment of human globin adducts of chlorinated organic compounds // Microchemical Journal. 2024. Vol. 205. Id. 111300. DOI: 10.1016/j.microc.2024.111300
  • 39. Gawlik M., Skibiński R., Trawiński J., Komsta Ł. Photocatalysis combined with chromatographic methods as a new promising tool in drug metabolism studies – a review // Acta Chromatographica. 2018. Vol. 30, no. 1. P. 1–8. DOI: 10.1556/1326.2016.00202
  • 40. Tahara K., Makii E., Iijima S., et all. On-line liquid chromatography and circular dichroism detection of stereoisomers of alpha-tocopherol derivatives generated by an electrochemical reaction // Analytical Sciences. 2008. Vol. 24. P. 935–938. DOI: 10.2116/analsci.24.935
  • 41. Pelkonen O., Turpeinen M., Raunio H., et al. Prediction of drug metabolism and interaction on the basis of in vitro investigations // Basic & Clinical Pharmacology & Toxicology. 2005. Vol. 96, no. 3. P. 167–175. DOI: 10.1111/j.1742-7843.2005.pto960305.x
  • 42. Горбунов А.Ю., Подольская Е.П. Формирование наноразмерных мультимолекулярных структур стеарата лантана с использованием монослоев Ленгмюра для масс-спектрометрии с лазерной десорбцией/ионизацией // Письма в журнал технической физики. 2022. Т. 48, № 21. С. 35–39. DOI: 10.21883/PJTF.2022.21.53711.19320
Еще
Статья научная
QR-код для установки приложения SciUp Наведите камеру и скачайте бесплатное приложение SciUp